Las Mymaridae , comúnmente conocidas como moscas de las hadas o avispas de las hadas , son una familia de avispas calcidas que se encuentran en las regiones templadas y tropicales de todo el mundo. La familia contiene alrededor de 100 géneros con 1400 especies.
Hadas | |
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Mymar sp. (mujer) | |
clasificación cientifica | |
Reino: | Animalia |
Filo: | Artrópodos |
Clase: | Insecta |
Pedido: | Himenópteros |
Superfamilia: | Chalcidoidea |
Familia: | Mymaridae Haliday , 1833 |
Tipo de género | |
Mymar Curtis , 1829 | |
Genera | |
Ver texto | |
Diversidad | |
0–2 subfamilias c. 100 géneros c. 1.400 especies |
Las moscas de hadas son insectos muy diminutos, como la mayoría de las avispas cálcidas, que en su mayoría miden entre 0,5 y 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas) de largo. Incluyen el insecto más pequeño conocido del mundo , con una longitud corporal de solo 0,139 mm (0,0055 pulgadas), y el insecto volador más pequeño conocido , de solo 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo. Por lo general, tienen cuerpos no metálicos de color negro, marrón o amarillo. Las antenas de las hembras tienen la punta distintiva de segmentos en forma de garrote, mientras que las antenas masculinas son como hilos. Sus alas suelen ser delgadas y poseen cerdas largas, lo que les da una apariencia peluda o plumosa, aunque algunas especies pueden tener alas rechonchas muy reducidas o carecer por completo de alas. Se pueden distinguir de otras avispas calcidas por el patrón de suturas en forma de H en la parte frontal de la cabeza.
Las moscas de hadas son algunas de las avispas cálcidas más comunes, pero los humanos rara vez las notan debido a sus tamaños extremadamente pequeños. Su esperanza de vida adulta es muy corta, por lo general solo unos pocos días. Todas las moscas de hadas conocidas son parasitoides de los huevos de otros insectos, y varias especies se han utilizado con éxito como agentes biológicos de control de plagas . [1]
El registro fósil de las moscas de hadas se extiende al menos desde la edad del Albiano (alrededor de 107 millones de años ) del Cretácico Inferior .
Taxonomía
La familia Mymaridae fue establecida por primera vez en 1833 por el entomólogo irlandés Alexander Henry Haliday . Haliday y dos amigos cercanos, John Curtis y Francis Walker , entomólogos respetados por derecho propio, fueron influyentes en los primeros estudios de los himenópteros en el siglo XIX. [2] [3]
Historia
Haliday describió originalmente a las moscas de hadas como la tribu "Mymares" de la familia "Chalcides". Basó sus descripciones en el género tipo Mymar , descrito por John Curtis en 1829. [4]
Los primeros intentos de clasificación de Walker trataron al grupo como un género y clasificaron todas las demás moscas de hadas conocidas como subgéneros . Walker (que era infame por sus deficiencias en la nomenclatura sistemática ) [2] más tarde admitió la clasificación de Haliday en una carta en 1839 y solicitó la ayuda de Haliday para clasificar las avispas calcidas recolectadas por Charles Darwin en su viaje en el HMS Beagle . [5] "Mymares", así como otras "tribus", fueron elevadas al rango familiar (como Mymaridae) por Haliday en 1839. [6] [7] [8]
Haliday describió a las moscas de hadas como "los mismos átomos del orden de los himenópteros" y destacó la belleza de sus alas cuando se las observa con el microscopio. [4] Estas características de las moscas de hadas también las hicieron populares entre los entomólogos y microscopistas de finales del siglo XIX y principios del XX. Los especímenes de moscas de hadas bellamente montados del microscopista inglés Fred Enock de principios del siglo XX son posiblemente las más famosas de las colecciones. [6] [9]
Etimología
El nombre genérico Mymar (y por extensión, Mymaridae) fue derivado por Curtis de la palabra griega μΰμαρ ( mymar ), una variante eólica del griego estándar μῶμος ( mōmos , "mancha" o "mancha"). [7]
Clasificación
- Para obtener la lista de géneros bajo Mymaridae, consulte la subsección Géneros
Los Mymaridae son los miembros más primitivos de la superfamilia de avispas cálcidas ( Chalcidoidea ). [10] Aproximadamente 1424 especies de moscas de hadas se agrupan en aproximadamente 100 géneros. [11] De los géneros de moscas de las hadas existentes, Eustochomorpha es el más primitivo. [12] Los géneros más grandes son Anagrus , Anaphes , Gonatocerus y Polynema , que comprenden alrededor de la mitad de todas las especies conocidas. Son las moscas de hadas más comunes, seguidas de Alaptus , Camptoptera , Erythmelus , Ooctonus y Stethynium , que constituyen una cuarta parte de las especies conocidas. [13] [14] Se considera que los Mymaridae son monofiléticos , pero sus relaciones exactas con otras avispas calcidas siguen sin estar claras. [15]
No se han reconocido subfamilias comúnmente aceptadas, [11] pero hay dos propuestas notables. Annecke y Doutte (1961) propusieron las subfamilias Alaptinae y Mymarinae basándose en la morfología de los gásters . Peck y col. (1964) propuso las subfamilias Gonatocerinae y Mymarinae basándose en el número de segmentos (tarsómeros) en los tarsos. Ambos sistemas incluían más categorías tribales. [16] También se propuso una subfamilia fósil para un género recuperado del ámbar canadiense. [13]
Descripción
Las moscas de hadas son insectos muy pequeños. Tienen longitudes de cuerpo de 0,13 a 5,4 mm (0,0051 a 0,2126 pulgadas), normalmente de 0,5 a 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas). [13] Sus cuerpos suelen ser de color negro, marrón o amarillo, sin la coloración metálica de algunas otras avispas. [17] Se pueden distinguir de otras avispas cálcidas por tener un patrón de suturas en forma de H, conocido como trabéculas o carinas, debajo de los ocelos frontales y los márgenes internos del ojo. [13] En raras ocasiones, las suturas también pueden extenderse detrás de los ocelos. [11] Las moscas de hadas tienen antenas largas , al menos tan largas como la cabeza y el mesosoma (parte media del cuerpo). [17] Los tórulos antenales (cuencas de las antenas) se colocan en lo alto de la cabeza y cerca de los márgenes de los ojos. Están separados por una distancia de tres a cinco veces su propio diámetro. Por el contrario, las antenas de otras avispas cálcidas están separadas solo por un diámetro. [18] En las hembras, las antenas están rematadas con segmentos en forma de garrote conocidos como clava. En los machos, las antenas son filiformes ( filiformes ). [17]
La mayoría de las moscas de las hadas poseen alas con cerdas largas (setas marginales) en los bordes. Las alas anteriores suelen tener hipoqueta. Se trata de pequeñas cerdas (setas) que apuntan claramente hacia atrás en la superficie ventral de la membrana del ala. [13]
Las moscas de hadas exhiben una variación considerable en la forma de sus alas en comparación con otras avispas cálcidas . Las alas completamente desarrolladas (macropterous) de las moscas de hadas son normalmente planas con puntas redondeadas y son varias veces más largas que anchas. Este tipo de alas generalmente exhiben variaciones interespecíficas e intergenéricas en términos de la relación de largo a ancho y la forma del contorno del ala (especialmente de las puntas y los márgenes traseros) de las alas anteriores. En algunas especies, las alas delanteras son relativamente anchas, como en el género Paranaphoidea, que tienen alas delanteras sólo dos veces y media más largas que anchas. En otras especies, las alas anteriores son extremadamente estrechas, como en Cleruchus bicilliatus, cuyas alas anteriores son unas treinta veces más largas que anchas. [19]
La curvatura de las alas anteriores, tal que es claramente convexa o con forma de cúpula, también es exhibida por al menos una especie de los géneros Cremnomymar , Mymarilla , Parapolynema y Richteria . La mayoría de estas especies habitan en ambientes particularmente duros y barridos por el viento, y la curvatura puede ayudar a absorber y retener el calor o evitar que las moscas de las hadas sean arrastradas. [19]
Las alas traseras son pediculadas (pecioladas) y muy estrechas. [17] [19] No presentan mucha variación, en contraste con las alas anteriores. Pueden variar desde estrechas y filiformes (como en los miembros del género Mymar ) hasta relativamente anchas (como en los miembros del género Paranaphoidea ). En raras ocasiones, las alas posteriores también pueden presentar curvatura, con márgenes anterior y posterior convexos o cóncavos. [19]
Algunas moscas de hadas poseen alas ligeramente reducidas (braquipteras) a muy reducidas (micropteras), mientras que otras pueden incluso estar completamente sin alas (ápteras). [17] [19] [20] La reducción o ausencia de alas suele ser exhibida por al menos un sexo (generalmente la hembra) de especies que buscan huevos del hospedador en áreas confinadas (como hojarasca, suelo o los túbulos de hongos de soporte ) . La reducción o ausencia de alas también se manifiesta en especies que habitan en hábitats ventosos como islas oceánicas o grandes alturas, en particular las especies endémicas que se encuentran en hábitats aislados o se encuentran lejos del continente más cercano. En estos hábitats, las alas solo serían un obstáculo para las moscas de hadas, por lo que están fuertemente seleccionadas en la evolución . Por ejemplo, las tres especies conocidas de moscas de hadas que se encuentran en las islas del extremo sur de Campbell y Auckland en el Pacífico suroeste y Georgia del Sur en el Atlántico sur , así como el 20% de la fauna de moscas de hadas en las islas Juan Fernández , Isla Norfolk y Lord Howe Island , no tienen alas o tienen alas cortas. Si bien las especies sin alas y de alas cortas también se pueden encontrar en islas cercanas a continentes y en hábitats continentales, generalmente constituyen solo un pequeño porcentaje del número total de especies. [19]
Debido a su pequeño tamaño, las moscas de hadas a veces pueden confundirse con miembros de las familias Aphelinidae y Trichogrammatidae , pero los miembros de estas otras familias pueden distinguirse fácilmente por tener antenas mucho más cortas. [17]
Distribución y hábitat
Las moscas de hadas son algunas de las avispas cálcidas más comunes, pero debido a su diminuto tamaño, los humanos rara vez las notan. Esta aparente invisibilidad, sus cuerpos delicados y sus alas con flecos de pelo les han valido su nombre común. [21]
Las moscas de hadas se encuentran en regiones templadas y tropicales de todo el mundo. [18] El mayor número de especies se puede encontrar en los bosques tropicales, y la mayor diversidad de géneros se encuentra en el hemisferio sur (América del Sur, Nueva Zelanda y Australia). En el Neártico (América del Norte), solo se encuentran alrededor de 28 (de alrededor de 100) géneros y 120 (de alrededor de 1424) especies. [17]
Las moscas de hadas pueden sobrevivir en todo tipo de hábitats terrestres, desde desiertos hasta selvas tropicales . [13] También se sabe que al menos cinco especies son acuáticas y habitan en estanques y arroyos de agua dulce. [22] Entre ellos se encuentra Caraphractus cinctus , que usa sus alas como remos para nadar. [23] Pueden permanecer bajo el agua hasta 15 días. [24] [25] Debido a su pequeño tamaño, tienen que salir del agua trepando por los tallos de las plantas que sobresalen de la superficie, ya que de otro modo no podrían romper la tensión superficial del agua. [26]
Ecología
Todas las moscas de hadas conocidas son parasitoides de los huevos de otros insectos. Estos huevos se depositan comúnmente en lugares ocultos, como en tejidos vegetales o bajo tierra. [11] [18] No parecen ser específicos de una especie cuando se trata de elegir hospedadores . Se sabe que algunas especies parasitan insectos de varias familias de un solo orden . Sus huéspedes más comúnmente observados son insectos pertenecientes al orden Hemiptera (chinches verdaderos), especialmente Auchenorrhyncha ( saltahojas , cigarras y aliados) y Coccoidea ( cochinillas ), [17] [27] pero esto podría deberse a que estos grupos son simplemente mejores estudió. Otras órdenes de hospedadores importantes incluyen Coleoptera (escarabajos), Diptera (moscas verdaderas), Odonata ( libélulas y aliados), Psocoptera ( piojos y aliados) y Thysanoptera (trips). Los hospedadores son conocidos definitivamente solo por una cuarta parte de los géneros conocidos. [13] [28]
Las moscas de hadas incluyen el insecto más pequeño conocido, Dicopomorpha echmepterygis de Costa Rica, cuyos machos miden solo 0,139 mm (0,0055 pulgadas) de largo. No tienen alas ni ojos, sus bocas son meros agujeros y sus antenas son simplemente manchas esféricas. Los extremos de sus patas se han modificado en ventosas para agarrar a las hembras el tiempo suficiente para fertilizarlas. [21] Sus cuerpos son más pequeños que un paramecio unicelular . [29] [30] Cuatro hombres, alineados de un extremo a otro, abarcarían casi el ancho de un punto al final de una oración impresa típica. [13] Las hembras de la especie, sin embargo, son las típicas moscas de hadas y son mucho más grandes. [6] [21] El insecto volador más pequeño es también un mymarid, Kikiki huna de Hawai , que mide 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo. [31]
Historia de vida
Se sabe muy poco de las historias de vida de las moscas de las hadas, ya que solo unas pocas especies se han observado extensamente. [17] Suelen ser solitarios, pero a veces pueden ser gregarios. [11] [18]
El apareamiento ocurre inmediatamente después de la emergencia. No se han observado comportamientos de cortejo y cada hembra es fertilizada por un solo macho. [16] Una vez fertilizados, los machos pierden interés en la hembra y la hembra también pierde interés en un mayor apareamiento. [15] En Prestwichia aquatica , se ha informado que el apareamiento ocurre antes de la emergencia de las hembras de los huevos del hospedador. [16] En P. aquatica , Anagres incarnatus , A. armatus y Anaphes nipponicus , las hembras superan en número a los machos en cada nidada; de dos a 20 hembras por cada macho. [16] En Polynema striaticorne , es lo opuesto, con los machos superando en número a las hembras en una proporción de tres o más a uno. En Anagrus atomus , A. frequens , A. optabilis , A. perforator y Polynema euchariformes , las hembras son capaces de reproducirse sin machos ( partenogénesis ), aunque a veces se pueden encontrar machos dentro de las crías. [16] [32]
La esperanza de vida adulta de las moscas de hadas es muy corta. [16] Los adultos de Stethynium (machos y hembras) pueden vivir sólo uno o dos días. En Anagrus , dependiendo de la especie, la vida útil varía de tres a 11 días. [33] Cada hembra fertilizada (o partenógena) puede poner un máximo de unos 100 huevos. [32] El acceso a los alimentos puede prolongar la vida útil y aumentar la fecundidad. [33] En Gonatocerus, si no se encuentran huéspedes, las hembras pueden reabsorber los huevos, reteniendo energía para vivir más tiempo y aumentando las posibilidades de encontrar un huésped. [34]
Después de emerger, las hembras buscan rápidamente huevos hospedadores adecuados golpeando con sus antenas los tallos o cortezas de las plantas. Cuando se encuentra una cicatriz reveladora dejada por los insectos que ponen huevos, una hembra insertará sus antenas en el hueco y verificará si los huevos son adecuados. Si es así, empujará su ovipositor en todos los huevos y pondrá sus propios huevos adentro en rápida sucesión. Mantiene el contacto con cada uno de los huevos con sus antenas mientras hace esto. [16] [32]
La mayoría de las moscas de hadas requieren un desarrollo suficiente en los embriones dentro de los huevos, pero no demasiado, antes de atacarlos, ya que su descendencia no puede madurar si los huevos son demasiado nuevos o si los embriones en el interior están demasiado avanzados. Los embriones hospedadores más viejos son aparentemente más difíciles de digerir por las larvas de la mosca de las hadas, [15] pero hay excepciones. Algunas especies de Polynema pueden atacar a los embriones en varias etapas de desarrollo. Se ha registrado que producen tres generaciones sucesivas en una sola cría de la saltamontes Ceresa . [dieciséis]
Todas las moscas de hadas poseen huevos elipsoides con un tallo largo y afilado. Se desarrollan rápidamente una vez puestas y pueden eclosionar en seis horas a dos días. [15] Se pueden producir varias generaciones en un año, a menudo en diferentes hospedadores. [13]
Las moscas de hadas tienen de dos a cuatro estadios larvarios, todos aparentemente sin espiráculos ni tráqueas funcionales . [11] [35] La metamorfosis ocurre completamente dentro del huevo huésped. [13] Son peculiares de los insectos que presentan una metamorfosis completa (holometabolismo) en el sentido de que producen dos tipos distintos de estadios larvarios antes de la pupación . En algunas moscas de hadas, como Anaphes , el primer estadio es una larva "mymmariform" muy móvil. El segundo estadio, sin embargo, es una larva en forma de saco completamente inmóvil sin segmentos, espinas o setas discernibles. En otras moscas de hadas, como Anagrus , esto se invierte. El primer estadio es inmóvil, mientras que el segundo estadio es una larva "histriobdellid" muy distintiva y muy activa. [13] [32] Al menos un estadio de las larvas es capaz de invernar cuando se pone en estaciones más frías. [11] [16]
Importancia economica
Las moscas de hadas se han utilizado para el control biológico de diversas plagas de cultivos. [36] Son especialmente valorados por su capacidad para localizar los huevos de sus huéspedes. [37] De las moscas de hadas, el género cosmopolita Anagrus es el más prometedor, ya que puede parasitar una amplia gama de huéspedes. Se conocen al menos diez casos de introducciones exitosas de moscas de hadas para controlar plagas. [15]
En Hawái , Anagrus optabilis se ha utilizado con éxito para controlar el saltamontes de la caña de azúcar ( Perkinsiella saccharicida ). [32] Anagrus epos también se ha utilizado anteriormente de forma eficaz contra el saltahojas de la uva ( Erythroneura elegans ) y el saltahojas abigarrado ( Erythroneura variabilis ). [38] [39] Al principio, tuvo un éxito limitado, ya que las avispas morían en invierno por falta de huéspedes. La plantación de moras silvestres ( Rubus spp.) Cerca de viñedos en California trajo consigo la saltahojas de mora ( Dikrella cruentata ). Aunque no es una plaga, D. cruentata demostró ser un huésped suficiente para A. epos en invierno, lo que les permitió sobrevivir hasta el año siguiente. [15] [37] También se ha demostrado que son capaces de pasar el invierno en chicharritas ( Edwardsiana prunicola ). [40]
Gonatocerus triguttatus , Gonatocerus tuberculifemur y Anagrus epos (que probablemente es un complejo de especies ) también se estudiaron para su posible uso en el control de los francotiradores de alas vidriosas ( Homalodisca vitripennis ) en California . [39] [41] [42] Gonatocerus triguttatus y Gonatocerus ashmeadi fueron finalmente introducidos en California en 2000. Resultó ser muy exitoso, causando una disminución de aproximadamente el 90% en las poblaciones de francotiradores de alas vidriosas. [43]
En 2005, Gonatocerus ashmeadi se utilizó contra francotiradores invasores de alas vidriosas en Tahití y Moorea de la Polinesia Francesa . Nuevamente, fue muy efectivo, reduciendo la densidad de plagas en aproximadamente un 95% en solo un año después de la introducción. [44] Posteriormente también se lanzó en las Islas de la Sociedad , las Marquesas y las Islas Australes , donde se obtuvieron resultados similares contra francotiradores de alas cristalinas. [45]
En Sudáfrica, Anaphes nitens se introdujo con mucho éxito para controlar el escarabajo del hocico del eucalipto ( Gonipterus scutellatus ). [15] En Australia e Israel, miembros del género Stethynium fueron investigados en 2006 como posibles agentes de control biológico para plagas de cultivos que forman agallas, como Ophelimus maskelli . [33]
Registro fósil
Las moscas de hadas están bien representadas en inclusiones fósiles de ámbar , copal y fósiles de compresión . Sus fósiles se han encontrado desde el Cretácico Temprano hasta la época del Mioceno . De hecho, es la única familia de avispas cálcidas que se conoce definitivamente que se remonta al período Cretácico . [46]
Fernand Anatole Meunier describió por primera vez los fósiles paleógenos y neógenos de moscas de hadas en 1901 . Describió fósiles de moscas de hadas del ámbar báltico , la mayoría de ellas del Eoceno (55 a 37 millones de años). En 1973, Richard L. Doutt describió varias especies del ámbar Burdigalian (20 a 15 millones de años) de México. En 1983, Csaba Thuróczy describió otra especie del ámbar báltico, esta vez del Oligoceno (33 a 23 millones de años). Y en 2011, John T. Huber y Dale Greenwalt describen fósiles fairyfly de los esquistos bituminosos de la Formación Kishenehn ( Luteciano edad) de Montana . Estos comprendían dos nuevos géneros y seis especies. [47]
Las moscas de hadas del Cretácico son mucho más raras. En 1975, Carl M. Yoshimoto describió cuatro géneros de moscas de hadas del Cretácico de Canadá. En 2011, John T. Huber y George Poinar Jr.describieron el género Myanmymar del ámbar birmano . Se remonta a la edad del Cenomaniano Inferior (alrededor de 100 millones de años) del Cretácico Superior y es la mosca de hadas (y avispa calcida) más antigua conocida. Son sorprendentemente muy similares a los géneros modernos, aunque con un mayor número de segmentos flagelares y venas de las alas anteriores más largas. Las características del fósil (teniendo en cuenta los descubrimientos anteriores de Yoshimoto) los llevaron a concluir que las hadas pueden haber existido mucho antes que Myanmymar , o pueden haberse diversificado rápidamente durante ese período de tiempo. [46]
Genera
Mymaridae incluye los géneros que se enumeran a continuación. [48] [49] Allomymar y Metanthemus se han transferido a la familia Aphelinidae . El fósil gen] us Protooctonus se ha transferido a la familia Mymarommatidae y ahora se considera sinónimo de Archaeromma . [7] Nesopolynema , Oncomymar y Scolopsopteron fueron sinonimizados con el género Cremnomymar en 2013, y sus especies ahora se clasifican en este último. [19] Shillingsworthia también está excluido, ya que era un concepto hipotético irónico de una especie del planeta Júpiter , "descrito" por Alexandre Arsène Girault en 1920 para desacreditar a su colega Johann Francis Illingworth . [7] [50] Los
géneros marcados con † están extintos.
Géneros existentes
- Acanthomymar Subba Rao , 1970
- Acmopolynema Ogloblin, 1946
- Acmotemnus Noyes y Valentine, 1989
- Agalmopolynema Ogloblin, 1960
- Alaptus Ferrière, 1930
- Allanagrus Noyes y Valentine, 1989
- Allarescon Noyes y Valentine, 1989
- Anagroidea Girault, 1915
- Anagrus Haliday, 1833
- Anaphes Haliday, 1833
- Anneckia Subba Rao, 1970
- Apoxypteron Noyes y Valentine, 1989
- Arescon Walker, 1846
- Australomymar Girault, 1929
- Baburia Hedqvist, 2004
- Bakkendorfia Mathot, 1966
- Boccacciomymar Triapitysn y Berezovskiy, 2007
- Borneomymar Huber, 2002
- Boudiennyia Girault, 1937
- Bruchomymar Ogloblin, 1939
- Caenomymar Yoshimoto, 1990
- Callodicopus Ogloblin, 1955
- Camptoptera Förster, 1856
- Camptopteroides Viggiani, 1974
- Caminante de Caraphractus , 1846
- Ceratanaphes Noyes y Valentine, 1989
- Chaetomymar Ogloblin, 1946
- Chrysoctonus Mathot, 1966
- Cleruchoides Lin y Huber, 2007
- Cleruchus Enock, 1909
- Cnecomymar Ogloblin, 1963
- Cremnomymar Ogloblin, 1952
- Cybomymar Noyes y Valentine, 1989
- Dicopomorpha Ogloblin, 1955
- Dicopus Enock, 1909
- Dorya Noyes y Valentine, 1989
- Entrichopteris Yoshimoto, 1990
- Eofoersteria Mathot, 1966
- Erdosiella Soyka, 1956
- Erythmelus Enock, 1909
- Eubroncus Yoshimoto, Kozlov y Trjapitzin, 1972
- Eucleruchus Ogloblin, 1940
- Eustochomorpha Girault, 1915
- Eustochus Haliday, 1833.
- Formicomymar Yoshimoto, 1990
- Gahanopsis Ogloblin, 1946
- Ganomymar De Santis, 1972
- Gonatocerus Nees, 1834
- Haplochaeta Noyes y Valentine, 1989
- Himopolynema Taguchi, 1977
- Idiocentrus Gahan, 1927
- Ischiodasys Noyes y Valentine, 1989
- Kalopolynema Ogloblin, 1960
- Kikiki Huber y Beardsley, 2000
- Kompsomymar Lin y Huber, 2007
- Krokella Huber, 1993
- Kubja Subba Rao, 1984
- Litus Haliday, 1833
- Macrocamptoptera Girault, 1910
- Malfattia Meunier, 1901
- Mimalaptus Noyes y Valentine, 1989
- Mymar Curtis, 1829
- Mymarilla Westwood, 1879
- Myrmecomymar Yoshimoto, 1990
- Narayanella Subba Rao, 1976
- Neolitus Ogloblin, 1935
- Neomymar Crawford, 1913
- Neostethynium Ogloblin, 1964
- Neserythmelus Noyes y Valentine, 1989
- Nesomymar Valentine, 1971
- Nesopatasson Valentine, 1971
- Notomymar Doutt y Yoshimoto, 1970
- Omyomymar Schauff, 1983
- Ooctonus Haliday, 1833.
- Waterhouse Palaeoneura , 1915
- Palaeopatasson Witsack, 1986
- Paracmotemnus Noyes y Valentine, 1989
- Paranaphoidea Girault, 1913
- Parapolynema Fidalgo, 1982
- Parastethynium Lin & Huber en Lin, Huber & La Salle, 2007
- Platyfrons Yoshimoto, 1990
- Platypolynema Ogloblin, 1960
- Platystethynium Ogloblin, 1946
- Polynema Haliday, 1833.
- Polynemoidea Girault, 1913
- Polynemula Ogloblin, 1967
- Prionaphes Hincks, 1961
- Pseudanaphes Noyes y Valentine, 1989
- Pseudocleruchus Donev y Huber, 2002
- Ptilomymar Annecke y Doutt, 1961
- Restisoma Yoshimoto, 1990
- Richteria Girault, 1920
- Esquizofragma Ogloblin, 1949
- Scleromymar Noyes y Valentine, 1989
- Steganogaster Noyes y Valentine, 1989
- Stephanocampta Mathot, 1966
- Stephanodes Enock, 1909
- Stethynium Enock, 1909
- Tanyostethium Yoshimoto, 1990
- Tetrapolynema Ogloblin, 1946
- Tinkerbella Huber y Noyes, 2013
- Zelanaphes Noyes y Valentine, 1989
Géneros fósiles
Estos géneros fósiles se clasifican en Mymaridae: [7] [46]
- † Carpenteriana Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense , Campaniano
- † Enneagmus Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
- † Eoanaphes Huber en Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation , Montana, Lutetian
- † Eoeustochus Huber en Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation, Montana, Lutetian
- † Macalpinia Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
- † Myanmymar Huber en Huber & Poinar, 2011 ámbar birmano , cenomaniano
- † Triadomerus Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
Recolección y preservación
A pesar de su relativa abundancia, las moscas de hadas son impopulares entre los recolectores de insectos modernos debido a la gran dificultad para recolectarlas. [6] [51] Como una de las familias de insectos menos conocidas, todavía hay una gran cantidad de información a la espera de ser descubierta sobre las moscas de hadas. [13] Esta es un área de la entomología en la que un naturalista aficionado aún puede hacer contribuciones significativas. [25]
En el siglo XIX, Curtis describió los métodos por los cuales Haliday recolectaba moscas de hadas de la siguiente manera: [52]
Los himenópteros diminutos se recolectan mejor golpeando y barriendo con una red hecha de gasa fina, y el Sr. Haliday me recomienda que los recolecte en púas y luego que vacíe su contenido en agua caliente, por lo que sus alas son naturalmente expandido; luego introduciendo una cartulina debajo de ellas para sacarlas del agua, arreglando las patas y alas cuando sea necesario con un lápiz de pelo de camello, y dejándolas sobre la cartulina hasta que estén secas, luego se pueden quitar con una navaja, y engomado sobre las puntas de pequeños trozos de papel de dibujo o cartulina de forma triangular alargada.
- John Curtis , Entomología británica vol. 7 (1830) [52]
El mejor método de recolección moderno es usar trampas Malaise . Requiere poco mantenimiento y puede recolectar insectos en gran abundancia. Otros métodos efectivos incluyen trampas amarillas , redes de barrido y trampas de succión . La recolección directa de la hojarasca con embudos Berlese también puede dar como resultado muestras que no se pueden recolectar por otros medios. [6] [53]
La crianza es también otro método que puede traer la mayor cantidad de recompensas. Esto se puede hacer con huevos de hospedadores silvestres o huevos de hospedadores preparados en laboratorio que se exponen en hábitats adecuados en el exterior. Luego, pueden tomarse después de que haya pasado una cantidad de tiempo suficiente y examinarse en busca de moscas de hadas en desarrollo. Con este método, es posible observar la historia de vida y determinar los huéspedes de especies particulares de moscas de hadas descubiertas. [6]
La preservación es un problema para las moscas de hadas (y otras pequeñas avispas cálcidas). Sus diminutos tamaños requieren métodos especiales. Las muestras deben secarse, si se recogen en húmedo, por ejemplo, si se utiliza alcohol etílico como agente letal . El secado puede hacer que las muestras sean extremadamente frágiles, por lo que también se debe tener cuidado adicional para no desintegrarlas. El montaje de muestras (preferiblemente en portaobjetos permanentes) también requiere mucho tiempo y práctica. Están engomados o pegados en tarjetas, ya que no se pueden montar en alfileres como insectos más grandes. [6] [54]
Ver también
- Control biológico de plagas
- Avispa parasitoide
- Trichogrammatidae
- Huevo trófico
Referencias
- ^ Polaszek, Andrew. "Mosca de hadas (Himopolynema), avispa parasitoide" . Colección Bienvenida . Consultado el 15 de septiembre de 2019 .
- ^ a b Kari T. Ryder Wilkie. "Francis Walker (1809-1874)" . Proyecto Global Ant - Taxonomistas de hormigas del mundo. Archivado desde el original el 27 de marzo de 2012 . Consultado el 28 de septiembre de 2011 .
- ^ L. Watson; MJ Dallwitz. "Insectos británicos" . DELTA, Instituto de Botánica, Academia de Ciencias de China.
- ^ a b Alexander Henry Haliday (1833). "Un ensayo sobre la clasificación de los himenópteros parásitos de Gran Bretaña que se corresponden con los Ichneumones minuti de Linnaeus" . La Revista Entomológica . 1 .
- ^ "Cartas de Francis Walker a Alexander Henry Haliday (29 de julio de 1839)" . Wikisource.
- ^ a b c d e f g John S. Noyes. " Dicopomorpha echmepterygis (hembra con inserto macho" grande ". Espécimen de museo montado en portaobjetos)" . Base de datos universal de Chalcidoidea, Museo de Historia Natural.
- ^ a b c d e John T. Huber (2005). "El género y la derivación de nombres de grupos de género en Mymaridae y Mymarommatidae (Hymenoptera)" (PDF) . Acta Soc. Zool. Bohem . 69 : 167-183. ISSN 1211-376X .
- ^ Francis Walker (1846). "Descripciones de Mymaridae" . Anales y Revista de Historia Natural . XVIII (116): 49–54. doi : 10.1080 / 037454809494390 .
- ^ "Helios" . Museo de Historia Natural.
- ^ Vladimir E. Gokhman (2009). Cariotipos de himenópteros parásitos . Saltador. pag. 60. ISBN 978-1-4020-9806-2.
- ^ a b c d e f g BR Pitkin (7 de junio de 2004). "Mymaridae" . Base de datos universal de Chalcidoidea, Museo de Historia Natural.
- ^ John T. Huber. "Los linajes basales de Mymaridae (himenópteros) y descripción de un nuevo género, Borneomymar " (PDF) . En George Melika; Csaba Thuróczy (eds.). Avispas parásitas: evolución, sistemática, biodiversidad y control biológico .
- ^ a b c d e f g h yo j k l Elisabetta Chiappini; John T. Huber (2008). "Moscas de hadas (Hymenoptera: Mymaridae)" . En John L. Capinera (ed.). Enciclopedia de entomología . Saltador. págs. 1407–1409. ISBN 978-1-4020-6242-1.
- ^ SV Triapitsyn (2003). "Revisión de Mymaridae (Hymenoptera, Chalcidoidea) de Primorskii Krai: género Erthymelus Enock, con notas taxonómicas sobre algunas especies extralimitales" (PDF) . Entomólogo del Lejano Oriente (126): 1-44. ISSN 1026-051X .
- ^ a b c d e f g James T. Cronin; Donald R. Strong (1990). "Biología de Anagrus delicatus (Hymenoptera: Mymaridae), un huevo parasitoide de Prokelisia marginata (Homoptera: Delphacidae)" (PDF) . Ana. Entomol. Soc. Am . 83 (4): 846–854. doi : 10.1093 / aesa / 83.4.846 . Archivado desde el original (PDF) el 18 de junio de 2010 . Consultado el 1 de octubre de 2011 .
- ^ a b c d e f g h yo "Lista de verificación de Mymaridae registrados en el Reino Unido" . Setos, setos y arcenes de Gran Bretaña e Irlanda.
- ^ a b c d e f g h yo John T. Huber (1997). "Capítulo 14. Mymaridae" . En Gary AP Gibson; John Theodore Huber; James Braden Woolley (eds.). Claves comentadas para los géneros del Neártico Chalcidoidea (Hymenoptera) . Serie NRC. NRC Research Press, Consejo Nacional de Investigación de Canadá. págs. 499–500. ISBN 978-0-660-16669-8.
- ^ a b c d Laboratorio de Entomología Sistemática. "Familia Mymaridae" . Servicio de Investigación Agrícola, Departamento de Agricultura de los Estados Unidos. Archivado desde el original el 10 de septiembre de 2006.
- ^ a b c d e f g John T. Huber (2013). "Redescripción de Mymarilla Westwood, nuevas sinonimias bajo Cremnomymar Ogloblin (Hymenoptera, Mymaridae) y discusión de alas inusuales" (PDF) . ZooKeys (345): 47–72. doi : 10.3897 / zookeys.345.6209 . PMC 3817442 . PMID 24194664 .
- ^ Richard L. Doutt; Carl M. Yoshimoto (1970). "Hymenoptera: Chalcidoidea: Mymaridae de Georgia del Sur" (PDF) . Monografía de insectos del Pacífico . 23 : 293-294.
- ^ a b c John T. Huber (2009). "Biodiversidad de himenópteros" . En Robert G. Foottit; Peter Holdridge Adler (eds.). Biodiversidad de insectos: ciencia y sociedad . John Wiley e hijos. pag. 313. ISBN 978-1-4051-5142-9.
- ^ Seguei V. Triapitsyn; Ranyse B. Querino; Malu CB Feitosa (2008). "Una nueva especie de Anagrus (Hymenoptera: Mymaridae) de Amazonas, Brasil" (PDF) . Entomología neotropical . 37 (6): 681–684. doi : 10.1590 / s1519-566x2008000600009 . PMID 19169556 .
- ^ Gilbert Waldbauer (2008). Un paseo por el estanque: insectos dentro y sobre el agua . Prensa de la Universidad de Harvard. págs. 25-26. ISBN 978-0-674-02765-7.
- ^ JS Noyes ; EW Valentine (1989). "Mymaridae (Insecta: Hymenoptera) - introducción y revisión de géneros" (PDF) . Fauna de Nueva Zelanda (17).
- ^ a b Carl M. Yoshimoto (1990). Una revisión de los géneros de Mymaridae del Nuevo Mundo (Hymenoptera; Chalcidoidea) . Prensa de Sandhill Crane. ISBN 978-1-877743-04-7.
- ^ Mayo Berenbaum (1993). Noventa y nueve gusanos, ácaros y masticadores más . Prensa de la Universidad de Illinois. pag. 189. ISBN 978-0-252-06322-0.
- ^ Cedric Gillott (1999). Entomología . Saltador. pag. 334. ISBN 978-0-306-44967-3.
- ^ E. Baquero; R. Jordana (2005). "Contribución al conocimiento de la familia Mymaridae Haliday (Hymenoptera: Chalcidoidea) en Navarra, Norte de la Península Ibérica" (PDF) . Boln. Asoc. Esp. Ent . 26 (3–4): 75–91. ISSN 0210-8984 .
- ^ John R. Meyer. "El insecto más pequeño del mundo" . Facultad de Agricultura y Ciencias de la Vida, Universidad Estatal del Norte de California.
- ^ Christer Björkman; Karl Gotthard; Mats W. Pettersson (2009). "Tamaño del cuerpo" . En Timothy D. Schowalter (ed.). Ecología de insectos: un enfoque ecosistémico . Prensa académica. pag. 115. ISBN 978-0-12-374144-8.
- ^ John T. Huber; John W. Beardsley (2000). "Un nuevo género de Fairyfly, Kikiki , de las islas hawaianas (Hymenoptera: Mymaridae)" (PDF) . Proc. Entomol hawaiano. Soc . 34 : 65–70.
- ^ a b c d e Kazi Abdus Sahad (1984). "Biología de Anagrus optabilis (Perkins) (Hymenoptera, Mymaridae), un parasitoide de huevo de los saltamontes delphacid" (PDF) . ESAKIA (22): 129-144.
- ^ a b c John T. Huber; Zvi Mendel; Alex Protasov; John La Salle (2006). "Dos nuevas especies australianas de Stethynium (Hymenoptera: Mymaridae), parasitoides larvarios de Ophelimus maskelli (Ashmead) (Hymenoptera: Eulophidae) en Eucalyptus " (PDF) . Revista de Historia Natural . 40 (32–34): 1909–1921. CiteSeerX 10.1.1.514.8818 . doi : 10.1080 / 00222930601046428 . ISSN 1464-5262 . S2CID 53459798 .
- ^ Mark S. Hoddle; Nic Irvin; Robert Luck (2005-2006). "Parasitismo de por vida realizado de masas de huevos de francotirador de alas vidriosas por Gonatocerus ashmeadi " (PDF) . Agricultura de California .[ enlace muerto permanente ]
- ^ Jean-Yves Rasplus; Claire Villemant; Maria Rosa Paiva; Gérard Delvare; Alain Roques (2010). "Himenópteros" . BioRisk . 4 (2): 669–776. doi : 10.3897 / biorisk.4.55 .
- ^ E. Baquero; R. Jordana (1999). "Especie de Anagrus Haliday, 1833 (Hymenoptera, Chalcidoidea, Mymaridae) en Navarra (España)" . Miscellania Zoologica . 22 (2): 39–50. ISSN 0211-6529 .
- ^ a b Richard E. Warner; Kathleen M. Hendrix (1984). Sistemas ribereños de California: ecología, conservación y manejo productivo . Prensa de la Universidad de California. págs. 978–979. ISBN 978-0-520-05035-8.
- ^ Charles H. Pickett; Lloyd T. Wilson; Daniel González; Donald L. Flaherty (1987). "Control biológico del saltahojas de la uva variegada" (PDF) . Agricultura de California (julio-agosto): 146–16.
- ^ a b Joseph G. Morse; Richard Stouthammer; Serguei V. Triapitsyn; David JW Morgan; Jonathan M. Lytle; Rodrigo Krugner (2005-2006). "El complejo de Anagrus epos : una fuente probable de agentes biológicos clásicos eficaces para el control del francotirador de alas vidriosas" (PDF) . Archivado desde el original (PDF) el 3 de mayo de 2014 . Consultado el 1 de octubre de 2011 . Cite journal requiere
|journal=
( ayuda ) - ^ L. Ted Wilson; Charles H. Pickett; Donald L. Flaherty; Teresa A. Bates (1989). "Árboles de poda francesa: refugio del parásito saltahojas de la uva" . Agricultura de California (marzo-abril): 7–8.
- ^ Sergeui V. Triapitsyn; Phil A. Phillips (2000). "Primer registro de Gonatocerus triguttatus (Hymenoptera: Mymaridae) de huevos de Homalodisca coagulata (Homoptera: Cicadellidae) con notas sobre la distribución del huésped" (PDF) . Entomólogo de Florida . 83 (2): 200–203. doi : 10.2307 / 3496158 . JSTOR 3496158 .
- ^ Eduardo G. Virla; Guillermo A. Logarzo; Walker A. Jones; Sergeui Triapitsyn (2005). "Biología de Gonatocerus tuberculifemur (Hymenoptera: Mymaridae), un parasitoide del huevo del tirador , Tapajosa rubromarginata (Hemiptera: Cicadellidae)" . Entomólogo de Florida . 88 (1): 67–71. doi : 10.1653 / 0015-4040 (2005) 088 [0067: BOGTHM] 2.0.CO; 2 .
- ^ Andrew Paul Gutierrez; Luigi Ponti; Mark Hoddle; Rodrigo PP Almeida; Nicola A. Irvin (2011). "Distribución geográfica y abundancia relativa del francotirador invasivo de alas vidriosas: efectos de la temperatura y los parasitoides del huevo" (PDF) . Reinar. Entomol . 40 (4): 755–769. doi : 10.1603 / EN10174 . PMID 22251675 . S2CID 2530798 .
- ^ Hoddle MS; Grandgirard J .; Petit J .; Roderick GK; Davies N. (2006). "Francotirador de alas vidriosas Ko'ed - Primera ronda - en la Polinesia Francesa". Noticias e información de Biocontrol . 27 (3): 47N – 62N.
- ^ Julie Grandgirard; Mark S. Hoddle; Jerome N. Petit; George K. Roderick; Neil Davies (2008). "Control biológico clásico del francotirador de alas vítreas, Homalodisca vitripennis , por el parasitoide del huevo Gonatocerus ashmeadi en la Sociedad, Archipiélagos Marquesas y Australes de la Polinesia Francesa". Control biológico . 48 (2): 155-163. doi : 10.1016 / j.biocontrol.2008.10.005 .
- ^ a b c George Poinar Jr .; John T. Huber (2011). "Un nuevo género de Mymaridae fósil (Hymenoptera) del ámbar del Cretácico y clave para los géneros de mymarid del Cretácico" . En DE Shcherbakov; MS Engel; MJ Sharkey (eds.). Avances en la sistemática de insectos fósiles y modernos: en honor a Alexandr Rasnitsyn . ZooKeys . Pensoft. págs. 461–472. doi : 10.3897 / zookeys.130.1241 . PMC 3260775 . PMID 22259293 .
- ^ John T. Huber; Dale Greenwalt (2011). "Mymaridae (Hymenoptera) fósil de compresión de lutitas bituminosas de Kishenehn, con descripción de dos nuevos géneros y revisión de géneros de ámbar terciario" . En DE Shcherbakov; MS Engel; MJ Sharkey (eds.). Avances en la sistemática de insectos fósiles y modernos: en honor a Alexandr Rasnitsyn . ZooKeys . Pensof t. págs. 473–494. doi : 10.3897 / zookeys.130.1717 . PMC 3260776 . PMID 22259294 .
- ^ Simon van Noort. "Mymaridae: Clasificación de avispas mymarid afrotropicales" . WaspWeb, Museo Sudafricano Iziko.
- ^ John T. Huber; Gennaro Viggiani; Ricardo Jesu (2009). "Orden Hymenoptera, familia Mymaridae" (PDF) . Fauna de artrópodos de los Emiratos Árabes Unidos . 2 : 270-297.
- ^ AA Girault (1920). "Algunos insectos nunca antes vistos por la humanidad" (PDF) . Cite journal requiere
|journal=
( ayuda ) - ^ Peter Charles Barnard (1999). Identificación de insectos y arácnidos británicos: una bibliografía comentada de obras clave . Prensa de la Universidad de Cambridge. pag. 293. ISBN 978-0-521-63241-6.
- ^ a b John Curtis (1830). Entomología británica: son ilustraciones y descripciones de los géneros de insectos que se encuentran en Gran Bretaña e Irlanda: contienen figuras coloreadas de la naturaleza de las especies más raras y hermosas, y en muchos casos de las plantas en las que se encuentran . 7 .
- ^ Ankita Gupta; J. Poorani (2008). "Nuevos registros de distribución y hospedante de Chalcidoidea (Insecta: Hymenoptera) de varias partes de la India" . Lista de verificación . 4 (4): 410–414. doi : 10.15560 / 4.4.410 .
- ^ COMO Packard Jr. (1870). Guía para el estudio de insectos . Agencia del Libro del Naturalista. pag. 115.
enlaces externos
- USDA Mymaridae
- Imágenes Ponentes
- Base de datos universal de Chalcidoidea
- Control biológico del GWSS utilizando un Mymarid en la Polinesia Francesa