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Un microscopio electrónico de transmisión moderno
Diagrama de un microscopio electrónico de transmisión
Microscopio electrónico construido por Ernst Ruska en 1933.

Un microscopio electrónico es un microscopio que utiliza un haz de electrones acelerados como fuente de iluminación. Como la longitud de onda de un electrón puede ser hasta 100.000 veces más corta que la de los fotones de luz visible , los microscopios electrónicos tienen un mayor poder de resolución que los microscopios de luz y pueden revelar la estructura de objetos más pequeños. Un microscopio electrónico de transmisión de barrido ha logrado una resolución mejor que 50  pm en el modo de imágenes de campo oscuro anular [1] y aumentos de hasta aproximadamente 10,000,000 × mientras que la mayoría de los microscopios ópticosestán limitados por difracción a una resolución de aproximadamente 200  nm y aumentos útiles por debajo de 2000 ×.

Los microscopios electrónicos utilizan campos magnéticos con forma para formar sistemas de lentes ópticos electrónicos que son análogos a los lentes de vidrio de un microscopio óptico de luz.

Los microscopios electrónicos se utilizan para investigar la ultraestructura de una amplia gama de muestras biológicas e inorgánicas, incluidos microorganismos , células , moléculas grandes , muestras de biopsia , metales y cristales . Industrialmente, los microscopios electrónicos se utilizan a menudo para el control de calidad y el análisis de fallas . Los microscopios electrónicos modernos producen micrografías electrónicas utilizando cámaras digitales especializadas y capturadores de fotogramas para capturar las imágenes.

Historia [ editar ]

Diagrama que ilustra los fenómenos resultantes de la interacción de electrones altamente energéticos con la materia.

En 1926, Hans Busch desarrolló la lente electromagnética.

Según Dennis Gabor , el físico Leó Szilárd intentó en 1928 convencerlo de que construyera un microscopio electrónico, para el que había presentado una patente. [2] El primer prototipo de microscopio electrónico, capaz de un aumento de cuatrocientos aumentos, fue desarrollado en 1931 por el físico Ernst Ruska y el ingeniero eléctrico Max Knoll . [3] El aparato fue la primera demostración práctica de los principios de la microscopía electrónica. [4] En mayo del mismo año, Reinhold Rudenberg , director científico de Siemens-Schuckertwerke , obtuvo una patente para un microscopio electrónico. En 1932, Ernst Lubcke deSiemens & Halske construyeron y obtuvieron imágenes de un prototipo de microscopio electrónico, aplicando los conceptos descritos en la patente de Rudenberg. [5]

En el año siguiente, 1933, Ruska construyó el primer microscopio electrónico que excedió la resolución alcanzable con un microscopio óptico (de luz). [4] Cuatro años más tarde, en 1937, Siemens financió el trabajo de Ernst Ruska y Bodo von Borries , y contrató a Helmut Ruska , el hermano de Ernst, para desarrollar aplicaciones para el microscopio, especialmente con muestras biológicas. [4] [6] También en 1937, Manfred von Ardenne fue pionero en el microscopio electrónico de barrido . [7] Siemens produjo el primer microscopio electrónico comercial en 1938. [8] El primer microscopio electrónico de América del Norte se construyó en 1938, en elUniversidad de Toronto , por Eli Franklin Burton y los estudiantes Cecil Hall, James Hillier y Albert Prebus. Siemens produjo un microscopio electrónico de transmisión (TEM) en 1939. [ aclaración necesaria ] [9] Aunque los microscopios electrónicos de transmisión actuales son capaces de aumentar dos millones de aumentos, como instrumentos científicos, siguen basándose en el prototipo de Ruska . [ cita requerida ]

Tipos [ editar ]

Microscopio electrónico de transmisión (TEM) [ editar ]

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Principio de funcionamiento de un microscopio electrónico de transmisión

La forma original del microscopio electrónico, el microscopio electrónico de transmisión (TEM), utiliza un haz de electrones de alto voltaje para iluminar la muestra y crear una imagen. El haz de electrones es producido por un cañón de electrones , comúnmente equipado con un cátodo de filamento de tungsteno como fuente de electrones. El haz de electrones es acelerado por un ánodo típicamente a +100 k eV (40 a 400 keV) con respecto al cátodo, enfocado por lentes electrostáticas y electromagnéticas , y transmitido a través de la muestra que es en parte transparente a los electrones y en parte se dispersa.ellos fuera de la viga. Cuando emerge de la muestra, el haz de electrones transporta información sobre la estructura de la muestra que se amplía con el sistema de lentes del objetivo del microscopio. La variación espacial de esta información (la "imagen") se puede ver proyectando la imagen de electrones ampliada sobre una pantalla de visualización fluorescente recubierta con un fósforo o material centelleador como el sulfuro de zinc . Alternativamente, la imagen se puede grabar fotográficamente exponiendo una película o placa fotográfica directamente al haz de electrones, o se puede acoplar un fósforo de alta resolución por medio de un sistema óptico de lentes o una fibra óptica.guía de luz al sensor de una cámara digital . La imagen detectada por la cámara digital puede mostrarse en un monitor o computadora.

La resolución de los TEM está limitada principalmente por la aberración esférica , pero una nueva generación de correctores de hardware puede reducir la aberración esférica para aumentar la resolución en microscopía electrónica de transmisión de alta resolución (HRTEM) por debajo de 0,5 angstrom (50 picómetros ), [1] permitiendo aumentos por encima de 50 millones de veces. [10] La capacidad de HRTEM para determinar las posiciones de los átomos dentro de los materiales es útil para la investigación y el desarrollo de nanotecnologías. [11]

Los microscopios electrónicos de transmisión se utilizan a menudo en el modo de difracción de electrones . Las ventajas de la difracción de electrones sobre la cristalografía de rayos X son que la muestra no necesita ser un monocristal o incluso un polvo policristalino, y también que la reconstrucción por transformada de Fourier de la estructura ampliada del objeto se produce físicamente y, por lo tanto, evita la necesidad de resolver el problema de fase. que enfrentaron los cristalógrafos de rayos X después de obtener sus patrones de difracción de rayos X.

Una desventaja importante del microscopio electrónico de transmisión es la necesidad de secciones extremadamente delgadas de las muestras, típicamente alrededor de 100 nanómetros. La creación de estas secciones delgadas para muestras biológicas y de materiales es técnicamente muy desafiante. Se pueden hacer secciones delgadas de semiconductores utilizando un haz de iones enfocado . Las muestras de tejido biológico se fijan químicamente, se deshidratan y se incrustan en una resina polimérica para estabilizarlas lo suficiente como para permitir un corte ultradelgado. Las secciones de muestras biológicas, polímeros orgánicos y materiales similares pueden requerir tinción con etiquetas de átomos pesados ​​para lograr el contraste de imagen requerido.

Microscopía electrónica de sección en serie (ssEM) [ editar ]

Una aplicación de TEM es la microscopía electrónica de sección en serie (ssEM), por ejemplo, para analizar la conectividad en muestras volumétricas de tejido cerebral mediante la obtención de imágenes de muchas secciones delgadas en secuencia. [12]

Microscopio electrónico de barrido (SEM) [ editar ]

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Principio de funcionamiento de un microscopio electrónico de barrido
Imagen de Bacillus subtilis tomada con un microscopio electrónico de la década de 1960

El SEM produce imágenes al sondear la muestra con un haz de electrones enfocado que se escanea a través de un área rectangular de la muestra ( barrido de trama ). Cuando el haz de electrones interactúa con la muestra, pierde energía mediante una variedad de mecanismos. La energía perdida se convierte en formas alternativas como calor, emisión de electrones secundarios de baja energía y electrones retrodispersados ​​de alta energía, emisión de luz ( catodoluminiscencia ) o rayos Xemisión, todas las cuales proporcionan señales que transportan información sobre las propiedades de la superficie de la muestra, como su topografía y composición. La imagen mostrada por un SEM mapea la intensidad variable de cualquiera de estas señales en la imagen en una posición correspondiente a la posición del haz en la muestra cuando se generó la señal. En la imagen SEM de una hormiga que se muestra a continuación y a la derecha, la imagen se construyó a partir de señales producidas por un detector secundario de electrones, el modo de imagen normal o convencional en la mayoría de los SEM.

Generalmente, la resolución de imagen de un SEM es menor que la de un TEM. Sin embargo, debido a que el SEM toma imágenes de la superficie de una muestra en lugar de su interior, los electrones no tienen que viajar a través de la muestra. Esto reduce la necesidad de una preparación extensa de la muestra para adelgazar la muestra hasta la transparencia electrónica. El SEM puede obtener imágenes de muestras a granel que pueden caber en su escenario y aún así maniobrar, incluida una altura menor que la distancia de trabajo que se está utilizando, a menudo 4 milímetros para imágenes de alta resolución. El SEM también tiene una gran profundidad de campo, por lo que puede producir imágenes que son buenas representaciones de la forma tridimensional de la superficie de la muestra. Otra ventaja de los SEM viene con los microscopios electrónicos de barrido ambiental.(ESEM) que puede producir imágenes de buena calidad y resolución con muestras hidratadas o en gases de bajo vacío o bajo cámara, en lugar de alto. Esto facilita la obtención de imágenes de muestras biológicas no fijadas que son inestables en el alto vacío de los microscopios electrónicos convencionales.

Una imagen de una hormiga en un microscopio electrónico de barrido.

Microscopio electrónico de reflexión (REM) [ editar ]

En el microscopio electrónico de reflexión (REM) como en el TEM, un haz de electrones incide sobre una superficie, pero en lugar de utilizar la transmisión (TEM) o los electrones secundarios (SEM), se detecta el haz reflejado de electrones dispersos elásticamente . Esta técnica normalmente se combina con la difracción de electrones de reflexión de alta energía (RHEED) y la espectroscopia de reflexión de alta pérdida de energía (RHELS) . [ cita requerida ] Otra variación es la microscopía electrónica de baja energía con polarización de espín ( SPLEEM ), que se utiliza para observar la microestructura de los dominios magnéticos . [13]

Microscopio electrónico de barrido de transmisión (STEM) [ editar ]

El STEM traza una sonda incidente enfocada a través de una muestra que (como con el TEM) se ha adelgazado para facilitar la detección de electrones dispersos a través de la muestra. Por tanto, la alta resolución del TEM es posible en STEM. La acción de enfoque (y las aberraciones) ocurren antes de que los electrones golpeen la muestra en el STEM, pero luego en el TEM. El uso de STEM de ráster de haz similar al SEM simplifica la obtención de imágenes anulares de campo oscuro y otras técnicas analíticas, pero también significa que los datos de imagen se adquieren en serie en lugar de en paralelo. A menudo, TEM puede equiparse con la opción de escaneo y luego puede funcionar como TEM y STEM.

Microscopía de túnel de barrido (STM) [ editar ]

En STM, una punta conductora mantenida a un voltaje se acerca a una superficie y se puede obtener un perfil basado en la probabilidad de tunelización de un electrón desde la punta hasta la muestra, ya que es una función de la distancia.

Color [ editar ]

En sus configuraciones más comunes, los microscopios electrónicos producen imágenes con un solo valor de brillo por píxel, y los resultados generalmente se muestran en escala de grises . [14] Sin embargo, a menudo estas imágenes se colorean mediante el uso de software de detección de características, o simplemente mediante la edición manual con un editor de gráficos. Esto se puede hacer para aclarar la estructura o para lograr un efecto estético y generalmente no agrega nueva información sobre la muestra. [15]

En algunas configuraciones, la información sobre varias propiedades de la muestra se recopila por píxel, generalmente mediante el uso de múltiples detectores. [16] En SEM, los atributos de topografía y contraste del material pueden obtenerse mediante un par de detectores de electrones retrodispersados ​​y dichos atributos pueden superponerse en una imagen de un solo color asignando un color primario diferente a cada atributo. [17] De manera similar, una combinación de señales de electrones secundarios y retrodispersados ​​puede asignarse a diferentes colores y superponerse en una micrografía de un solo color que muestra simultáneamente las propiedades de la muestra. [18]

Algunos tipos de detectores utilizados en SEM tienen capacidades analíticas y pueden proporcionar varios elementos de datos en cada píxel. Algunos ejemplos son los detectores de espectroscopía de rayos X de dispersión de energía (EDS) utilizados en el análisis elemental y los sistemas de microscopio de catodoluminiscencia (CL) que analizan la intensidad y el espectro de la luminiscencia inducida por electrones.en (por ejemplo) especímenes geológicos. En los sistemas SEM que utilizan estos detectores, es común codificar por colores las señales y superponerlas en una imagen de un solo color, de modo que las diferencias en la distribución de los diversos componentes de la muestra se puedan ver claramente y comparar. Opcionalmente, la imagen de electrones secundarios estándar se puede fusionar con uno o más canales de composición, de modo que se pueda comparar la estructura y composición de la muestra. Estas imágenes se pueden realizar manteniendo la integridad total de la señal original, que no se modifica de ninguna manera.

Preparación de la muestra [ editar ]

Un insecto recubierto de oro para observar con un microscopio electrónico de barrido.

Los materiales que se van a ver con un microscopio electrónico pueden requerir procesamiento para producir una muestra adecuada. La técnica requerida varía según la muestra y el análisis requerido:

  • Fijación química : para muestras biológicas tiene como objetivo estabilizar la estructura macromolecular móvil de la muestra mediante la reticulación química de proteínas con aldehídos como formaldehído y glutaraldehído , y lípidos con tetróxido de osmio .
  • Tinción negativa : las suspensiones que contienen nanopartículas o material biológico fino (como virus y bacterias) se mezclan brevemente con una solución diluida de una solución opaca a los electrones, como molibdato de amonio, acetato de uranilo (o formiato) o ácido fosfotúngstico. Esta mezcla se aplica a una rejilla EM adecuadamente revestida, se seca y luego se deja secar. La visualización de esta preparación en el TEM debe realizarse sin demora para obtener mejores resultados. El método es importante en microbiología para una identificación morfológica rápida pero cruda, pero también se puede utilizar como base para la reconstrucción 3D de alta resolución utilizando la metodología de tomografía EM cuando se utilizan películas de carbono como soporte. La tinción negativa también se utiliza para la observación de nanopartículas.
  • Criofijación : congelar una muestra tan rápidamente en etano líquidoque el agua forma hielo vítreo (no cristalino) . Esto conserva la muestra en una instantánea de su estado de solución. Todo un campo llamado microscopía crioelectrónica se ha ramificado a partir de esta técnica. Con el desarrollo de la microscopía crioelectrónica de secciones vítreas (CEMOVIS), ahora es posible observar muestras de prácticamente cualquier espécimen biológico cercano a su estado nativo. [ cita requerida ]
  • Deshidratación - o reemplazo de agua con solventes orgánicos como etanol o acetona , seguido de secado en punto crítico o infiltración con resinas de incrustación . También liofilización .
  • Incrustación, muestras biológicas : después de la deshidratación, el tejido para observación en el microscopio electrónico de transmisión se incrusta para que pueda seccionarse y estar listo para su visualización. Para hacer esto, el tejido se pasa a través de un 'solvente de transición' como óxido de propileno (epoxipropano) o acetona y luego se infiltra con una resina epoxi como Araldite , Epon o Durcupan ; [19] Los tejidos también se pueden incrustar directamente en resina acrílica miscible en agua . Una vez que la resina se ha polimerizado (endurecido), la muestra se corta en secciones finas (secciones ultrafinas) y se tiñe ; luego, está lista para su visualización.
  • Incrustación, materiales : después de la incrustación en resina, la muestra generalmente se muele y se pule hasta obtener un acabado similar al espejo utilizando abrasivos ultrafinos. El proceso de pulido debe realizarse con cuidado para minimizar los rayones y otros artefactos de pulido que reducen la calidad de la imagen.
  • Sombreado metálico : el metal (por ejemplo, platino ) se evapora de un electrodo superior y se aplica a la superficie de una muestra biológica en ángulo. [20] La topografía de la superficie da como resultado variaciones en el grosor del metal que se ven como variaciones en el brillo y el contraste en la imagen del microscopio electrónico.
  • Replicación : una superficie sombreada con metal (por ejemplo, platino o una mezcla de carbono y platino) en ángulo se recubre con carbono puro evaporado de electrodos de carbono en ángulo recto con la superficie. A esto le sigue la eliminación del material de la muestra (por ejemplo, en un baño ácido, utilizando enzimas o mediante separación mecánica [21] ) para producir una réplica de la superficie que registre la ultraestructura de la superficie y pueda examinarse mediante microscopía electrónica de transmisión.
  • Seccionamiento : produce rodajas finas de la muestra, semitransparentes a los electrones. Estos se pueden cortar en un ultramicrótomo con un cuchillo de vidrio o de diamante para producir secciones ultradelgadas de aproximadamente 60 a 90 nm de grosor. También se utilizan cuchillos de vidrio desechables porque se pueden fabricar en el laboratorio y son mucho más baratos.
  • Tinción : utiliza metales pesados ​​como plomo , uranio o tungsteno para dispersar los electrones de las imágenes y, por lo tanto, dar contraste entre las diferentes estructuras, ya que muchos materiales (especialmente biológicos) son casi "transparentes" para los electrones (objetos de fase débil). En biología, las muestras se pueden teñir "en bloque" antes de incrustarlas y también más tarde después de seccionarlas. Normalmente, las secciones delgadas se tiñen durante varios minutos con una solución acuosa o alcohólica de acetato de uranilo seguido de citrato de plomo acuoso. [22]
  • Fractura por congelación o grabado por congelación : un método de preparación [23] [24] [25] particularmente útil para examinar las membranas lipídicas y sus proteínas incorporadas en una vista "de frente". [26] [27] [28]
    La congelación-fractura ayuda a despegar las membranas abiertas para permitir la visualización de lo que hay dentro
    Cara externa de la membrana de levadura de panadería que muestra los pequeños orificios donde se fracturan las proteínas, a veces como pequeños patrones de anillos.
    El tejido fresco o la suspensión celular se congela rápidamente (criofijación), luego se fractura rompiéndolo [29] (o usando un micrótomo) [28] mientras se mantiene a la temperatura del nitrógeno líquido. La superficie fracturada en frío (a veces "grabada" al aumentar la temperatura a aproximadamente -100 ° C durante varios minutos para dejar que un poco de hielo se sublime) [28]luego se ensombrece con platino u oro evaporado en un ángulo promedio de 45 ° en un evaporador de alto vacío. La segunda capa de carbono, que se evapora perpendicularmente al plano de la superficie promedio, se realiza a menudo para mejorar la estabilidad del recubrimiento de réplica. La muestra se devuelve a temperatura y presión ambiente, luego la réplica de metal extremadamente frágil "pre-sombreada" de la superficie de la fractura se libera del material biológico subyacente mediante una cuidadosa digestión química con ácidos, solución de hipoclorito o detergente SDS . La réplica todavía flotante se lava a fondo para eliminar los productos químicos residuales, se pesca cuidadosamente en rejillas finas, se seca y se ve en el TEM.
  • Réplica por congelación-fractura de marcaje inmuno-dorado (FRIL) : el método de congelación-fractura se ha modificado para permitir la identificación de los componentes de la cara de la fractura mediante marcaje inmuno-dorado. En lugar de eliminar todo el tejido subyacente de la réplica descongelada como paso final antes de ver en el microscopio, el grosor del tejido se minimiza durante o después del proceso de fractura. La fina capa de tejido permanece unida a la réplica de metal, por lo que puede marcarse con inmunooro con anticuerpos contra las estructuras elegidas. La fina capa del espécimen original sobre la réplica con oro adherido permite la identificación de estructuras en el plano de fractura. [30] También existen métodos relacionados que etiquetan la superficie de las células grabadas [31] y otras variaciones de etiquetado de réplicas.[32]
  • Fresado con haz de iones : adelgaza las muestras hasta que son transparentes a los electrones al disparar iones (generalmente argón ) en la superficie desde un ángulo y pulverizar material desde la superficie. Una subclase de esto es el fresado por haz de iones enfocado , donde los iones de galio se utilizan para producir una membrana transparente a los electrones en una región específica de la muestra, por ejemplo, a través de un dispositivo dentro de un microprocesador. El fresado con haz de iones también se puede utilizar para el pulido de secciones transversales antes del análisis SEM de materiales que son difíciles de preparar mediante pulido mecánico.
  • Recubrimiento conductor : un recubrimiento ultrafino de material conductor de electricidad, depositado por evaporación a alto vacío o por recubrimiento por pulverización catódica a bajo vacío de la muestra. Esto se hace para evitar la acumulación de campos eléctricos estáticos en la muestra debido a la irradiación de electrones requerida durante la obtención de imágenes. Los materiales de revestimiento incluyen oro, oro / paladio, platino, tungsteno, grafito, etc.
  • Conexión a tierra : para evitar la acumulación de carga eléctrica en una muestra revestida de manera conductora, generalmente se conecta eléctricamente al portamuestras de metal. A menudose usaun adhesivo conductor de electricidad para este propósito.

Desventajas [ editar ]

Microscopio electrónico de barrido y transmisión JEOL fabricado a mediados de la década de 1970

Los microscopios electrónicos son costosos de construir y mantener, pero el capital y los costos de funcionamiento de los sistemas de microscopios de luz confocal ahora se superponen con los de los microscopios electrónicos básicos. Los microscopios diseñados para lograr altas resoluciones deben alojarse en edificios estables (a veces subterráneos) con servicios especiales como sistemas de cancelación de campo magnético.

Las muestras deben verse en gran medida al vacío , ya que las moléculas que componen el aire dispersarían los electrones. Una excepción es la microscopía electrónica de fase líquida [33] que utiliza una celda líquida cerrada o una cámara ambiental, por ejemplo, en el microscopio electrónico de barrido ambiental , que permite ver muestras hidratadas a baja presión (hasta 20  Torr o 2,7 kPa) ambiente húmedo. También se han desarrollado varias técnicas para microscopía electrónica in situ de muestras gaseosas. [34]

Los microscopios electrónicos de barrido que funcionan en el modo de alto vacío convencional suelen obtener imágenes de muestras conductoras; por lo tanto, los materiales no conductores requieren un revestimiento conductor (aleación de oro / paladio, carbono, osmio, etc.). El modo de bajo voltaje de los microscopios modernos hace posible la observación de muestras no conductoras sin recubrimiento. También se pueden obtener imágenes de materiales no conductores mediante un microscopio electrónico de barrido de presión variable (o ambiental).

Las muestras pequeñas y estables, como nanotubos de carbono , frústulas de diatomeas y pequeños cristales minerales (fibras de amianto, por ejemplo) no requieren ningún tratamiento especial antes de ser examinadas en el microscopio electrónico. Las muestras de materiales hidratados, incluidas casi todas las muestras biológicas, deben prepararse de diversas formas para estabilizarlas, reducir su grosor (corte ultrafino) y aumentar su contraste óptico electrónico (tinción). Estos procesos pueden resultar en artefactos , pero estos generalmente se pueden identificar comparando los resultados obtenidos mediante el uso de métodos de preparación de muestras radicalmente diferentes. Desde la década de 1980, el análisis de criofijadas, los especímenes vitrificados también se han vuelto cada vez más utilizados por los científicos, lo que confirma aún más la validez de esta técnica. [35] [36] [37]

Aplicaciones [ editar ]

Ver también [ editar ]

  • Siglas en microscopía
  • Difracción de electrones
  • Espectroscopía de pérdida de energía electrónica (EELS)
  • Imágenes de microscopio electronico
  • Microscopía electrónica de transmisión de energía filtrada (EFTEM)
  • Microscopio electrónico de barrido ambiental (ESEM)
  • Microscopio de emisión de campo
  • HiRISE
  • Microscopía electrónica inmunitaria
  • Microscopía electrónica in situ
  • Procesamiento de imágenes de microscopio
  • Microscopía
  • Nanociencia
  • Nanotecnología
  • Microscopio de neutrones
  • Microscopía cuántica
  • Microscopía electrónica confocal de barrido
  • Microscopio electrónico de barrido (SEM)
  • Microscopio de efecto túnel
  • Ciencia de superficie
  • Microscopio con corrección de aberración electrónica de transmisión
  • difracción de rayos X
  • Microscopio de rayos x
  • Microscopía electrónica de baja energía
  • Analizador de energía de electrones hemisférico

Referencias [ editar ]

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Enlaces externos [ editar ]

  • Introducción a la microscopía electrónica : recursos para profesores y estudiantes
  • Base de datos centrada en células: datos de microscopía electrónica
  • Science Aid: Microscopía electrónica : recurso de la escuela secundaria (GCSE, A Level)

General [ editar ]

  • Animaciones y explicaciones de varios tipos de microscopía, incluida la microscopía electrónica (Université Paris Sud)
  • Microscopía electrónica de barrido ambiental (ESEM)
  • Sitio web de ETH Zurich : gráficos e imágenes que ilustran varios procedimientos
  • Seminario de Eva Nogales: "Introducción a la Microscopía Electrónica"
  • Concurso de imágenes FEI : FEI ha tenido un concurso de imágenes de microscopía todos los años desde 2008
  • Introducción a la microscopía electrónica por David Szondy
  • Galería de imágenes de Nanohedron.com : imágenes generadas por microscopía electrónica
  • Análisis de elementos de rayos X en microscopía electrónica : portal de información con microanálisis de rayos X y contenidos EDX

Historia [ editar ]

  • Los recuerdos de John HL Watson en la Universidad de Toronto cuando trabajó con Hillier y Prebus
  • Colección de microscopía electrónica Rubin Borasky, 1930-1988 (Centro de archivos, Museo Nacional de Historia Estadounidense, Institución Smithsonian)

Otro [ editar ]

  • The Royal Microscopical Society, Sección de Microscopía Electrónica (Reino Unido)
  • Albert Lleal. Temas de historia natural en el microscopio electrónico de barrido SEM
  • Imágenes EM