Lucinidae
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Lucinidae
Rango temporal: Silúrico - Presente
Divaricella huttoniana (rotada) .jpg
Divaricella huttoniana
clasificación cientifica mi
Reino:Animalia
Filo:Moluscos
Clase:Bivalvia
Subclase:Heterodonta
Pedido:Lucinida
Superfamilia:Lucinoidea
Familia:Lucinidae
Fleming , 1828
Genera

Ver texto.

Lucinidae es una familia de almejas de agua salada , moluscos bivalvos marinos .

Estos bivalvos son notables por su endosimbiosis con bacterias oxidantes de sulfuro . [1]

Caracteristicas

Los miembros de esta familia se encuentran en arena o grava fangosa en la marca de la marea baja o por debajo de ella. Tienen conchas característicamente redondeadas con proyecciones orientadas hacia adelante. Las válvulas están aplanadas y grabadas con anillos concéntricos. Cada válvula tiene dos dientes laterales cardinales y dos laterales en forma de placa. Estos moluscos no tienen sifones pero el pie extremadamente largo forma un canal que luego se recubre con limo y sirve para la toma y expulsión del agua. [2]

Simbiosis

Los lucínidos alojan sus simbiontes oxidantes de azufre en células branquiales especializadas llamadas bacteriocitos. [3] Los lucínidos son bivalvos excavadores que viven en ambientes con sedimentos ricos en sulfuros. [4] El bivalvo bombeará agua rica en sulfuro sobre sus branquias desde el sifón de inhalación para proporcionar a los simbiontes azufre y oxígeno. [4] Los endosimbiontes luego usan estos sustratos para fijar carbono en compuestos orgánicos, que luego se transfieren al huésped como nutrientes. [5] Durante los períodos de inanición, los lucínidos pueden cosechar y digerir sus simbiontes como alimento. [5]

Los simbiontes se adquieren a través de la fagocitosis de bacterias por bacterioctyes. [6] La transmisión de simbiontes ocurre horizontalmente, donde los lucínidos juveniles son aposimbióticos y adquieren sus simbiontes del medio ambiente en cada generación. [7] Los lucínidos mantienen su población simbionte al volver a adquirir bacterias oxidantes de azufre a lo largo de su vida. [8] Aunque el proceso de adquisición de simbiontes no está completamente caracterizado, es probable que implique el uso de la proteína de unión, codakine, aislada del bivalvo lucinid, Codakia orbicularis . [9] También se sabe que los simbiontes no se replican dentro de los bacteriocitos debido a la inhibición del huésped. Sin embargo, este mecanismo no se comprende bien.[8]

Los bivalvos lucinidos se originaron en el Silúrico ; sin embargo, no se diversificaron hasta finales del Cretácico , junto con la evolución de las praderas de pastos marinos y los manglares. [10] Los lucínidos pudieron colonizar estos sedimentos ricos en sulfuros porque ya mantenían una población de simbiontes oxidantes de sulfuros. En los entornos modernos, los pastos marinos, los bivalvos lucinidos y los simbiontes oxidantes del azufre constituyen una simbiosis de tres vías. Debido a la falta de oxígeno en los sedimentos marinos costeros, las densas praderas de pastos marinos producen sedimentos ricos en sulfuros al atrapar materia orgánica que luego se descompone por bacterias reductoras de sulfato. [11] El lucinid-simbionte holobionteelimina el sulfuro tóxico del sedimento y las raíces de los pastos marinos proporcionan oxígeno al sistema bivalvo-simbionte. [11]

Los simbiontes de al menos dos especies de almejas lucínidas, Codakia orbicularis y Loripes lucinalis , son capaces de fijar nitrógeno gaseoso en nitrógeno orgánico. [12] [13]

Géneros y especies

Las especies y géneros incluyen:

  • Alucinoma Habe, 1958
    • Alucinoma soyae Habe, 1958
  • Enlace de anodoncia , 1807
    • Anodontia alba Link, 1807 - ranúnculo lucine
    • Anodontia edentula ( Linnaeus , 1758 )
    • Anodontia edentuloides ( Verrill , 1870)
    • Anodontia hawaiensis ( Dall , Bartsch y Rehder, 1938)
    • Óvulo de anodoncia ( Reeve , 1850)
    • Anodontia philippiana ( Reeve , 1850) - ranúnculo calcáreo
    • Anodontia vesicula ( Gould , 1850)
  • Bretskya Glover y Taylor, 2007
    • Bretskya escápula Glover & Taylor, 2007
  • Cardiolucina
    • Cardiolucina undula Glover & Taylor, 2007
  • Cavilucina
  • Chavania
    • Chavania striata (Tokunaga, 1906)
  • Clathrolucina J. D. Taylor y Glover, 2013
    • Clathrolucina costata (d'Orbigny, 1845)
  • Codakia Scopoli , 1777
    • Codakia cubana Dall , 1901
    • Codakia decussata (OG Costa, 1836)
    • Codakia distinguenda (Tryon, 1872)
    • Codakia orbicularis ( Linnaeus , 1758 ) - tiger lucine
    • Codakia orbiculata (Montagu, 1808) - lucine tigre enano
    • Codakia paytenorum ( Iredale , 1937)
    • Codakia pectinella (CB Adams, 1852)
    • Codakia punctata ( Linnaeus , 1758 )
    • Codakia tigerina ( Linnaeus , 1758 )
  • Ctena Mörch , 1860
    • Ctena bella ( Conrad , 1837)
    • Ctena orbiculata (Montagu, 1808)
  • Divalinga Chavan, 1951
    • Divalinga quadrisulcata ( d'Orbigny , 1842)
  • Divaricella von Martens, 1880
    • Divaricella angulifera ( d'Orbigny , 1842)
    • Divaricella dentata (W. Wood, 1815) - lucine dentado
    • Divaricella divaricata
    • Divaricella huttoniana (Vanatta, 1901)
    • Divaricella quadrisulcata ( d'Orbigny , 1842) - lucine cruzada
  • Epicodakia Iredale , 1930
    • Epicodakia neozelanica Powell , 1937
    • Epicodakia nodulosa Glover y Taylor, 2007
    • Epicodakia sweeti ( Hedley , 1899)
  • Epilucina Dall , 1901
    • Epilucina californica ( Conrad , 1837)
  • Ferrocina Glover y Taylor, 2007
    • Ferrocina multiradiata Glover & Taylor, 2007
  • Fimbria (tradicionalmente colocada en la familia separada Fimbriidae )
    • Fimbria fimbriata ( Linnaeus , 1758 )
    • Fimbria soverbii ( Reeve , 1842)
  • Funafutia
    • Funafutia levukana (Smith, 1885)
  • Gonimyrtea Marwick , 1929
    • Gonimyrtea avia Glover y Taylor, 2007
    • Gonimyrtea concinna ( Hutton , 1885)
    • Gonimyrtea fidelis Glover y Taylor, 2007
  • Aquí Gabb, 1866
    • Aquí excavata ( Carpenter , 1857)
    • Aquí ricthofeni (Gabb, 1866)
  • Indoaustriella Glover, JD Taylor y ST Williams, 2008
  • Lamellolucina J. D. Taylor y Glover, 2002
  • Lepidolucina Glover y Taylor, 2007
    • Lepidolucina belepia Glover y Taylor, 2007
  • Leucosphaera Taylor y Glover, 2005
    • Leucosphaera diaphana Glover y Taylor, 2007
    • Leucosphaera salamensis (Thiele y Jaeckel, 1931)
  • Linga De Gregorio, 1884
    • Linga amiantus ( Dall , 1886)
    • Linga cancellaris ( Philippi , 1846)
    • Linga columbella Lamarck , 1819
    • Linga excavata ( carpintero , 1857)
    • Linga leucocyma Dall , 1886
    • Linga leucocymoides (Lowe, 1935)
    • Linga pensylvanica ( Linnaeus , 1758 )
    • Linga sombrerensis ( Dall , 1886)
    • Linga undatoides ( Hertlein y Strong, 1945)
  • Liralucina Glover y Taylor, 2007
    • Liralucina craticula Glover y Taylor, 2007
    • Liralucina lifouina Glover y Taylor, 2007
    • Liralucina sperabilis ( Hedley , 1909)
    • Liralucina vaubani Glover y Taylor, 2007
  • Loripes Poli, 1791
    • Loripes lucinalis ( Lamarck , 1818)
  • Lucina Bruguière, [1797] [14]
    • Lucina pectinata ( Gmelin , 1791)
    • Lucina radianes ( Conrad , 1841)
  • Lucinella Monterosato , 1883
    • Lucinella divaricata ( Linnaeus , 1758 )
  • Lucinisca Dall , 1901
  • Lucinoma Dall , 1901
    • Lucinoma aequizonatum (Stearns, 1890)
    • Lucinoma annulatum ( Reeve , 1850)
    • Lucinoma atlantis R. A. Mclean, 1936
    • Lucinoma blakeanum (Bush, 1893)
    • Lucinoma boreal
    • Lucinoma filosa (Stimpson, 1851)
    • Lucinoma filosum (Stimpson, 1851)
    • Lucinoma galathea Marwick , 1953)
    • Lucinoma heroica ( Dall , 1901)
    • Lucinoma kazani Salas y Woodside, 2002
  • Megaxinus Brugnone, 1880
  • Monitilora Iredale, 1930
  • Myrtea Turton , 1822
    • Myrtea compressa ( Dall , 1881)
    • Lente Myrtea (AE Verrill y S. Smith, 1880)
    • Myrtea pristiphora Dall y Simpson, 1901
    • Myrtea sagrinata ( Dall , 1886)
    • Myrtea spinifera Montagu, 1803
  • Myrtina Glover y Taylor, 2007
    • Myrtina leptolira Glover y Taylor, 2007
    • Myrtina porcata Glover y Taylor, 2007
  • Notomyrtea Iredale , 1924
    • Notomyrtea botanica Hedley , 1918
    • Notomyrtea vincentia Glover y Taylor, 2007
  • Parvidontia Glover y Taylor, 2007
    • Parvidontia laevis Glover y Taylor, 2007
  • Parvilucina Dall , 1901
    • Parvilucina aproximata ( Dall , 1901)
    • Parvilucina blanda (Bland y Simpson, 1901)
    • Parvilucina lampra ( Dall , 1901)
    • Parvilucina lingualis ( Carpintero , 1864)
    • Parvilucina mazatlanica ( Carpintero , 1855)
    • Parvilucina multilineata (Tuomey y Holmes, 1857)
    • Parvilucina tenuisculpta ( Carpintero , 1864)
  • Pillucina Pilsbry , 1921
    • Pillucina copiosa Glover y Taylor, 2007
    • Pillucina hawaiiensis
    • Pillucina spaldingi Pilsbry , 1921
    • Pillucina pacifica Glover y Taylor, 2001
  • Pleurolucina Dall, 1901
  • Poumea Glover y Taylor, 2007
    • Poumea coselia Glover y Taylor, 2007
  • Pseudomiltha
    • Pseudomiltha floridana ( Conrad , 1833)
    • Pseudomiltha tixierae Klein, 1967
  • Radiolucina Britton, 1972
  • Solelucina Glover y Taylor, 2007
    • Solelucina koumacia Glover y Taylor, 2007
  • Stewartia Olsson, A. y Harbison, A. 1953
    • Stewartia floridana (Conrad, 1833)
  • Wallucina
    • Wallucina fijiensis (Smith, 1885)

Referencias

  1. ^ Taylor, JD; Glover, EA (24 de noviembre de 2006). "Lucinidae (Bivalvia) - el grupo más diverso de moluscos quimiosimbióticos" . Revista Zoológica de la Sociedad Linneana . 148 (3): 421–438. doi : 10.1111 / j.1096-3642.2006.00261.x . ISSN  0024-4082 .
  2. ^ Barrett, JH y CM Yonge, 1958. Collins Pocket Guide to the Sea Shore. P. 161. Collins, Londres
  3. ^ Roeselers, Guus; Newton, Irene LG (22 de febrero de 2012). "Sobre la ecología evolutiva de las simbiosis entre bacterias quimiosintéticas y bivalvos" . Microbiología y Biotecnología Aplicadas . 94 (1): 1–10. doi : 10.1007 / s00253-011-3819-9 . ISSN 0175-7598 . PMC 3304057 . PMID 22354364 .   
  4. ↑ a b Seilacher, Adolf (1 de enero de 1990). "Aberraciones en la evolución de los bivalvos relacionados con la foto y la quimiosimbiosis". Biología histórica . 3 (4): 289–311. doi : 10.1080 / 08912969009386528 . ISSN 0891-2963 . 
  5. ↑ a b König, Sten; Le Guyader, Hervé; Gros, Olivier (1 de febrero de 2015). "Los endosimbiontes bacterianos tioautotróficos se degradan por digestión enzimática durante la inanición: estudio de caso de dos lucínidos Codakia orbicularis y C. orbiculata" (PDF) . Investigación y técnica de microscopía . 78 (2): 173-179. doi : 10.1002 / jemt.22458 . ISSN 1097-0029 . PMID 25429862 . S2CID 24772017 .    
  6. ^ Elisabeth, Nathalie H .; Gustave, Sylvie DD; Gros, Olivier (1 de agosto de 2012). "Proliferación celular y apoptosis en filamentos branquiales del lucínido Codakia orbiculata (Montagu, 1808) (Mollusca: Bivalvia) durante la descolonización y recolonización bacteriana". Investigación y técnica de microscopía . 75 (8): 1136-1146. doi : 10.1002 / jemt.22041 . ISSN 1097-0029 . PMID 22438018 . S2CID 7250847 .   
  7. ^ Brillante, Monika; Bulgheresi, Silvia (1 de marzo de 2010). "Un viaje complejo: transmisión de simbiontes microbianos" . Nature Reviews Microbiología . 8 (3): 218–230. doi : 10.1038 / nrmicro2262 . ISSN 1740-1526 . PMC 2967712 . PMID 20157340 .   
  8. ^ a b Gros, Olivier; Elisabeth, Nathalie H .; Gustave, Sylvie DD; Caro, Audrey; Dubilier, Nicole (1 de junio de 2012). "Plasticidad de la adquisición de simbiontes a lo largo del ciclo de vida del lucínido tropical de aguas someras Codakia orbiculata (Mollusca: Bivalvia)". Microbiología ambiental . 14 (6): 1584-1595. doi : 10.1111 / j.1462-2920.2012.02748.x . ISSN 1462-2920 . PMID 22672589 .  
  9. ^ Gourdine, Jean-Philippe; Smith-Ravin, Emilie Juliette (1 de mayo de 2007). "Análisis de una secuencia derivada de cDNA de una nueva lectina de unión a manosa, codakine, de la almeja tropical Codakia orbicularis". Inmunología de pescados y mariscos . 22 (5): 498–509. doi : 10.1016 / j.fsi.2006.06.013 . PMID 17169576 . 
  10. ^ Stanley, SM (2014). "Radiación evolutiva de Lucinidae de aguas someras (Bivalvia con endosimbiontes) como resultado del aumento de pastos marinos y manglares". Geología . 42 (9): 803–806. Código bibliográfico : 2014Geo .... 42..803S . doi : 10.1130 / g35942.1 .
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  13. ^ König, Sten; Gros, Olivier; Heiden, Stefan E .; Hinzke, Tjorven; Thürmer, Andrea; Poehlein, Anja; Meyer, Susann; Vatin, Magalie; Mbéguié-A-Mbéguié, Didier (24 de octubre de 2016). "Fijación de nitrógeno en una simbiosis lucínida quimioautotrófica" . Microbiología de la naturaleza . 2 (1): 16193. doi : 10.1038 / nmicrobiol.2016.193 . ISSN 2058-5276 . PMID 27775698 .  
  14. ^ Academia de Ciencias Naturales. Lamellibranquios del Cretácico y Terciario de California de Gabb: Publicaciones especiales de The Acad. de Ciencias Naturales de Filadelfia, No. 3 . pag. 175. ISBN 9781422317761.
  • Powell AWB , Nueva Zelanda Mollusca , William Collins Publishers Ltd , Auckland, Nueva Zelanda 1979 ISBN 0-00-216906-1 
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