Trichothecium roseum es un hongo de la división Ascomycota reportado por primera vez en 1809. [1] Se caracteriza por sus colonias planas y granulares que son inicialmente blancas y se desarrollan para ser de color rosa claro. [1] Este hongo se reproduce asexualmente a través de la formación de conidios sin estado sexual conocido. [1] Trichothecium roseum se distingue de otras especies del género Trichothecium en sus característicos conidios encadenados en forma de zigzag. [2] Se encuentra en varios países de todo el mundo y puede crecer en una variedad de hábitats que van desde la hojarasca hasta los cultivos de frutas. [2] Trichothecium roseumproduce una amplia variedad de metabolitos secundarios que incluyen micotoxinas, como roseotoxinas y tricotecenos, que pueden infectar y estropear una variedad de cultivos frutales. [1] Puede actuar como un patógeno secundario y oportunista al causar pudrición rosada en varias frutas y verduras y, por lo tanto, tiene un impacto económico en la industria agrícola. [1] Los metabolitos secundarios de T. roseum , específicamente el tricotecinol A, se están investigando como posibles fármacos antimetastásicos. Varios agentes, incluidos la arpina, el óxido de silicio y el silicato de sodio, son inhibidores potenciales del crecimiento de T. roseum en los cultivos de frutas. [3] [4] [5] Trichothecium roseum es principalmente un patógeno vegetal y aún no ha mostrado un impacto significativo en la salud humana. [1]
Trichothecium roseum | |
---|---|
clasificación cientifica | |
Reino: | Hongos |
División: | Ascomycota |
Clase: | Sordariomicetos |
Pedido: | Hypocreales |
Género: | Tricotecio |
Especies: | T. roseum |
Nombre binomial | |
Trichothecium roseum ( Pers. ) Enlace (1809) | |
Sinónimos | |
|
Historia y clasificación
El género Trichothecium es pequeño y heterogéneo y comprende setenta y tres especies registradas. [1] Este género se informó por primera vez en 1809. [1] Los principales miembros del género incluyen Trichothecium polybrochum , Trichothecium cystosporium , Trichothecium pravicovi y Trichothecium roseum . [1] Trichothecium roseum tiene conidióforos y conidios morfológicamente diferentes a las otras tres especies principales, lo que hizo que el desarrollo de estas características fuera el centro de un extenso estudio a lo largo de los años. [1] Dado que los hongos Trichothecium carecen de una fase sexual, la clasificación sistemática no fue uniforme después de su descubrimiento. [1] Estos hongos se agruparon inicialmente en Fungi imperfecti bajo la clasificación de forma Deuteromycetes. [1] En 1958, Tubaki amplió la clasificación de Hughes de Hyphomycetes del suelo , parte de la clase de forma de Fungi imperfecti , agregando una novena sección para acomodar a T. roseum y su aparato conidial único. [6] [7] El tricotecio ahora se ha clasificado en la clase Sordariomycetes . [1] Una clasificación reciente ha colocado a Trichothecium bajo el filo Ascomycota ya que producen estados conidiales que son similares a los hongos perfectos. [1]
Morfología
Las colonias de Trichothecium roseum son planas, granulares y de apariencia polvorienta. [1] [2] El color de las colonias parece ser blanco inicialmente y se convierte en un color rosa claro a melocotón. [1] El género Trichothecium se caracteriza por sus colonias de color rosado. [8]
Los conidióforos de T. roseum suelen estar erectos y miden entre 200 y 300 μm de longitud. [9] Surgen solos o en grupos sueltos. [1] Los conidióforos son hifas simples , [10] que están septadas en su mitad inferior, [6] y tienen grupos de conidios en la punta. [2] Estos conidióforos son indistinguibles de las hifas vegetativas hasta la producción del primer conidio. [1] El desarrollo de los conidios es distintivo [2] y fue descrito por primera vez por Ingold en 1956. [6] Los conidios surgen como reventones del lado del ápice del conidióforo que se incorpora así a la base de cada espora. [6] Después de que se apaga el primer conidio, antes de que madure, el vértice del conidióforo directamente debajo sopla un segundo conidio del lado opuesto. [6] Los conidios se pellizcan del conidióforo uno tras otro en direcciones alternas para formar la característica cadena en zigzag. [1] Los conidios de T.roseum (15-20 × 7,5-10 μm) [9] son lisos y claviformes. [1] Cada conidio tiene dos células, siendo la célula apical más grande que la célula basal curva. [1] Los conidios son de color rosa claro y parecen translúcidos bajo el microscopio. [1] Aparecen de un color rosa más saturado cuando se cultivan en masas en cultivo o en la superficie del hospedador. [1]
Crecimiento y fisiología
Trichothecium roseum se reproduce asexualmente mediante la formación de conidios sin etapa sexual conocida. [1] Trichothecium roseum es de crecimiento relativamente rápido ya que puede formar colonias que alcanzan los 9 cm (4 pulgadas) de diámetro en diez días a 20 ° C (68 ° F) en agar extracto de malta. [8] Este hongo crece de manera óptima a 25 ° C (77 ° F) con una temperatura de crecimiento mínima y máxima de 15 ° C (59 ° F) y 35 ° C (95 ° F) respectivamente. [8] Trichothecium roseum puede tolerar un amplio rango de pH pero crece de manera óptima a un pH de 6.0. La esporulación ocurre rápidamente a pH 4.0-6.5 y una combinación de baja temperatura (15 ° C (59 ° F)) y alta concentración de glucosa puede aumentar el tamaño de los conidios. [8] El tratamiento de T. roseum con colchicina aumenta el número de núcleos en los conidios, la tasa de crecimiento y las actividades biosintéticas. [8] Hay una variedad de azúcares que T. roseum puede utilizar, incluyendo D-fructosa, sacarosa, maltosa, lactosa, rafinosa, D-galactosa, D-glucosa, arabinosa y D-manitol. [8] También se produce un buen crecimiento en presencia de varios aminoácidos que incluyen L-metionina, L-isoleucina, L-triptófano, L-alanina, L-norvalina y L-norleucina. [8]
Metabolitos secundarios
Trichothecium roseum puede producir numerosos metabolitos secundarios que incluyen toxinas, antibióticos y otros compuestos biológicamente activos. [1] Los diterpenoides producidos incluyen rosolactona, acetato de rosolactona, rosenonolactona, desoxirosenonolactona, hidroxirosenonolactonas y acetoxi-rosenonolactona. T. roseum también produce varios sesquiterpenoides, como crotocina, tricotecolona, tricotecina, tricodiol A, tricotecinol A / B / C, tricodieno y roseotoxina. [1] [8] [11]
Aplicaciones biomédicas
Se encontró que Trichothecium roseum antagoniza los hongos patógenos, como Pyricularia oryzae ( Magnaporthe oryzae ) y Phytophthora infestans , in vitro . [12] Se sugirió que el compuesto antifúngico tricotecina era el principal contribuyente a esta acción. [12] En otros estudios, el tricotecinol B aislado de T. roseum mostró una modesta actividad antifúngica contra Cryptococcus albidus y Saccharomyces cerevisiae . [13]
Varios estudios han indicado que el Tricotecinol A aislado de T. roseum inhibió fuertemente la promoción de tumores inducida por TPA en la piel del ratón en las pruebas de carcinogénesis y, por lo tanto, puede ser valioso para investigaciones adicionales como agente preventivo del cáncer. [13] [14] [15] Los estudios contra el cáncer también han demostrado que el tricotecinol A inhibe significativamente la migración de las células cancerosas y, por lo tanto, puede desarrollarse como un nuevo fármaco antimetastásico potencial. [15]
Hábitat y ecología
Trichothecium roseum es un saprófito [10] y se encuentra en todo el mundo. [8] Se ha encontrado en suelos de varios países, incluidos Polonia, Dinamarca, Francia, Rusia, Turquía, Israel, Egipto, el Sahara, Chad, Zaire, África central, Australia, Polinesia, India, China y Panamá. [8] Los hábitats conocidos de T. roseum incluyen suelos no cultivados, viveros forestales, suelos forestales bajo hayas, teca, suelos cultivados con leguminosas, plantaciones de cítricos, brezales, dunas, marismas y abono de jardín. [8] Comúnmente, este hongo se puede aislar de la hojarasca de varios árboles, incluidos abedules, pinos, abetos, algodón y palmeras. [8] También se ha aislado de varias fuentes alimenticias como cebada, trigo, avena, maíz, manzanas, uvas, productos cárnicos, queso, frijoles, avellanas, nueces, pistachos, cacahuetes y café. [10] Los niveles de T. roseum en alimentos distintos de las frutas son generalmente bajos. [10]
Patologia de planta
Hay aproximadamente doscientos veintidós plantas hospedantes diferentes de T. roseum que se encuentran en todo el mundo. [1] Trichothecium roseum causa pudrición rosada en varias frutas y verduras. [1] Se considera un patógeno tanto secundario como oportunista, ya que tiende a ingresar al huésped de frutas / verduras a través de lesiones causadas por un patógeno primario. [1] La enfermedad causada por este hongo se caracteriza por el desarrollo de un moho blanco en polvo que eventualmente se vuelve rosado. [1] Koch reportó comportamientos antagonistas de T. roseum con ciertos hongos fitopatógenos en 1934. [16] Comenzó que T. roseum parasitaba activamente el estroma de Dibotryon morbosum que causa la enfermedad del nudo negro en cerezos, ciruelos y albaricoqueros. [dieciséis]
Enfermedad de la manzana
Se sabe que Trichothecium roseum produce podredumbre rosada en las manzanas, especialmente después de una infección por sarna de la manzana causada por Venturia inaequalis . [1] Los estudios han demostrado que la roseotoxina B, un metabolito secundario de T. roseum , puede penetrar la cáscara de la manzana y causar lesiones. [17] Trichothecium roseum también causa la pudrición del corazón de la manzana, que es un problema grave en China. [18] La pudrición del núcleo no solo causa pérdidas económicas sino que también está asociada con altos niveles de producción de micotoxinas. [18] Ha habido informes de la presencia de tricotecenos , específicamente toxina T-2 , en manzanas infectadas en China. [18] La toxina T-2 tiene la mayor toxicidad de los tricotecenos y representa una amenaza para las personas que consumen estas manzanas infectadas debido a su carcinogenicidad, neurotoxicidad e inmunotoxicidad. [18]
Enfermedad de la uva
Trichothecium roseum fue identificado, junto con Acremonium acutatum , como las dos cepas de hongos patógenos que causaron manchas blancas en las uvas cosechadas en Corea. [19] La presencia de micelios en la superficie de las uvas dio como resultado una apariencia de mildiú polvoriento teñido de blanco. [19] Trichothecium roseum se identificó mediante la morfología fúngica y la secuenciación de nucleótidos mediante PCR . [19] Parece como si el hongo cubriera solo la superficie de la uva y no penetrara en el tejido. [19] Esta mancha rebaja la calidad de la uva y provoca graves pérdidas económicas. [19]
En los vinos se detectaron tricotecina, tricotecolona y rosenonolactona, que son metabolitos secundarios de T. roseum . [20] La presencia de pequeñas cantidades de tricotecina puede inhibir la fermentación del alcohol. [20] Se ha informado de un aumento de la pudrición por Trichothecium roseum en las bodegas de Portugal. [20] En este caso, T. roseum pareció crecer sobre uvas podridas que estaban infectadas con podredumbre gris. [20] Las micotoxinas solo se detectaron en vinos elaborados con uvas que tenían podredumbre gris y, por lo tanto, estas toxinas pueden ser indicadores de uvas de mala calidad. [20] La contaminación de la uva por T. roseum parece ser prominente en climas templados . [20]
Otras enfermedades de la fruta
Se han informado casos de pudrición rosada por T. roseum en muchas otras frutas, sin embargo, aún no se han realizado estudios detallados. [1] Se ha informado de la pudrición rosada por T. roseum en tomates en Corea y Pakistán. [21] [22] También causa pudrición rosada en melones y sandías en Japón, Estados Unidos, Sudamérica, India y Reino Unido. [1] Se informa que Trichothecium roseum crece también en plátanos y melocotones. [1]
Prevención de enfermedades de las plantas
Se pueden tomar medidas preventivas para evitar el crecimiento de T. roseum en cultivos frutales. [23] Estos incluyen asegurar una ventilación adecuada en la instalación de almacenamiento, evitar dañar y magullar la fruta y asegurar temperaturas de almacenamiento adecuadas. [23] Se han sugerido aplicaciones antes y después de la cosecha como medidas para controlar la producción de T. roseum en cultivos frutales. [1] En particular, se han realizado estudios para probar varios compuestos para prevenir el crecimiento de T. roseum en varios tipos de melón. [3] [4] [5] Harpin se inoculó en melones Hami cosechados y causó una reducción significativa del diámetro de la lesión y, por lo tanto, una disminución del crecimiento de T. roseum . [3] El óxido de silicio y el silicato de sodio también redujeron la gravedad de la pudrición rosada y el diámetro de la lesión en los melones Hami cosechados. [4] La inoculación de harpin en melones almizcleros antes de la cosecha disminuyó la cantidad de pudrición rosada causada por T. roseum en los melones cosechados. [5]
Referencias
- ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y z aa ab ac ad ae af ag ah ai Batt, CA; Tortorello, M (2014). Enciclopedia de microbiología alimentaria (2 ed.). Londres: Elsevier Ltd. p. 1014. ISBN 978-0-12-384730-0.
- ^ a b c d e Cebollas, AHS; Allsopp, D .; Eggins, CÓMO (1981). Introducción de Smith a la micología industrial (7ª ed.). Londres, Reino Unido: Arnold. ISBN 978-0-7131-2811-6.
- ^ a b c Yang, B; Envío, T; Jie, Z; Yonghong, G (2005). "Harpin induce resistencia local y sistémica contra Trichothecium roseum en melones Hami cosechados". Biología y tecnología poscosecha . 38 (2): 183–187. doi : 10.1016 / j.postharvbio.2005.05.012 .
- ^ a b c Guo, Y; Liu, L; Zhao, J; Bi, Y (2007). "Uso de óxido de silicio y silicato de sodio para el control de la pudrición poscosecha de Trichothecium roseum en melón chino (Cucumis melo L.)". Revista internacional de ciencia y tecnología de los alimentos . 42 (8): 1012–1018. doi : 10.1111 / j.1365-2621.2006.01464.x .
- ^ a b c Wang, J; Bi, Y; Wang, Y; Deng, J; Zhang, H; Zhang, Z (2013). "Múltiples tratamientos de precosecha con harpin reducen la enfermedad poscosecha y mantienen la calidad en la fruta del melón (cv. Huanghemi)". Phytoparasitica . 42 (2): 155-163. doi : 10.1007 / s12600-013-0351-8 . S2CID 6795039 .
- ^ a b c d e Barron, George L. (1968). Los géneros de Hyphomycetes del suelo . Baltimore, MD: Williams y Wilkins. ISBN 9780882750040.
- ^ Kendrick, WB; Cole, GT (1969). "Ontogenia de conidios en hyphomycetes y sus artrosporas meristemáticas". Revista canadiense de botánica . 47 (2): 345–350. doi : 10.1139 / b69-047 .
- ^ a b c d e f g h yo j k l Domsch, KH; Gams, Walter; Andersen, Traute-Heidi (1980). Compendio de hongos del suelo (2ª ed.). Londres, Reino Unido: Academic Press. ISBN 9780122204029.
- ^ a b Watanabe, Tsuneo (2009). Atlas pictórico de hongos del suelo y las semillas: morfologías de hongos cultivados y clave de especies (3ª ed.). Boca Raton, Fla .: CRC. ISBN 978-1-4398-0419-3.
- ^ a b c d Pitt, JI; Hocking, AD (1999). Deterioro de hongos y alimentos (2ª ed.). Gaithersburg, Md .: Publicaciones de Aspen. ISBN 978-0834213067.
- ^ Cole, Richard; Jarvis, Bruce; Schweikert, Milbra (2003). Manual de metabolitos fúngicos secundarios . Oxford: académico. ISBN 978-0-12-179460-6.
- ^ a b Zhang, XiaoMei; Li, GuoHong; Ma, Juan; Zeng, Ying; Ma, WeiGuang; Zhao, PeiJi (9 de enero de 2011). "Hongo endofítico Trichothecium roseum LZ93 antagonizando hongos patógenos in vitro y sus metabolitos secundarios". La Revista de Microbiología . 48 (6): 784–790. doi : 10.1007 / s12275-010-0173-z . PMID 21221935 . S2CID 11928442 .
- ^ a b Konishi, Kazuhide; Iida, Akira; Kaneko, Masafumi; Tomioka, Kiyoshi; Tokuda, Harukuni; Nishino, Hoyoku; Kumeda, Yuko (junio de 2003). "Potencial preventivo del cáncer de los tricotecenos de Trichothecium roseum". Química bioorgánica y medicinal . 11 (12): 2511-2518. doi : 10.1016 / S0968-0896 (03) 00215-3 . PMID 12757719 .
- ^ Iida, Akira; Konishi, Kazuhide; Kubo, Hiroki; Tomioka, Kiyoshi; Tokuda, Harukuni; Nishino, Hoyoku (diciembre de 1996). "Tricotecinoles A, B y C, potentes sesquiterpenoides promotores antitumorales del hongo Trichothecium roseum". Letras de tetraedro . 37 (51): 9219–9220. doi : 10.1016 / S0040-4039 (96) 02187-9 .
- ^ a b Taware, R; Abnave, P; Patil, D; Rajamohananan, P; Raja, R; Soundararajan, G; Kundu, G; Ahmad, A (2014). "Aislamiento, purificación y caracterización del Tricotecinol-A producido por el hongo endofítico Trichothecium sp. Y sus actividades antifúngicas, anticancerígenas y antimetastásicas" . Procesos químicos sostenibles . 2 (1): 8. doi : 10.1186 / 2043-7129-2-8 .
- ^ a b Freeman, GG; Morrison, RI (1949). "Productos metabólicos de Trichothecium roseum Link" . Revista bioquímica . 45 (2): 191-199. doi : 10.1042 / bj0450191 . PMC 1274970 . PMID 16748611 .
- ^ Žabka, Martin; Drastichová, Kamila; Jegorov, Alexandr; Soukupová, Julie; Nedbal, Ladislav (julio de 2006). "Evidencia directa de la actividad fitopatógena de los metabolitos fúngicos de Trichothecium roseum en Apple". Micopatología . 162 (1): 65–68. doi : 10.1007 / s11046-006-0030-0 . PMID 16830194 . S2CID 23611080 .
- ^ a b c d Tang, Y; Xue, H; Bi, Y; Li, Y; Wang, Y; Zhao, Y; Shen, K (2014). "Un método de análisis para la toxina T-2 y neosolaniol por UPLC-MS / MS en manzanas inoculadas con Trichothecium roseum". Aditivos Alimentarios y Contaminantes: Parte A . 32 (4): 480–487. doi : 10.1080 / 19440049.2014.968884 . PMID 25254921 . S2CID 1277261 .
- ^ a b c d e Oh, SY; Nam, KW; Yoon, DH (2014). "Identificación y aislamiento de uva con síntoma de mancha blanca en Corea" . Micobiología . 42 (3): 269-273. doi : 10.5941 / MYCO.2014.42.3.269 . PMC 4206793 . PMID 25346604 .
- ^ a b c d e f Serra, R; Braga, A; Venâncio, A (2005). "Hongos productores de micotoxinas y otros aislados de la uva para la producción de vino, con especial énfasis en la ocratoxina A". Investigación en Microbiología . 156 (4): 515–521. doi : 10.1016 / j.resmic.2004.12.005 . hdl : 1822/2614 . PMID 15862450 .
- ^ Han, KS; Lee, SC; Lee, JS; Soh, JW (2012). "Primer informe de la pudrición del moho rosa en la fruta del tomate causada por Trichothecium roseum en Corea" . Investigación en enfermedades de las plantas . 18 (4): 396–398. doi : 10.5423 / RPD.2012.18.4.396 .
- ^ Hamid, MI; Hussain, M; Ghazanfar, MU; Raza, M; Liu, XZ (2014). "Causa la pudrición de la fruta de tomate, naranja y manzana en Pakistán" . Enfermedad de las plantas . 98 (9): 1271. doi : 10.1094 / PDIS-01-14-0051-PDN . PMID 30699663 .
- ^ a b Rees, D; Farrell, G; Orchard, JE (2006). Postcosecha de cultivos: ciencia y tecnología . Oxford: Blackwell Science. pag. 464. ISBN 978-0-632-05725-2.
enlaces externos
- Trichothecium roseum en MycoBank .
- Trichothecium roseum en Index Fungorum
- Datos relacionados con Trichothecium roseum en Wikispecies
- Medios relacionados con Trichothecium roseum en Wikimedia Commons