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Fluke de hígado gigante
F. magna adult.jpg
clasificación cientifica editar
Reino:Animalia
Filo:Platelmintos
Clase:Rhabditophora
Pedido:Plagiorchiida
Familia:Fasciolidae
Género:Fascioloides
Especies:
F. magna
Nombre binomial
Fascioloides magna
Bassi, 1875

Fascioloides magna , también conocido como golpe de suerte gigante hepática , duela hepática grande de América o ciervos casualidad , es trematodo parásito que se produce en salvajes y domésticos rumiantes en América del Norte y Europa. Los trematodos adultos ocurren en el hígado del huésped definitivo y se alimentan de sangre. Los trematodos maduros miden de 4 a 10 cm de largo x 2 a 3,5 cm de ancho, y tienen un cuerpo aplanado dorso ventralmente ovalado con ventosa oral y ventral . Las aletas son de color marrón rojizo y están cubiertas por tegumento . Al igual que con otros trematodos digeneanos , el ciclo de vida incluye la fase intramolusca en los caracoles. [1] [2] El parásito se distribuye actualmente en rumiantes salvajes en América del Norte y Europa, incluidos Austria, Canadá, República Checa, Croacia, Alemania, Hungría, Italia, Polonia, Serbia, Eslovaquia y Estados Unidos. [3]

Historia [ editar ]

Fascioloides magna es esencialmente de origen norteamericano, pero el parásito se introdujo en Europa con animales de caza importados en la segunda mitad del siglo XIX. A pesar de ser originario de América del Norte, la casualidad se describió por primera vez en Italia . [4] En 1875, Bassi observó muertes masivas de ciervos rojos en el Parque Real (ahora Parque Regional La Mandria ) cerca de Torino , Italia. Los signos fueron similares a la conocida fasciolosis en ovejas. Lo llamó Distomum magnum . El autor cree que el parásito se introdujo en el parque en wapiti importado de los Estados Unidos en 1865 [5].La mayoría de los trabajadores no aceptaron la especie de Bassi debido a su mala descripción. De 1882 a 1892, la casualidad se registró en diferentes áreas de los Estados Unidos y muchos autores la describieron por separado. Más tarde, Stiles (1894) señaló que los hallazgos estadounidenses son idénticos a las especies descritas anteriormente por Bassi. Stiles hizo una descripción morfológica completa de la platija adulta y la llamó Fasciola magna (Bassi 1875) Stiles 1894. [4] En 1917, Ward demostró que debido a la falta del cono anterior distintivo y al hecho de que la vitellaria está confinada a la región ventral a las ramas intestinales , estableció un nuevo género Fascioloides y lo renombró Fascioloides magna(Bassi 1875) Ward 1917. [6] En 1895, Stiles sugirió que el ciclo de vida del trematodo es muy similar al de Fasciola hepatica , es decir, incluye un caracol acuático como huésped intermedio. Dio una descripción comparativa del huevo y el milagro de la platija. [7] Sin embargo, los primeros huéspedes intermediarios de F. magna no se publicaron hasta la década de 1930. El ciclo de vida completo de F. magna , incluida una descripción de todos los estadios larvales, fue descrito por Swales (1935) en Canadá. [4]

Ciclo de vida [ editar ]

El huevo de F. magna .

El ciclo de vida de F. magna es relativamente complejo y similar al desarrollo del parásito relacionado, F. hepatica . Swales (1935), Erhardová-Kotrlá (1971) dieron una descripción detallada del ciclo de vida de F. magna , y Pybus (2001) la revisó. [1] [2] [4]

Las cercarias de F. magna desprendidas del caracol.

Los trematodos adultos se presentan en pares o grupos dentro de una cápsula fibrosa en el parénquima hepático del hospedador definitivo. Los trematodos maduros liberan huevos que se acumulan en la cavidad de la cápsula. La cápsula contiene una gran masa de huevos y tiene conexiones de conductos a los conductos biliares. Los huevos pasan junto con la bilis al sistema colector de bilis, ingresan al intestino delgado y abandonan el hospedador definitivo junto con las heces. Los huevos que se excretan en las heces al medio ambiente no están desarrollados y se embrionan fuera del hospedador. Varios factores físico-químicos, especialmente temperatura, humedad y tensión de oxígeno., se sabe que influyen en la embrión. Durante la embrión del huevo, una larva llamada miracidio se desarrolla a partir de células germinales. Miracidio completamente desarrollado libera el opérculo del huevo usando varias proteasas. El período de embrión varía de 27 a 44 días en condiciones naturales. Los miracidios ciliados eclosionan en el agua y buscan activamente hospedadores intermedios adecuados que son caracoles de agua dulce de la familia Lymnaeidae . Después de adherirse a un caracol huésped adecuado, el miracidio penetra en el cuerpo del caracol. Después de desprenderse de su capa de células ciliadas, se le llama esporocisto . Los esporocistos se encuentran en el pie, el cuerpo del caracol, las glándulas digestivas, los órganos reproductores y el saco pulmonar.del caracol. Los esporocistos contienen células germinales que dan lugar a 1 a 6 redias madre (una forma de larva de trematodo con un succionador oral). Las redias madre desarrolladas se liberan del esporocisto y migran a las glándulas digestivas, los órganos renales, los órganos reproductores y el saco pulmonar del cuerpo del caracol. Cada redia madre puede producir asexualmente hasta 10 rediae hijas. Sin embargo, sólo de 3 a 6 hijas rediae completan su desarrollo y dejan a la madre rediae. A su vez, cada redia hija puede producir de 1 a 6 cercarias.en caracoles infectados experimentalmente y 16-22 cercarias en condiciones naturales. Las cercarias emergen de las redias y maduran generalmente en las glándulas digestivas del caracol. Las cercarias maduras emergen espontáneamente del caracol huésped y nadan activamente en el agua hasta dos horas antes de enquistarse en la vegetación. Después del enquistamiento, los trematodos se denominan metacercarias. El desarrollo dentro del caracol toma de 40 a 69 días, dependiendo de la temperatura y la especie de caracol. El hospedador definitivo ingiere vegetación que contiene las metacercarias. En el estómago y el intestino, las metacercarias se estimulan para que emerjan del quiste ( excystation ). Los trematodos juveniles recién excitados penetran en la pared del intestino y migran a la cavidad abdominal. Los trematodos juveniles penetran en la cápsula de Glissondel hígado y continúan migrando en el tejido hepático. Rara vez los trematodos juveniles penetran en otros órganos, como los pulmones o los riñones. En estos órganos, sin embargo, los trematodos no sobreviven y no alcanzan la madurez. En el hígado, los trematodos migran dentro del parénquima para buscar otro trematodo. Si la platija se encuentra con otra, dejan de moverse y la cápsula fibrosa se forma a su alrededor. En la cápsula, el parásito completa su desarrollo y comienza la puesta de huevos. El período de pretensado varía de 3 a 7 meses y depende de la especie huésped. La F. magna adulta puede sobrevivir en el hígado del huésped hasta 7 años.

Distribución [ editar ]

Distribución de F. magna en América del Norte

Actualmente, F. magna se encuentra solo en América del Norte y Europa donde existe un hábitat adecuado y se encuentran huéspedes intermediarios susceptibles. Sin embargo, trabajos esporádicos informaron la aparición única de la casualidad en otros continentes. F. magna se encontró en animales importados en Sudáfrica, Australia y Cuba. En todos los casos, los animales infectados (novilla brahmán, buey y alce , respectivamente) fueron importados de Estados Unidos o Canadá. [8]

América del Norte [ editar ]

Durante el siglo XX, F. magna se informó en estos estados de América: Arkansas, California, Colorado, Illinois, Iowa, Kansas, Luisiana, Michigan, Minnesota, Montana, Nueva York, Oklahoma, Oregón, Carolina del Sur, Texas, Washington y Wisconsin. Las áreas de Nueva Inglaterra no son áreas habitadas normalmente por F. magna , pero se ha informado de la casualidad en esta región. En Canadá, la casualidad se informó en Alberta, Columbia Británica, Ontario y Quebec. [2] [4] Actualmente, F. magna es enzoótica en cinco áreas principales: (1) los Grandes Lagosregión; (2) la costa del Golfo, el bajo Mississippi y la costa atlántica sur; (3) costa del Pacífico norte; (4) la trinchera de las Montañas Rocosas; y (5) el norte de Quebec y Labrador. Sin embargo, dentro de estos amplios rangos, la presencia real de trematodos hepáticos gigantes varía de localmente abundante a localmente ausente. [2]

Europa [ editar ]

Fascioloides magna fue reportado por primera vez por Bassi en Torino, Italia. A pesar del trabajo de Bassi, no se informó de otros datos sobre la aparición de F. magna en Europa hasta la década de 1930. [4] En el territorio checo , Ullrich informó de la primera aparición de F. magna en gamo en 1930. [9] Al mismo tiempo, Salomon (1932) diagnosticó la casualidad en un ciervo cazado cerca de Görlitz (Sajonia). en Alemania. Otros hallazgos aislados de la casualidad se registraron en Italia y Polonia. De 1948 a 1961, aparición esporádica del parásito en ciervo rojo ( Cervus elaphus ), gamo ( Dama dama) y el corzo ( Capreolus capreolus ) fueron reportados por varios autores en la antigua Checoslovaquia . Sin embargo, todos los informes se publicaron sobre la base de descubrimientos de incidentes en ciervos cazados y no se documentaron infecciones masivas. [1]

En el decenio de 1960, se notificaron varios brotes de F. magna en cérvidos en algunas zonas de la antigua Checoslovaquia. La prevalencia de infección varió del 70 al 80% en ciervos rojos y la carga máxima de parásitos fue de 144 gusanos. Además, se documentaron muertes súbitas en ciervos libres o de caza. [1] La mortalidad más alta se informó en corzos en libertad en el condado de Písek en el sur de Bohemia de la antigua Checoslovaquia . En la misma región, además, el parásito se encontró en hígados de ganado sacrificado. [10] [11]

Distribución de F. magna en Europa

Erhardová-Kotrlá (1971) confirmó que el ciervo rojo, el gamo y el corzo son los principales hospedadores definitivos de F. magna en Europa. En la década de 1960, F. magna era enzoótica en la antigua Checoslovaquia en las siguientes cuatro áreas principales: (1) České Budějovice y el condado de Třeboň , incluidas las montañas de Nové Hrady ; (2) el área a lo largo del río Vltava en las colinas Vltava-Týn cerca de Hluboká y Bechyně ; (3) condado de Písek y Milevsko; (4) las montañas Brdy y las montañas Hřebeny . [1] En los años siguientes, F. magnasolo se informó de estas áreas. Recientemente, se determinó la distribución geográfica de F. magna en cérvidos en la República Checa . El trematodo hepático gigante se confirmó en las mismas áreas que se informó en la década de 1960. Sin embargo, se descubrieron siete nuevas áreas endémicas de F. magna , lo que sugiere que el parásito se está propagando en la República Checa. Además, la aparición de F. magna en las montañas de Šumava tiene importancia epizootiológica debido a la posibilidad de propagación del parásito al territorio alemán ( Baviera ). [12] Durante los últimos años, se ha establecido una nueva zona enzoótica europea en el Danubio.cuenca hidrográfica en Europa Central. En 1988, F. magna fue aislado de una hembra de ciervo rojo de 3 años encontrada muerta cerca de la planta de agua de Gabčíkovo en el río Danubio en Eslovaquia. El parásito se ha extendido por toda la cuenca del Danubio eslovaco. [8]

Poco después del primer informe eslovaco, se encontró F. magna en ciervos rojos en partes húngaras de los bosques de la llanura aluvial del Danubio. La prevalencia reportada por los mismos autores fue de hasta el 90%. La infección de los cérvidos por F. magna es un problema considerable en la parte norte de Hungría ( Szigetköz ) y el territorio meridional del Danubio en la zona de Gemenc . [8] Desde el otoño de 2000, F. magna se ha encontrado en territorio austriaco, al este de Viena . En los años 2000–2001, la prevalencia del trematodo hepático gigante en ciervos rojos en partes austriacas del Danubio (este de Viena) fue del 66,7%. [13] En enero de 2000 se informó en Croacia sobre la aparición de duela hepática estadounidense.[14] La prevalencia de fascioloidosis entre ciervos rojos en Hungría fue del 21,1 al 60,7% entre 1998 y 2005. Durante la necropsia de 459 hígados de venado (utilizando el método de Egri), el número de trematodos por huésped varió de 1 a 138 en el mismo período. [15] [16] En cuanto al origen de lazona enzoóticade F. magna en la cuenca del río Danubio, es fundamental señalar que no se introdujeron cérvidos en estas localidades, ni recientemente ni en el pasado. Por tanto, el origen de lapoblación de F. magna en los bosques de la llanura aluvial del Danubio en Europa central sigue sin estar claro. [8]

Anfitriones definitivos [ editar ]

Venado de cola blanca: un anfitrión definitivo típico de la platija del hígado gigante

Las infecciones naturales de F. magna ocurren principalmente en cérvidos y bóvidos. Aunque muchas especies son susceptibles a la infección, solo unas pocas especies de cérvidos contribuyen de manera significativa al mantenimiento de las poblaciones del trematodo. [2] En América del Norte, los huéspedes definitivos comunes del trematodo hepático gigante son wapiti ( Cervus elaphus canadensis ), venado cola blanca ( Odocoileus virginianus ) y caribú ( Rangifer tarandus ). [2] [17] En Europa, F. magna se encuentra comúnmente en el ciervo rojo ( Cervus elaphus ), el gamo ( Dama dama ) y el corzo ( Capreolus capreolus). [1] Los rumiantes domésticos también son susceptibles a la infección natural por F. magna . Sin embargo, la infección no es patente y los rumiantes domésticos no contribuyen a la propagación del parásito en el medio ambiente. [18] En América del Norte, el trematodo hepático gigante se encuentra comúnmente en ganado, ovejas y cabras en áreas donde F. magna es enzoótico en ciervos. [17] En contraste, F. magna ocurre raramente en rumiantes domésticos en Europa. [12] La lista de todos los huéspedes naturales definitivos de F. magna se presenta en la Tabla . No se sabe que los humanos sean un huésped definitivo. [19]

El único huésped definitivo primario indígena de F. magna es el venado de cola blanca. Esta especie ha sido parasitada por la casualidad durante más tiempo en un contexto histórico. Wapiti y caribú son de origen euroasiático y entraron en América del Norte durante la época del Pleistoceno y se superpusieron con el venado de cola blanca en algunas partes de América del Norte. Es posible que se hayan encontrado con F. magna en estos biotopos compartidos. [2]

Nombre común de la especieNombre latino de la especieReferencias
AMÉRICA DEL NORTE
BisonteBisonte bisonte[20]
Venado cola negraOdocoileus hemionus columbianus[21]
CaribúRangifer tarandus[4]
CattaloBos taurus × Bison bison[4]
GanadoBos tauro[22]
Pecarí de collarDicotilos tajacu[23]
CabraCapra hircus[24]
CaballoEquus caballus[25]
LlamaLama glama[26]
AlceAlces alces[27]
Venado buraOdocoileus hemionus hemionus[4]
CerdoSus scrofa var. doméstico[28]
OvejaOvis aries[4]
WapitiCervus elaphus canadensis[4]
Venado de cola blancaOdocoileus virginianus[4]
JabalíSus scrofa[29]
YakBos grunniensis[4]
EUROPA
Toro azulBosephalus tragocamelus[5]
GanadoBos tauro[5]
GamoDama dama[9]
CabraCapra hircus[5]
CaballoEquus caballus[30]
Ciervo rojoCervus elaphus[5]
CorzoCapreolus capreolus[10]
SambarCervus unicolor[5]
OvejaOvis aries[5]
Venado SikaSika nippon[1]
Venado de cola blancaOdocoileus virginianus[1]
JabalíSus scrofa[30]

(1) Anfitriones definitivos [ editar ]

La cápsula fibrosa en el parénquima hepático de ciervo infectado con F. magna

Los hospedadores definitivos son principalmente cérvidos del Nuevo Mundo y algunos del Viejo Mundo. [2] En los hospedadores definitivos, los trematodos se encapsulan en cápsulas fibrosas de paredes delgadas que se comunican con el sistema biliar. Los huevos pasan a través del sistema biliar, ingresan al intestino delgado y dejan al huésped con las heces. Por tanto, la infección es patente. [4] [18] Las cápsulas son el resultado de la respuesta de defensa del huésped al parásito y son patognomónicas de la infección por F. magna . Contienen de dos a cinco trematodos, un líquido negro grisáceo con huevos y detritos celulares. [2] [18]

Las infecciones por F. magna en huéspedes definitivos suelen ser subclínicas. [2] Sin embargo, se informaron muertes masivas causadas por la platija en ciervos rojos, en barbecho y corzos. [1] [10] [31] El letargo, la depresión, la pérdida de peso y la disminución de la calidad de las astas pueden ocurrir esporádicamente. [1] Además, los síntomas nerviosos se observaron muy raramente. En el primer caso, se informó de un movimiento urgente seguido de apatía en un gamo infectado experimentalmente. [32] Los autores sugirieron que estos síntomas estaban asociados con el síndrome hepatocerebral . Otro autor ha observado parálisis parcial en wapiti infectados naturalmente causada por trematodos juveniles migratorios en la médula espinal. [33]Los perfiles bioquímicos y hematológicos se investigan poco en huéspedes definitivos. Se observó una disminución de hemoglobina , elevación de γ-globulinas y aumento de eosinófilos en suero en ciervos de cola blanca infectados experimentalmente. [34] [35]

(2) Hosts sin salida [ editar ]

Los anfitriones sin salida están representados por grandes bóvidos, suidos, llamas, caballos y algunos cérvidos del Viejo Mundo. Las infecciones en huéspedes sin salida se caracterizan por fibrosis excesiva, encapsulación de duelas de paredes gruesas dentro del parénquima hepático y pigmentación negra de varios tejidos. [2] Tanto los conductos biliares aferentes como los eferentes están totalmente ocluidos y están marcados por tractos de tejido fibroso. Los huevos no pueden pasar al sistema biliar y, por lo tanto, la infección no es patente. Además, los trematodos rara vez maduran en huéspedes sin salida, probablemente debido a una fuerte respuesta inmune. [18] No obstante, se ha documentado la aparición de huevos de F. magna en las heces de un solo ternero infectado experimentalmente. [32]Rara vez se han estudiado la fisiopatología o los síntomas clínicos en huéspedes sin salida. En el ganado bovino, se han observado elevaciones significativas de los recuentos de eosinófilos en la sangre periférica, pero solo se han observado ligeros aumentos de AST y GGT. [36] Si bien los autores estadounidenses no han observado ningún síntoma clínico en el ganado, [17] [36] se registraron anorexia y pérdida de peso en toros infectados naturalmente en la antigua Checoslovaquia. [37]

(3) Anfitriones aberrantes [ editar ]

Necropsia de cabra infectada con F. magna : fibrina entre hígado y diafragma

Los huéspedes aberrantes de F. magna son ovejas y cabras. [4] [17] [38] Sin embargo, el curso de la infección es similar en cobayas, [36] conejos, [4] borrego cimarrón ( Ovis canadensis ) [39] y rebeco ( Rupicapra rupicapra ) [32] que fueron infectados experimentalmente. Las infecciones en hospedadores aberrantes se caracterizan por la deambulación excesiva de los trematodos juveniles y la muerte del hospedador. [2] Los huéspedes aberrantes generalmente mueren dentro de los 6 meses posteriores a la infección y la muerte se asocia con peritonitis aguda o hemorragia extensa causada por trematodos migratorios. [2] [32][40] [41] En huéspedes aberrantes, los trematodos no maduran ni migran hasta que el huésped muere. [17] Ocasionalmente, algunos trematodos maduran y se pueden encontrar huevos en las heces. [42] [43] Las lesiones hepáticas en huéspedes aberrantes generalmente incluyen adherencias firmesdel hígado al diafragma , pigmentación negra, hematomas , necrosis y tractos hemorrágicos en los que se encuentran los trematodos juveniles. [41] Si bien varios autores han informado de la falta de cápsulas fibrosas dentro del parénquima hepático, [2] [17] también se han documentado trematodos en cápsulas fibrosas en ovejas. [18] [40]Sin embargo, la pared de la cápsula es diferente a la de los cérvidos y bóvidos grandes. La característica dominante es una fibrosis difusa en todo el hígado y tractos migratorios hemorrágicos que contienen eritrocitos, pigmento negro y detritos celulares. Las lesiones hepáticas están infiltradas por eosinófilos, células plasmáticas y macrófagos cargados de pigmento. [40]

Las ovejas y las cabras mueren de forma aguda sin ningún signo clínico previo. [17] [40] Sólo se observó elevación de eosinófilos y un ligero aumento de γ-globulinas en ovejas infectadas experimentalmente. [40] Recientemente, se han documentado varios cambios en el perfil bioquímico y hematológico en cabras infectadas experimentalmente. El aumento significativo de GLDH ( glutamato deshidrogenasa ) se registró 14 semanas después de la infección en cabras infectadas experimentalmente con F. magna . [44]

Anfitriones intermedios [ editar ]

Huéspedes intermedios de F. magna en Europa: caracoles de agua dulce, G. truncatula (arriba) y R. peregra (abajo).

Dado que la presencia de un huésped intermedio es esencial para completar el ciclo de vida, los caracoles ocupan un papel importante en la epidemiología de F. magna . Los huéspedes intermediarios del trematodo hepático gigante pertenecen a la familia Lymnaeidae . En América del Norte, se informó de un total de 10 caracoles lymnaeid como huéspedes intermediarios de F. magna . [45] 6 de las 10 especies de caracoles de América del Norte se encontraron infectadas naturalmente y las otras cuatro se infectaron solo en condiciones experimentales. [1] Además, la especie australiana Austropeplea ( Lymnaea ) tomentosa fue expuesta al aislado norteamericano de F. magna.y el parásito pudo completar su desarrollo. [46] Los caracol huéspedes naturales más comunes de la platija en Norteamérica son Fossaria ( Galba ) modicella , Stagnicola ( Lymnaea ) caperata y Fossaria ( Galba ) bulimoides techella . En Europa, no se conocía un huésped intermedio hasta la década de 1960. Al principio, Ślusarski asumió que Lymnaea stagnalis podría actuar como anfitrión intermedio de F. magnaen Europa. Sin embargo, su suposición no ha sido confirmada por hallazgos positivos en el campo ni por una infección experimental. En 1961, la Dra. Erhardová describió el ciclo de vida de F. magna basándose en observaciones de caracoles infectados de forma experimental y natural. Ella confirmó que Galba truncatula es un hospedador intermedio del trematodo hepático gigante en Europa. [1] En trabajos posteriores, el autor estudió otra especie de lymnaeid en la antigua Checoslovaquia. Sin embargo, G. truncatula fue confirmado repetidamente como el único caracol huésped de F. magna . En 1979, Chroustová informó de una infección experimental exitosa de Stagnicola ( Lymnaea ) palustris conF. magna . Consideró que esta especie podría servir como huésped intermedio de la platija en el medio ambiente. Sin embargo, no se encontraron caracoles naturalmente infectados. [47] Estudios recientes indican que otro caracol lymnaeid, Radix peregra , también puede estar involucrado en la transmisión de F. magna en Europa. Esta opinión está respaldada por una infección experimental exitosa de R. peregra en el laboratorio, así como por los hallazgos de R. peregra infectada naturalmente en el medio ambiente. [48] Estos hallazgos sugirieron que el espectro de hospedadores intermedios de F. magna debería ser similar al de North América, diversa en Europa. La lista de hosts intermedios deF. magna se presenta en la siguiente tabla.

Especies de caracolesNaturalmente infectadoInfectado experimentalmentePaísReferencia
AMÉRICA DEL NORTE
Fossaria ( Galba ) bulimoides techellasísíEstados Unidos[49]
Fossaria ( Galba ) modicellasísíEstados Unidos, canadá[50]
Pseudosuccinea columella sísíEstados Unidos[50]
Fossaria ( Galba ) parvasísíCanadá[4]
Stagnicola palustris nuttallianasísíCanadá[4]
Lymnaea stagnalisNosíEstados Unidos[51]
Stagnicola palustrisNosíEstados Unidos[52]
Stagnicola ( Lymnaea ) caperatasísíEstados Unidos[53]
Lymnaea ferrugineaNosíEstados Unidos[54]
Austropeplea ( Lymnaea ) tomentosaNosíAustralia*[46]
Lymnaea umbrosaNosíEstados Unidos[55]
EUROPA
Galba truncatulasísíRepública Checa[1]
Stagnicola ( Lymnaea ) palustrisNosíRepública Checa[47]
Omphiscola glabraNosíFrancia**[56]
Radix peregrasísíRepública Checa[48]

(*) Caracoles originarios de Australia infectados con cepa estadounidense de F. magna
(**) Caracoles originarios de Francia infectados con cepa checa de F. magna

Signos clínicos, patología y fisiopatología [ editar ]

Según varios autores estadounidenses, existen tres tipos de hospedante definitivo: [2] [4] [17]

  • (1) hospedadores definitivos
  • (2) hosts sin salida
  • (3) anfitriones aberrantes

La patología de la infección por F. magna varía según el tipo de huésped, pero los tres tipos comparten algunas características. Las lesiones primarias generalmente ocurren en el hígado y se asocian con daño mecánico debido a trematodos juveniles migratorios o encapsulación fibrosa de trematodos adultos sedentarios. [2] La característica más común de la infección por F. magna es la pigmentación negra en los órganos abdominales o torácicos, especialmente en el hígado. [4] El pigmento de hematina es producido por trematodos como un subproducto de la alimentación de sangre. [57] [58] El pigmento dentro de los tejidos es el resultado de la migración de trematodos juveniles y se acumula dentro de las células hepáticas sin reabsorción. [57] F. magnatambién se ha asociado con la enfermedad del agua roja en bovinos. F. magna causa daño hepático, lo que permite que la bacteria Clostridium haemolyticum cause una infección secundaria en el tejido hepático. La infección disminuirá la función del hígado y la orina del huésped se enrojecerá, de ahí el nombre de enfermedad del "agua roja". [59]

Diagnóstico [ editar ]

Si bien los huevos de F. magna se parecen a los de F. hepatica , esta similitud tiene un uso limitado; los huevos generalmente no se transmiten en el ganado vacuno y ovino. La recuperación de los parásitos en la necropsia, así como la identificación adecuada de F. hepatica o F. gigantica es necesaria para un diagnóstico definitivo. Cuando los rumiantes domésticos y los ciervos comparten las mismas áreas de pasto, se debe tener en cuenta la presencia de enfermedades debidas a F. magna . En el ganado bovino se producen infecciones mixtas por F. hepatica .

Control de F. magna y prevención [ editar ]

Fórmula de triclabendazol

Para el control de la fascioloidosis en rumiantes silvestres, es necesaria la aplicación exitosa de antihelmínticos en los piensos. El medicamento debe tener un sabor y un olor que no impidan que los animales ingieran alimentos medicados. Además, debe haber un alcance terapéutico adecuado, es decir, un intervalo entre la dosis terapéutica y la dosis tóxica mínima. Por lo tanto, solo algunos de los antihelmínticos que son eficaces en rumiantes domésticos se han probado en rumiantes salvajes infectados con F. magna . [8] Varios fármacos, a saber, Oxiclozanida , rafoxanide , albendazol , diamphenetide , closantel , clorsulon , y triclabendazol, se han utilizado para el control de la infección por F. magna en cérvidos. Sin embargo, los resultados han diferido entre diferentes autores. Al igual que para F. hepatica , el triclabendazol parece ser el más eficaz contra F. magna . [60] La fascioloidosis de los cérvidos se controló con éxito con triclabendazol en los Estados Unidos, [61] y triclabendazol con levamizol en Hungría, [16] Canadá, [62] Austria, [13] y Croacia. [63] Por el contrario, la rafoxanida se utiliza comúnmente en el tratamiento en la República Checa [12] Eslovaquia [8] y Hungría. [dieciséis]No obstante, estudios recientes sugirieron que se debería considerar el uso de rafoxanida en el control de la infección por F. magna . [12] Desafortunadamente, la rafoxanida en un fármaco comercial llamado Rafendazol Premix es el único fármaco registrado para rumiantes salvajes. El triclabendazol y otros se producen como medicamentos para animales domésticos y solo se pueden usar en animales de vida libre con un permiso especial. En algunos casos, puede ser difícil determinar si F. magna o un parásito diferente como Fasciola hepatica o Fasciola gigantica está causando patología, ya que todos estos parásitos tendrán los mismos signos clínicos. En el caso de que no se pueda determinar la identidad del trematodo, el fármaco triclabendazolse puede utilizar ya que se ocupará de los tres parásitos. [64]

Como alimento humano [ editar ]

En América del Norte, especialmente en Wisconsin , [65] los trematodos que se encuentran dentro de los hígados de venado son a veces consumidos por humanos, salteados en mantequilla. Se sirven como "mariposas de hígado", "pequeños hígados" o "pequeños flapjacks". [66]

Ver también [ editar ]

  • Fascioliasis
  • Fasciola hepática

  • Tamaño relativo de F. magnus a la mano humana.

Referencias [ editar ]

  1. ^ a b c d e f g h i j k l m Erhardová-Kotrlá, B., 1971. La aparición de Fascioloides magna (Bassi, 1875) en Checoslovaquia. Academia, Praga, 155 págs.
  2. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p Pybus, MJ, 2001. Trematodos hepáticos. En: Samuel, WM, Pybus, MJ, Kocan, AA (eds.), Enfermedades parasitarias en mamíferos salvajes, Iowa State Press, Iowa City, págs. 121-149.
  3. ^ Juhásová, Ludmila; Králová-Hromadová, Ivica; Bazsalovicsová, Eva; Minárik, Gabriel; Štefka, Jan; Mikulíček, Peter; Pálková, Lenka; Pybus, Margo (13 de octubre de 2016). "Estructura de la población y rutas de dispersión de un parásito invasor, Fascioloides magna, en América del Norte y Europa" . Parásitos y vectores . 9 (1): 547. doi : 10.1186 / s13071-016-1811-z . PMC  5064932 . PMID  27737705 .
  4. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t Swales WE (1935). "El ciclo de vida de Fascioloides magna (Bassi, 1875), el gran parásito hepático de los rumiantes en Canadá con observaciones sobre la bionómica de las etapas larvarias y los huéspedes intermediarios, patología de la fascioloidiasis magna y medidas de control". Revista canadiense de investigación . 12 (2): 177–215. doi : 10.1139 / cjr35-015 .
  5. ↑ a b c d e f g Bassi R (1875). "Sulla cachessia ittero-verminosa, o marciaia, causata dal Distomum magnum". Medico Veterinaria Torino . 4. 4 (11-12): 497-515.
  6. ^ Ward HB (1917). "Sobre la estructura y clasificación de los gusanos parásitos de América del Norte". Revista de parasitología . 4 (1): 1–12. doi : 10.2307 / 3271103 . JSTOR 3271103 . 
  7. ^ Stiles CW (1895). "La anatomía del gran trematodo americano ( Fasciola magna ) y una comparación con otras especies del género Fasciola , s. Str". J Comp Med Vet Arch . 16 : 139-147, 213-222, 277-282.
  8. ^ a b c d e f Špakulová, M., Rajský, D., Sokol, J., Vodňanský, M., 2003. Parásito hepático gigante ( Fascioloides magna ), un importante parásito hepático de los rumiantes. Parpress, Bratislava, 61 págs.
  9. ↑ a b Ullrich, K., 1930. Über das Vorkommen von seltenen oder wenig bekannten Parasiten der Säugetiere und Vögel in Böhmen und Mähren. Prager Archiv Tiermedicine 10, A (1/2), 19–43.
  10. ↑ a b c Záhoř, Z., 1965. Výskyt velké motolice ( Fascioloides magna Bassi, 1875) u srnčí zvěře. Veterinářství 15, 322–324.
  11. ↑ Záhoř Z, Prokš C, Vítovec J (1968). "Morfologie změn způsobených velkou motolicí ( Fascioloides magna , Bassi 1875) u skotu". Medicina Veterinaria (Praha) . 13 : 369–75.
  12. ↑ a b c d Novobilský, A., Horáčková, E., Hirtová, L., Modrý, D., Koudela, B., 2007. El trematodo hepático gigante Fascioloides magna (Bassi, 1875) en cérvidos en la República Checa y potencial de su propagación a Alemania. Parasitology Research 100, 549–553.
  13. ^ a b Ursprung, J., Joachim, A., Prosl, H., 2006. Epidemiología y control del trematodo hepático gigante, Fascioloides magna , en una población de ungulados salvajes en los humedales del Danubio al este de Viena. Berliner und Müncher Tiermedicine Woch 119, 316–323.
  14. ↑ Marinculic, A., N. Dzakula, Z. Janicki, Z. Hardy, S. Lucinger, T.Zivičnjak (2002). "Aparición de la platija del hígado estadounidense (Fascioloides magna, Bassi, 1875) en Croacia - informe de un caso". Veterinario. Arhiv . 72 : 319-25.CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  15. ↑ Egri B, Sztojkov V 1999. Újabb megfigyelések az észak-nyugat-magyarországi gímszarvasok Fascioloides magna fertőzöttségéről. Magy. Állatorv. Lapja 120, 304-305.
  16. ^ a b c Giczi E, Egri B, 2006. Parasitologische cuantitativa Untersuchungsergebnisse zum Vorkommen von Fascioloides magna (Bassi, 1875) bei Rothirschen im Nordwesten von Ungarn (1998-2005). Tierarztl. Umschau 61, 660–666.
  17. ^ a b c d e f g h Foreyt WJ, Todd AC (febrero de 1976). "Desarrollo del gran trematodo hepático americano, Fascioloides magna , en venado cola blanca, ganado y ovejas". J. Parasitol. 62 (1): 26–32. doi : 10.2307 / 3279036 . JSTOR 3279036 . PMID 1255380 .   
  18. ↑ a b c d e Swales WE (1936). "Más estudios sobre Fascioloides magna (Bassi, 1875) Ward, 1917, como parásito de los rumiantes". Revista canadiense de investigación . 14 (8): 83–95. doi : 10.1139 / cjr36d-010 .
  19. ^ Roberts, Larry; Janovy, Jr., John; Nadler, Steve (1 de enero de 2013). Fundamentos de Parasitología, 9ª edición (página 260). Ciencias, Ingeniería y Matemáticas. Versión Kindle.
  20. ↑ Cameron AE (1923). "Notas sobre el búfalo: anatomía, condiciones patológicas y parásitos". Vet J . 79 : 331–6.
  21. ^ Hadwen S (1916). "Un nuevo huésped para Fasciola magna, Bassi, junto con observaciones sobre la distribución de Fasciola hepatica, L. en Canadá". J Am Vet Med Assoc . 49 : 511-5.
  22. ↑ Francis M (1891). "Trematodos hepáticos". Texas Agr Sta Bull . 18 : 135–6.
  23. ^ Samuel WM, Low WA (1 de enero de 1970). "Parásitos del pecarí de collar de Texas" . J. Wildl. Dis. 6 (1): 16–23. doi : 10.7589 / 0090-3558-6.1.16 . PMID 16509125 . S2CID 12412546 .   
  24. ^ Olsen OW (enero de 1949). "Venado de cola blanca como huésped reservorio de la gran duela del hígado estadounidense". Vet Med . 44 (1): 26–30. PMID 18108841 . 
  25. ^ McClanahan SL, Stromberg BE, Hayden DW, Averbeck GA, Wilson JH (1 de julio de 2005). "Infección natural de un caballo con Fascioloides magna" . J. Vet. Diagn. Invertir. 17 (4): 382–5. doi : 10.1177 / 104063870501700415 . PMID 16131000 .  
  26. ^ Conboy GA, O'Brien TD, Stevens DL (abril de 1988). "Una infección natural de Fascioloides magna en una llama ( Lama glama )". J. Parasitol. 74 (2): 345–6. doi : 10.2307 / 3282468 . JSTOR 3282468 . PMID 3357126 .   
  27. ^ Kingscote AA (1950). "Pudrición del hígado (fascioloidiasis) en rumiantes" . Puede J Comp Med . 14 (6): 203–8. PMC 1791121 . PMID 15427015 .  
  28. ^ Migaki G, Zinter DE, Garner FM (septiembre de 1971). "Fascioloides magna en el cerdo — 3 casos". Soy. J. Vet. Res. 32 (9): 1417–21. PMID 5106718 .  
  29. ^ Foreyt WJ, Todd AC, Foreyt K (1 de octubre de 1975). " Fascioloides magna (Bassi, 1875) en jabalíes del sur de Texas" . J. Wildl. Dis . 11 (4): 554–9. doi : 10.7589 / 0090-3558-11.4.554 . PMID 1195502 . S2CID 30361526 .  
  30. ↑ a b Balbo T, Lanfranchi P, Rossi L, Meneguz PG (1987). "Gestión sanitaria de una población de ciervos infectados por Fascioloides magna (Bassi, 1875) Ward, 1917". Ann Fac Med Vet Torino . 32 : 23–33.
  31. ^ Novobilský, A., Horáčková, E., Koudela, B., 2005. Distribución actual del trematodo hepático gigante Fascioloides magna en la República Checa. Actas de las XIII Jornadas Helmintológicas celebradas en Ředkovec, República Checa, del 9 al 13 de mayo de 2005. Helminthologia 42, 181-182.
  32. ↑ a b c d Erhardová-Kotrlá, B., Blažek, K., 1970. Infestación artificial causada por el trematodo Fascioloides magna . Acta Veterinaria Brno 39, 287–295.
  33. ^ Sharma, A., 2002. Diagnóstico final: Fascioloides magna en la médula espinal. [1]
  34. ^ Presidente, PJ, McCraw, BM, Lumsden, JH, 1980. Patogenicidad de Fascioloides magna inmadurosen venado cola blanca. Revista Canadiense de Medicina Comparativa 44, 423–32.
  35. ^ Foreyt WJ, Todd AC (1 de enero de 1979). "Cambios clínico-patológicos seleccionados asociados con la infección por Fascioloides magna inducida experimentalmente en venado cola blanca" . J. Wildl. Dis . 15 (1): 83–9. doi : 10.7589 / 0090-3558-15.1.83 . PMID 459050 . S2CID 27426242 .  
  36. ^ a b c Conboy, GA, Stromberg, BE, 1991. Hematología y patología clínica de la infección experimental por Fascioloides magna en bovinos y cobayas. Parasitología veterinaria 40, 241-255.
  37. ^ Chroustová, E., Hůlka, J., Jaroš, J., 1980. Prevención de un terapie fascioloidózy skotu bitionolsulfoxidem. Medicina veterinaria (Praha) 25, 557–563.
  38. ↑ Olsen, OW, 1949. Venado de cola blanca como huésped reservorio del gran trematodo hepático americano. Medicina veterinaria 44, 26-30.
  39. ^ Foreyt WJ (1 de julio de 1996). "Susceptibilidad del borrego cimarrón ( Ovis canadensis ) a infecciones inducidas experimentalmente por Fascioloides magna " . J. Wildl. Dis . 32 (3): 556–9. doi : 10.7589 / 0090-3558-32.3.556 . PMID 8827689 . S2CID 1125893 .  
  40. ^ a b c d e Stromberg, BE, Conboy, GA, Hayden, DW, Schlotthauer, JC, 1985. Efectos fisiopatológicos de la infección por Fascioloides magna inducida experimentalmente en ovejas. Revista estadounidense de investigación veterinaria 46, 1637-1641.
  41. ↑ a b Foreyt WJ, Leathers CW (junio de 1980). "Infección experimental de cabras domésticas con Fascioloides magna ". Soy. J. Vet. Res . 41 (6): 883–4. PMID 7436074 . 
  42. ^ Novobilský, A., Kašný, M., Mikeš, L., Kovařčík, K., Koudela, B., 2007. Respuestas inmunes humorales durante la infección experimental con Fascioloides magna y Fasciola hepatica en cabras y comparación de sus productos excretores / secretores . Investigación en parasitología 101, 357–364.
  43. ^ Foreyt WJ (octubre de 1990). "Ovejas domésticas como un raro huésped definitivo de la gran platija hepática americana Fascioloides magna ". J. Parasitol . 76 (5): 736–9. doi : 10.2307 / 3282993 . JSTOR 3282993 . PMID 2213420 .  
  44. ↑ Novobilský, A., Pavlata, L., Mišurová, Ľ., Antoš, D., Koudela, B., 2006. Porovnání průběhu infekce Fascioloides magna a Fasciola hepatica u experimentálně infikovaných koz. Actas de las VII Jornadas Parasitológicas de Eslovaquia y República Checa, Modra-Harmónia, Eslovaquia, 23-27 de mayo de 2006, pág. 27.
  45. ^ Dunkel AM, Rognlie MC, Johnson GR, Knapp SE (marzo de 1996). "Distribución de huéspedes intermediarios potenciales para Fasciola hepatica y Fascioloides magna en Montana, Estados Unidos". Veterinario. Parasitol . 62 (1–2): 63–70. doi : 10.1016 / 0304-4017 (95) 00859-4 . PMID 8638394 . 
  46. ↑ a b Foreyt WJ, Todd AC (octubre de 1974). "Carta: Lymnaea tomentosa de Australia, un huésped intermedio experimental del gran trematodo hepático americano, Fascioloides magna ". Aust. Veterinario. J. 50 (10): 471–2. doi : 10.1111 / j.1751-0813.1974.tb06874.x . PMID 4447532 .  
  47. ^ a b Chroustová, E., 1979. Infección experimental de caracoles Lymnaea palustris con Fascioloides magna . Parasitología veterinaria 5, 57–64.
  48. ^ a b Faltýnková, A., Horáčková, E., Hirtová, L., Novobilský, A., Modrý, D., Scholz, T., 2006. ¿ Radix peregra es un nuevo huésped intermedio de Fascioloides magna (Trematoda) en Europa? ? Evidencia experimental y de campo. Acta Parasitologica 51, 87–90.
  49. ^ Sinitsin DF (1930). "Una nota sobre la historia de vida de la gran duela del hígado estadounidense, Fasciola magna (Bassi)". Ciencia . 72 (1863): 273–4. doi : 10.1126 / science.72.1863.273 . PMID 17843271 . 
  50. ↑ a b Krull WH (1934). "Los huéspedes intermediarios de Fasciola hepatica y Fascioloides magna en los Estados Unidos". N Am Vet. 15 : 13–7.
  51. ^ Wu LY, Kingscote AA (1953). "A notas sobre Lymnaea stagnalis (L.) como un caracol huésped para Fascioloides magna (Bassi, 1875) (Trematoda)". J Parasitol . 39 : 568.
  52. ^ Griffiths HJ (1955). " Stagnicola palustris (Müller), un huésped intermedio de Fascioloides magna (Bassi, 1875) en Minnesota". J Parasitol . 41 (1): 115. doi : 10.2307 / 3274010 . JSTOR 3274010 . 
  53. ^ Griffiths HJ (1959). " Stagnicola (Hinckleyia) caperata Say, un huésped intermedio natural para Fascioloides magna (Bassi, 1875), en Minnesota". J Parasitol . 49 (2): 146. doi : 10.2307 / 3286517 . JSTOR 3286517 . 
  54. ^ Dutson, VJ, Shaw, JN, Knapp, SE, 1967. Factores epizootiológicos de Fascioloides magna (Trematoda) en Oregon y el sur de Washington. Soy J Vet Res. 124, 853–864.
  55. ^ Foreyt WJ, Todd AC (diciembre de 1978). "Infección experimental de caracoles lymnaeid en Wisconsin con miracidios de Fascioloides magna y Fasciola hepatica ". J. Parasitol . 64 (6): 1132–4. doi : 10.2307 / 3279747 . JSTOR 3279747 . PMID 739308 .  
  56. ^ Rondelaud, D., Novobilský, A., Vignoles, P., Treuil, P., Koudela, B., Dreyfuss, G., 2006. Primeros estudios sobre la susceptibilidad de Omphiscola glabra (Gastropoda: Lymnaeidae) desde el centro de Francia a Fascioloides magna . Parasitol Res 98, 299-303.
  57. ↑ a b Campbell WC (diciembre de 1960). "Naturaleza y posible significado del pigmento en fascioloidiasis". J. Parasitol . 46 (6): 769–75. doi : 10.2307 / 3275530 . JSTOR 3275530 . PMID 13690277 .  
  58. ↑ Blažek K, Gilka F (1970). "Contribución al conocimiento del pigmento encontrado en la infección por Fascioloides magna ". Folia Parasitologica . 17 : 165–70.
  59. ^ Charles Courtney, "Control de la platija del hígado en el ganado vacuno" , The Beef Site ", 2008
  60. ^ Novobilský, A., Koudela, B., 2005. Tratamiento y control de lainfección por Fascioloides magna en cérvidos - revisión. Veterinářství 55, 98–102.
  61. ^ Qureshi T, Drawe DL, Davis DS, Craig TM 1994. Uso de cebo que contiene triclabendazol para tratarinfecciones por Fascioloides magna en ciervos de cola blanca en libertad. Journal of Wildlife Diseases 30, 346-350.
  62. ^ Pybus MJ, Onderka DK, Cool N (1 de octubre de 1991). "Eficacia del triclabendazol contra infecciones naturales de Fascioloides magna en wapiti" . J. Wildl. Dis . 27 (4): 599–605. doi : 10.7589 / 0090-3558-27.4.599 . PMID 1758025 . 
  63. ^ Janicki, Z., Konjevic, D., Severin, K., 2005. Monitoreo y tratamiento de Fascioloides magna en la cría de ciervos rojos en semi-granjas en Croacia. Comunicaciones de investigación veterinaria 29, 83–88.
  64. ^ CDC, "Parásitos - Fascioliasis (infección por Fasciola)" , "Centro para el Control y la Prevención de Enfermedades", 2013
  65. ^ Johnson, Pieter TJ; Dobson, Andrew; Lafferty, Kevin D .; Marcogliese, David J .; Memmott, Jane; Orlofske, Sarah A .; Poulin, Robert ; Thieltges, David W. (2010). "Cuando los parásitos se convierten en presa: importancia ecológica y epidemiológica de comer parásitos". Tendencias en Ecología y Evolución . 25 (6): 362–371. doi : 10.1016 / j.tree.2010.01.005 . PMID 20185202 . 
  66. ^ Loker, Eric; Hofkin, Bruce (2015). Parasitología: un enfoque conceptual . Garland Science. pag. 222. ISBN 978-0-8153-4473-5.

Enlaces externos [ editar ]

  • Wobeser G, Gajadhar AA, Hunt HM (agosto de 1985). "Fascioloides magna: presencia en Saskatchewan y distribución en Canadá" . Lata. Veterinario. J . 26 (8): 241–244. PMC  1680019 . PMID  17422561 .
  • Control de la fascioloidosis en Croacia (formato PDF)
  • F. magna y wapiti
  • Trematodos hepáticos
  • Diagnóstico final: Fascioloides magna en médula espinal (formato PDF)
  • Enfermedades víricas, parasitarias y priónicas de ciervos y bisontes de cría (formato PDF)