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En química , bioquímica y farmacología , una constante de disociación ( ) es un tipo específico de constante de equilibrio que mide la propensión de un objeto más grande a separarse (disociarse) reversiblemente en componentes más pequeños, como cuando un complejo se desintegra en sus moléculas componentes , o cuando una sal se divide en los iones que la componen . La constante de disociación es la inversa de la constante de asociación . En el caso especial de las sales, la constante de disociación también se puede llamar constante de ionización . [1][2] Para una reacción general:

en el que un complejo se descompone en subunidades x A y subunidades y B, se define la constante de disociación

donde [A], [B] y [A x B y ] son ​​las concentraciones de equilibrio de A, B y el complejo A x B y , respectivamente.

Una razón de la popularidad de la constante de disociación en bioquímica y farmacología es que en el caso frecuente donde x = y = 1, K d tiene una interpretación física simple: cuándo , entonces o de manera equivalente . Es decir, K D , que tiene las dimensiones de concentración, es igual a la concentración de A libre en la que la mitad de las moléculas totales de B están asociadas con A. Esta simple interpretación no se aplica a valores más altos de x o y. También supone la ausencia de reacciones competitivas, aunque la derivación puede extenderse para permitir y describir explícitamente la unión competitiva. [ cita requerida ] Es útil como una descripción rápida de la unión de una sustancia, de la misma manera queEC50 e IC50 describen las actividades biológicas de sustancias.

Concentración de moléculas unidas [ editar ]

Moléculas con un sitio de unión [ editar ]

Experimentalmente, la concentración del complejo de moléculas [AB] se obtiene indirectamente de la medición de la concentración de moléculas libres, ya sea [A] o [B]. [3] En principio, se conocen las cantidades totales de molécula [A] 0 y [B] 0 añadidas a la reacción. Se separan en componentes libres y unidos de acuerdo con el principio de conservación de masa:

Para rastrear la concentración del complejo [AB], se sustituye la concentración de las moléculas libres ([A] o [B]), de las respectivas ecuaciones de conservación, por la definición de la constante de disociación,

Esto produce la concentración del complejo relacionada con la concentración de cualquiera de las moléculas libres.

Macromoléculas con sitios de unión independientes idénticos [ editar ]

Muchas proteínas y enzimas biológicas pueden poseer más de un sitio de unión. [3] Por lo general, cuando un ligando L se une a una macromolécula M , puede influir en la cinética de unión de otros ligandos L que se unen a la macromolécula. Puede formularse un mecanismo simplificado si la afinidad de todos los sitios de unión puede considerarse independiente del número de ligandos unidos a la macromolécula. Esto es válido para macromoléculas compuestas por más de una subunidad, en su mayoría idénticas. Entonces se puede suponer que cada una de estas n subunidades son idénticas, simétricas y que poseen un solo sitio de unión. Entonces, la concentración de ligandos unidos se vuelve

En este caso ,, pero comprende todas las formas parcialmente saturadas de la macromolécula:

donde la saturación ocurre paso a paso

Para la derivación de la ecuación de unión general, una función de saturación se define como el cociente de la porción de ligando unido a la cantidad total de macromolécula:

Incluso si todas las constantes de disociación microscópicas [ aclaración necesaria ] son idénticas, difieren de las macroscópicas y existen diferencias entre cada paso de unión. [ aclaración necesaria ] La relación general entre ambos tipos de constantes de disociación para n sitios de unión es

Por lo tanto, la proporción de ligando unido a macromoléculas se vuelve

donde es el coeficiente binomial . Entonces, la primera ecuación se demuestra aplicando la regla del binomio

Unión proteína-ligando [ editar ]

La constante de disociación se usa comúnmente para describir la afinidad entre un ligando (como un fármaco ) y una proteína ; es decir, con qué fuerza se une un ligando a una proteína en particular. Las afinidades ligando-proteína están influenciadas por interacciones intermoleculares no covalentes entre las dos moléculas, tales como enlaces de hidrógeno , interacciones electrostáticas , fuerzas hidrófobas y de van der Waals . [4] Las afinidades también pueden verse afectadas por altas concentraciones de otras macromoléculas, lo que provoca un apiñamiento macromolecular . [5] [6]

La formación de un complejo ligando-proteína se puede describir mediante un proceso de dos estados.

se define la constante de disociación correspondiente

donde y representan concentraciones molares de la proteína, ligando y complejo, respectivamente.

La constante de disociación tiene unidades molares (M) y corresponde a la concentración de ligando a la que la mitad de las proteínas están ocupadas en equilibrio, [7] es decir, la concentración de ligando a la que la concentración de proteína con ligando unido es igual a la concentración de proteína con sin ligando unido . Cuanto menor es la constante de disociación, más unido está el ligando o mayor es la afinidad entre el ligando y la proteína. Por ejemplo, un ligando con una constante de disociación nanomolar (nM) se une más estrechamente a una proteína particular que un ligando con una constante de disociación micromolar (μM).

Las constantes de disociación subpicomolar como resultado de interacciones de unión no covalente entre dos moléculas son raras. [8] No obstante, existen algunas excepciones importantes. Biotina y avidina se unen con una constante de disociación de aproximadamente 10 -15 M = 1 fM = 0,000001 nM. [9] Las proteínas inhibidoras de la ribonucleasa también pueden unirse a la ribonucleasa con una afinidad similar de 10-15 M. [10] La constante de disociación para una interacción ligando-proteína particular puede cambiar significativamente con las condiciones de la solución (p. Ej., Temperatura , pHy concentración de sal). El efecto de diferentes condiciones de solución es modificar eficazmente la fuerza de cualquier interacción intermolecular que mantenga unido un complejo ligando-proteína particular.

Los medicamentos pueden producir efectos secundarios dañinos a través de interacciones con proteínas para las que no estaban destinados o diseñados para interactuar. Por lo tanto, gran parte de la investigación farmacéutica tiene como objetivo diseñar fármacos que se unan solo a sus proteínas diana (diseño negativo) con alta afinidad (típicamente 0,1-10 nM) o mejorar la afinidad entre un fármaco en particular y su proteína diana in-vivo (diseño positivo ).

Anticuerpos [ editar ]

En el caso específico de los anticuerpos (Ab) que se unen al antígeno (Ag), normalmente el término constante de afinidad se refiere a la constante de asociación.

Este equilibrio químico es también la relación de las constantes de velocidad activa (k hacia adelante ) o (k a ) y fuera de velocidad (k hacia atrás ) o (k d ). Dos anticuerpos pueden tener la misma afinidad, pero uno puede tener una constante de velocidad activa y desactivada alta, mientras que el otro puede tener una constante de velocidad activa y desactivada baja.

Reacciones ácido-base [ editar ]

Para la desprotonación de ácidos , K se conoce como K a , la constante de disociación ácida . Los ácidos más fuertes, por ejemplo el ácido sulfúrico o fosfórico , tienen constantes de disociación mayores; Los ácidos más débiles, como el ácido acético , tienen constantes de disociación más pequeñas.

(El símbolo , utilizado para la constante de disociación ácida, puede generar confusión con la constante de asociación y puede ser necesario ver la reacción o la expresión de equilibrio para saber a qué se refiere).

Las constantes de disociación ácida a veces se expresan mediante , que se define como:

Esta notación también se ve en otros contextos; se utiliza principalmente para disociaciones covalentes (es decir, reacciones en las que se forman o rompen enlaces químicos) ya que tales constantes de disociación pueden variar mucho.

Una molécula puede tener varias constantes de disociación ácida. En este sentido, que está en función del número de los protones que pueden darse por vencido, definimos monopróticos , dipróticos y tripróticos ácidos . El primero (por ejemplo, ácido acético o amonio ) tiene sólo un grupo disociable, el segundo ( ácido carbónico , bicarbonato , glicina ) tiene dos grupos disociables y el tercero (por ejemplo, ácido fosfórico) tiene tres grupos disociables. En el caso de múltiples valores de p K , se designan mediante índices: p K 1 , p K 2 , p K 3y así. Para los aminoácidos, la constante p K 1 se refiere a su grupo carboxilo (-COOH), p K 2 se refiere a su grupo amino (-NH 2 ) y p K 3 es el valor p K de su cadena lateral .

Constante de disociación del agua [ editar ]

La constante de disociación del agua se denota K w :

La concentración de agua se omite por convención, lo que significa que el valor de K w difiere del valor de K eq que se calcularía usando esa concentración.

El valor de K w varía con la temperatura, como se muestra en la siguiente tabla. Esta variación debe tenerse en cuenta al realizar mediciones precisas de cantidades como el pH.

Ver también [ editar ]

  • Ácido
  • Equilibrio constante
  • Base de datos K i
  • Inhibición competitiva
  • pH
  • Parcela Scatchard
  • La Unión del ligando
  • Avidez

Referencias [ editar ]

  1. ^ "Constante de disociación" . Química LibreTexts . 2015-08-09 . Consultado el 26 de octubre de 2020 .
  2. ^ Libro de texto de química bioanalítica De Gruyter 2021 https://doi.org/10.1515/9783110589160-206
  3. ↑ a b Bisswanger, Hans (2008). Cinética enzimática: principios y métodos (PDF) . Weinheim: Wiley-VCH. pag. 302. ISBN  978-3-527-31957-2.
  4. Srinivasan, Bharat (27 de septiembre de 2020). "Palabras de consejo: enseñanza de la cinética enzimática" . La revista FEBS . doi : 10.1111 / febs.15537 . ISSN 1742-464X . 
  5. ^ Zhou, H .; Rivas, G .; Minton, A. (2008). "Apiñamiento y confinamiento macromolecular: consecuencias bioquímicas, biofísicas y fisiológicas potenciales" . Revisión anual de biofísica . 37 : 375–397. doi : 10.1146 / annurev.biophys.37.032807.125817 . PMC 2826134 . PMID 18573087 .  
  6. ^ Minton, AP (2001). "La influencia del hacinamiento macromolecular y el confinamiento macromolecular en reacciones bioquímicas en medios fisiológicos" (PDF) . La Revista de Química Biológica . 276 (14): 10577–10580. doi : 10.1074 / jbc.R100005200 . PMID 11279227 .  
  7. ^ Björkelund, Hanna; Gedda, Lars; Andersson, Karl (31 de enero de 2011). "Comparación de la interacción del factor de crecimiento epidérmico con cuatro líneas celulares diferentes: efectos intrigantes implican una fuerte dependencia del contexto celular" . PLOS ONE . 6 (1): e16536. Código Bibliográfico : 2011PLoSO ... 616536B . doi : 10.1371 / journal.pone.0016536 . ISSN 1932-6203 . PMC 3031572 .  
  8. Srinivasan, Bharat (8 de octubre de 2020). "Tratamiento explícito de cinética atípica y no Michaelis-Menten en el descubrimiento temprano de fármacos" . dx.doi.org . Consultado el 2 de marzo de 2021 .
  9. Livnah, O .; Bayer, E .; Wilchek, M .; Sussman, J. (1993). "Estructuras tridimensionales de avidina y el complejo avidina-biotina" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 90 (11): 5076–5080. Código Bibliográfico : 1993PNAS ... 90.5076L . doi : 10.1073 / pnas.90.11.5076 . PMC 46657 . PMID 8506353 .  
  10. ^ Johnson, R .; Mccoy, J .; Bingman, C .; Phillips Gn, J .; Raines, R. (2007). "Inhibición de la ribonucleasa pancreática humana por la proteína inhibidora de la ribonucleasa humana" . Revista de Biología Molecular . 368 (2): 434–449. doi : 10.1016 / j.jmb.2007.02.005 . PMC 1993901 . PMID 17350650 .  
  11. ^ Bandura, Andrei V .; Lvov, Serguei N. (2006). "La constante de ionización del agua en amplios rangos de temperatura y densidad" (PDF) . Revista de datos de referencia físicos y químicos . 35 (1): 15–30. Código bibliográfico : 2006JPCRD..35 ... 15B . doi : 10.1063 / 1.1928231 .