Antirrhinum majus
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Antirrhinum majus
Antirrhinum majus de Thasos.JPG
Planta que crece en una antigua muralla en Thasos, Grecia
clasificación cientifica
Reino:
Plantae
(no clasificado):
Angiospermas
(no clasificado):
Eudicots
(no clasificado):
Asterides
Pedido:
Lamiales
Familia:
Plantaginaceae /
Veronicaceae [1]
Género:
Antirrino
Especies:
A. majus
Nombre binomial
Antirrhinum majus

Antirrhinum majus , la boca de dragón común (a menudo, especialmente en horticultura , simplemente "boca de dragón" ), es una especie de planta con flores perteneciente al género Antirrhinum . La planta se colocó en la familia Plantaginaceae después de una revisión de su familia clásica anterior, Scrophulariaceae . [2] [3]

El nombre común "boca de dragón", se origina en la reacción de las flores cuando se les aprieta la garganta, lo que hace que la "boca" de la flor se abra de golpe como la boca de un dragón. Es muy utilizada como planta ornamental en cenefas y como flor cortada . Es perenne pero generalmente se cultiva como planta anual. La especie ha estado en cultivo desde el siglo XV. [4]

Taxonomía

Antirrhinum majus
Antirrhinum majus subsp. linkianum
Boca de dragón - Antirrhinum majus (cultivar) con cogollos con pelos glandulares

Hay cinco subespecies : [5] [3]

  • Antirrhinum majus subsp. majus . Sur de Francia, noreste de España.
  • Antirrhinum majus subsp. cirrhigerum (Ficalho) Franco. Sur de Portugal, suroeste de España.
  • Antirrhinum majus subsp. linkianum (Boiss. y Reut.) Rothm. Portugal occidental (endémica).
  • Antirrhinum majus subsp. litigiosum (Pau) Rothm. Sureste de España.
  • Antirrhinum majus subsp. tortuosum (Bosc) Rouy. En toda la distribución de la especie.

Descripción

Herencia intermedia del color de la flor debido a una dominancia incompleta [6]

Es una planta herbácea perenne que alcanza entre 0,5 y 1 m de altura, rara vez hasta 2 m. Las hojas están dispuestas en espiral, ampliamente lanceoladas, de 1 a 7 cm de largo y 2 a 2,5 cm de ancho. El tallo glandular superior es redondo, a veces leñoso hasta la mitad. Las hojas opuestas son simples, elípticas u ovadas a lanceoladas anchas , a veces lineales y generalmente desoladas. Faltan folletos . [7]

Las flores se producen en una espiga alta, cada flor mide 3,5-4,5 cm de largo, zigomorfa , con dos 'labios' que cierran el tubo de la corola lobulado dividido en tres partes y es de color rojo púrpura, de casi 5 cm de largo. Las plantas silvestres tienen flores de color rosa a púrpura, a menudo con labios amarillos. La mayoría de las 8 a 30 flores de pedúnculo corto se encuentran juntas en una inflorescencia ; el eje de la inflorescencia es glandular piloso. La corona mide de 25 a 45 (rara vez a 70) milímetros de largo y en diferentes colores (rojo, rosa, naranja, amarillo, blanco). Las "fauces" de la coronilla están cerradas por la protuberancia del labio inferior, se habla aquí de "enmascarados", y evertidos holgados en la parte inferior. Hay un círculo con cuatro estambres . Las plantas son polinizadas porabejorros , y las flores se cierran sobre los insectos cuando entran y depositan polen en sus cuerpos. El cáliz mide hasta 8 mm de largo, con sépalos de igual longitud, oblongos a anchos.

El ovario es supremo. La fruta es un ovoide cápsula 10-14 mm en forma de un diámetro cráneo , [8] que contiene numerosas pequeñas semillas .[9]

Distancia

Es originaria de la región mediterránea, desde Marruecos y Portugal al norte hasta el sur de Francia, y al este hasta Turquía y Siria. A menudo crecen en grietas y paredes. [5]

Cultivo

Una boca de dragón pelórica

Antirrhinum majus, hasta cierto punto, puede sobrevivir a las heladas, así como a temperaturas más altas, pero se desarrolla mejor a temperaturas de entre 17 y 25 ° C. Las temperaturas nocturnas de entre 15 y 17 ° C fomentan el crecimiento tanto del meristemo apical como del tallo de A. majus . [2] La especie puede crecer bien a partir de semillas, floreciendo rápidamente en 3 a 4 meses. También se puede cultivar mediante esquejes . [10]

Aunque es perenne, la especie a menudo se cultiva como planta bienal o anual , particularmente en áreas más frías donde es posible que no sobreviva al invierno. Se encuentran disponibles numerosos cultivares , incluidas plantas con flores de lavanda, naranja, rosa, amarillo o blanco, y también plantas con flores pelóricas , donde la espiga de floración normal está coronada con una sola flor grande y simétrica. [9] [11] Los cultivares 'floral duchas profundo de bronce' [12] y 'Montego rosa' [13] han ganado la Royal Horticultural Society ‘s Premio de Mérito del jardín .

La variedad rastrera (rastrera) a menudo se denomina A. majus pendula (sin. A. pendula , A. repens ).

A menudo se escapa del cultivo, y las poblaciones naturalizadas se encuentran ampliamente en Europa al norte del área de distribución nativa, [9] y en otras partes de las regiones templadas del mundo. [3]

Últimos nombres comunes para majus Antirrhinum incluyen: gran boca de dragón , de león-boca , la boca de conejo , conejos Bonny , ternera hocico , la boca de sapo , bulldogs , y de león-SNAP . [14]

Organismo de investigación modelo

En el laboratorio es un organismo modelo , [15] por ejemplo que contiene el genDEFICIENS que proporciona la letra "D" en el acrónimo MADS-box para una familia de genes que son importantes en el desarrollo de las plantas . Antirrhinum majus se ha utilizado como organismo modelo en genética bioquímica y del desarrollo durante casi un siglo. Muchas de las características de A. majus lo hacían deseable como organismo modelo; estos incluyen su herencia diploide, facilidad de cultivo (con un tiempo de generación relativamente corto de alrededor de 4 meses), su facilidad tanto de autopolinización como de polinización cruzada, y la variación de A. majus en morfología y color de floración. También se beneficia de su divergencia de Arabidopsis thaliana , con A. thalianaSe utiliza como modelo común de eudicot, y se ha utilizado para compararlo con A. majus en estudios de desarrollo. [2]

También se han utilizado estudios en A. majus para sugerir que, a altas temperaturas, la metilación del ADN no es vital para suprimir el transposón Tam3 . Anteriormente, se sugirió que la metilación del ADN era importante en este proceso, esta teoría proviene de comparaciones de los grados de metilación cuando la transposición es activa e inactiva. Sin embargo, el proceso de transposón Tam3 ​​de A. majus no lo apoyó completamente. Su permiso de transposición a 15 ° C y una fuerte supresión de la transposición a temperaturas de alrededor de 25 ° C mostraron que era poco probable que la supresión del estado de transposición fuera causada por el estado de metilación. [dieciséis]Se demostró que la transposición dependiente de la temperatura baja era la causa de la metilación / desmetilación de Tam3, y no al revés como se creía anteriormente. Se demostró en un estudio que se encontraron disminuciones en la metilación de Tam3 ​​en tejido que aún se estaba desarrollando a temperaturas más frías, pero no en tejido que se desarrolló o creció a temperaturas más altas. [17]

Antirrhinum majus también se ha utilizado para examinar la relación entre polinizadores y plantas. Con debate sobre las ventajas evolutivas de la forma cónico-papilada de los pétalos de las flores, con argumentos que sugieren que la forma realzaba e intensificaba el color de la flor o ayudaba a orientar a los polinizadores a través de la vista o el tacto. El beneficio que aportó A. majus fue la identificación de una mutación en el locus MIXTA que impidió que se formara esta forma de pétalo cónico. Esto permitió probar las plantas de polinización con y sin pétalos cónicos, así como comparaciones de la absorción de luz entre estos dos grupos. Dado que el gen MIXTA es necesario en la formación de células cónicas, el uso del gen en la reproducción de Antirrhinumfue crucial y permitió las pruebas que demostraron por qué muchas plantas producían células epidérmicas papiladas cónicas. [18]

Otro papel que jugó A. majus en el examen de la relación entre polinizador y planta fue en los estudios de los aromas florales. Dos de las enzimas de A. majus , fenilpropanoides e isoprenoides, se utilizaron en el estudio de la producción de su aroma floral y el efecto del aroma en la atracción de polinizadores. [2]

Química

La antirrinina es una antocianina que se encuentra en A. majus . [19] Es el 3- rutinósido de la cianidina . Sus principios activos incluyen mucílagos , ácido gálico , resinas , pectina y amargos . Es un emoliente tópico , antiflogístico , astringente , antiescorbútico , hepático y diurético . Es eficaz contra las inflamaciones, se utiliza para las hemorroides . Se ha utilizado en gárgaras contra ulceraciones.de la cavidad bucal. Internamente, se puede utilizar para la colitis y la acidez estomacal . Externamente, como cataplasmas , sobre eritemas .

Plagas y enfermedades

Antirrhinum majus puede sufrir algunas plagas y enfermedades.

Plagas

Los insectos son las principales plagas que afectan a A. majus .

  • Pulgones : se dirigen y consumen el crecimiento terminal y la parte inferior de las hojas. Los pulgones consumen los líquidos de la planta y pueden causar una apariencia oscura o manchada en las hojas. [20]
  • Frankliniella occidentalis : Estos insectos afectan incluso a Antirrhinum sanos y de crecimiento fuerte; se ven comúnmente en flores recién abiertas. Causarán pequeñas lesiones en los brotes y botones florales de A. majus y eliminarán el polen de la antera. Este caso es difícil de tratar, pero puede mantenerse manejable con el ácaro depredador Neoseiulus . [2]

Enfermedades

Antirrhinum majus sufre principalmente de infecciones fúngicas.

  • Antracnosis : Enfermedad causada por hongos del género Colletotrichum . Esta enfermedad se dirige a las hojas y al tallo, provocando que adquieran un color amarillo con un borde pardusco en la zona infectada. Se recomienda destruir las plantas infectadas y espaciar más las existentes. [20]
  • Botrytis : también conocida como moho gris, esta infección se produce debajo de la flor de A. majus . La botritis provoca el marchitamiento de las espigas de las flores y un ligero oscurecimiento del tallo debajo del racimo de flores. [20] Botrytis provoca un secado y un pardeamiento rápidos y localizados en la flor, las hojas y los brotes de A. majus . En climas más cálidos, Botrytis se vuelve más severa. El tratamiento de Botrytis implica cortar el ganado infectado y limpiar el área circundante de A. majus de cualquiera de estos desechos.
  • Pythium : el marchitamiento de la planta puede ser causado por unainfección por hongos de la especie Pythium si la planta está recibiendo suficiente agua. [2]
  • Roya : Otra enfermedad fúngica a la que A. majus es susceptible es la roya. Primero se puede ver en la planta como círculos de color verde claro, en el tallo o en la parte inferior de sus hojas, que eventualmente se vuelven marrones y forman pústulas. [2] La roya puede hacer que A. majus florezca prematuramente, brote flores más pequeñas y comience la descomposición antes. [20]
  • Pudrición del tallo : una infección por hongos, se puede ver como un crecimiento algodonoso en el tallo, bajo, cerca del suelo. Si está infectado, se sugiere que la planta sea destruida. [20]

Galería

  • Vista cercana de Antirrhinum majus

  • Flor de boca de dragón blanca

  • Flor de boca de dragón amarilla

  • Flor de boca de dragón rosa

  • Flor de boca de dragón blanca

  • Flor de boca de dragón amarilla

  • Ramo de flores de boca de dragón rosa

  • Flor de Antirrhinum majus

Referencias

  1. ^ Tanque, David C .; Beardsley, Paul M .; Kelchner, Scot A .; Olmstead, Richard G. (2006). "Revisión de la sistemática de Scrophulariaceae sl y su disposición actual". Botánica sistemática australiana . 19 (4): 289-307. doi : 10.1071 / SB05009 .
  2. ^ a b c d e f g Hudson, Andrew; Critchley, Joanna; Erasmus, Yvette (1 de octubre de 2008). "El género Antirrhinum (Snapdragon): un modelo de planta con flores para la evolución y el desarrollo" . Protocolos de Cold Spring Harbor . 2008 (10): pdb.emo100. doi : 10.1101 / pdb.emo100 . ISSN 1940-3402 . PMID 21356683 .  
  3. ^ a b c " Antirrhinum majus " . Red de información sobre recursos de germoplasma (GRIN) . Servicio de Investigación Agrícola (ARS), Departamento de Agricultura de los Estados Unidos (USDA) . Consultado el 24 de diciembre de 2017 .
  4. ^ Siegmund Seybold: Flora de Alemania y países vecinos. Un libro para identificar plantas vasculares silvestres y cultivadas con frecuencia. Fundada por Otto Schmeil, Jost Fitschen. 93. Edición completamente revisada y ampliada. Quelle y Meyer, Wiebelsheim 2006, ISBN 3-494-01413-2 
  5. ↑ a b Flora Europaea : Antirrhinum majus
  6. ^ Neil A. Campbell , Jane B. Reece : Biología. Spektrum-Verlag Heidelberg-Berlin 2003, ISBN 3-8274-1352-4 , página 302. 
  7. ^ Erich Oberdorfer: Flora de excursión de sociología vegetal para Alemania y áreas adyacentes. En colaboración con Angelika Schwabe y Theo Müller. Octava edición, muy revisada y complementada. Eugen Ulmer, Stuttgart (Hohenheim) 2001, ISBN 3-8001-3131-5 , pág. 828. 
  8. ^ "El cráneo del dragón: la apariencia macabra de las vainas de semillas de Snapdragon" . Kuriositas . 26 de enero de 2019.
  9. ^ a b c Blamey, M .; Gray-Wilson, C. (1989). Flora de Gran Bretaña y Europa del Norte . ISBN 978-0-340-40170-5.
  10. ^ David A. Sutton: una revisión de la tribu Antirrhineae. Oxford University Press, Londres / Oxford 1988, ISBN 0-19-858520-9 , pág. 90-96. 
  11. ^ Huxley, A, ed. (1992). Nuevo diccionario de jardinería de RHS . ISBN 978-0-333-47494-5.
  12. ^ "RHS Plantfinder - Antirrhinum majus 'Lluvias florales de bronce profundo ' " . Consultado el 12 de enero de 2018 .
  13. ^ "Buscador de plantas RHS - Antirrhinum majus 'Montego Pink ' " . Consultado el 13 de enero de 2018 .
  14. ^ Gentianaceae a Compositae; genciana al cardo . Publicaciones de Dover; 1970. ISBN 978-0-486-22644-6 . pag. 178. 
  15. ^ Oyama, RK; Baum, DA (2004). "Relaciones filogenéticas de Antirrhinum norteamericano (Veronicaceae)". Revista estadounidense de botánica . 91 (6): 918-25. doi : 10.3732 / ajb.91.6.918 . PMID 21653448 . 
  16. ^ Hashida, Shin-nosuke; Kishima, Yuji; Mikami, Tetsuo (1 de noviembre de 2005). "La metilación del ADN no es necesaria para la inactivación del transposón Tam3 ​​a temperatura no permisiva en Antirrhinum" (PDF) . Revista de fisiología vegetal . 162 (11): 1292-1296. doi : 10.1016 / j.jplph.2005.03.003 . hdl : 2115/8374 . ISSN 0176-1617 . PMID 16323282 .   
  17. ^ Hashida, Shin-Nosuke; Uchiyama, Takako; Martin, Cathie; Kishima, Yuji; Sano, Yoshio; Mikami, Tetsuo (21 de abril de 2017). "El cambio dependiente de la temperatura en la metilación del transposón Tam3 ​​de Antirrhinum está controlado por la actividad de su transposasa" . La célula vegetal . 18 (1): 104-118. doi : 10.1105 / tpc.105.037655 . ISSN 1040-4651 . PMC 1323487 . PMID 16326924 .   
  18. ^ Glover, Beverley J .; Martin, Cathie (1 de junio de 1998). "El papel de la pigmentación y la forma de las células del pétalo en el éxito de la polinización en Antirrhinum majus" . Herencia . 80 (6): 778–784. doi : 10.1046 / j.1365-2540.1998.00345.x . ISSN 0018-067X . 
  19. ^ Scott-Moncrieff, R (1930). "Pigmentos de antocianina natural: el pigmento de flor magenta de Antirrhinum majus" . Revista bioquímica . 24 (3): 753–766. doi : 10.1042 / bj0240753 . PMC 1254517 . PMID 16744416 .  
  20. ↑ a b c d e Gilman, Edward F. (18 de mayo de 2015). "Antirrhinum majus Snapdragon" . edis.ifas.ufl.edu . Consultado el 17 de abril de 2017 .
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