El cultivo celular es el proceso mediante el cual las células crecen en condiciones controladas, generalmente fuera de su entorno natural. Una vez que las células de interés se han aislado del tejido vivo , se pueden mantener posteriormente en condiciones cuidadosamente controladas. Estas condiciones varían para cada tipo de célula, pero generalmente consisten en un recipiente adecuado con un sustrato o medio que suministra los nutrientes esenciales ( aminoácidos , carbohidratos , vitaminas , minerales ), factores de crecimiento , hormonas y gases ( CO 2 , O 2) y regula el entorno fisicoquímico ( tampón de pH , presión osmótica , temperatura ). La mayoría de las células requieren una superficie o un sustrato artificial para formar un cultivo adherente como una monocapa (de una sola célula de espesor), mientras que otras pueden crecer flotando libremente en un medio como un cultivo en suspensión . [1] La vida útil de la mayoría de las células está determinada genéticamente, pero algunas células de cultivo celular se han "transformado" en células inmortales que se reproducirán indefinidamente si se proporcionan las condiciones óptimas.
En la práctica, el término "cultivo celular" se refiere ahora al cultivo de células derivado de multicelulares eucariotas , especialmente animales células, en contraste con otros tipos de cultura que también crecen las células, tales como cultivo de tejidos vegetales , hongos cultura, y cultivo microbiológico ( de microbios ). El desarrollo histórico y los métodos de cultivo celular están estrechamente relacionados con los del cultivo de tejidos y el cultivo de órganos . El cultivo viral también está relacionado con las células como hospedadores de los virus.
La técnica de laboratorio de mantener líneas celulares vivas (una población de células descendientes de una sola célula y que contienen la misma composición genética) separadas de su fuente de tejido original se hizo más robusta a mediados del siglo XX. [2] [3]
El fisiólogo inglés del siglo XIX Sydney Ringer desarrolló soluciones salinas que contienen cloruros de sodio, potasio, calcio y magnesio adecuadas para mantener el latido de un corazón animal aislado fuera del cuerpo. [4] En 1885, Wilhelm Roux extrajo una porción de la placa medular de un pollo embrionario y la mantuvo en una solución salina tibia durante varios días, estableciendo el principio del cultivo de tejidos. [5] Ross Granville Harrison , trabajando en la Escuela de Medicina Johns Hopkins y luego en la Universidad de Yale., publicó los resultados de sus experimentos de 1907 a 1910, estableciendo la metodología de cultivo de tejidos . [6]
Las técnicas de cultivo celular avanzaron significativamente en las décadas de 1940 y 1950 para apoyar la investigación en virología . El crecimiento de virus en cultivos celulares permitió la preparación de virus purificados para la fabricación de vacunas . La vacuna inyectable contra la poliomielitis desarrollada por Jonas Salk fue uno de los primeros productos producidos en masa utilizando técnicas de cultivo celular. Esta vacuna fue posible gracias a la investigación en cultivo celular de John Franklin Enders , Thomas Huckle Weller y Frederick Chapman Robbins , quienes recibieron el Premio Nobel por su descubrimiento de un método para hacer crecer el virus en cultivos de células de riñón de mono .
Las células pueden aislarse de tejidos para cultivo ex vivo de varias formas. Las células se pueden purificar fácilmente de la sangre; sin embargo, solo los glóbulos blancos pueden crecer en cultivo. Las células pueden aislarse de tejidos sólidos digiriendo la matriz extracelular usando enzimas como colagenasa , tripsina o pronasa , antes de agitar el tejido para liberar las células en suspensión. [7] [8] Alternativamente, se pueden colocar trozos de tejido en un medio de crecimiento y las células que crecen están disponibles para cultivo. Este método se conoce como cultivo de explantes .
Las células que se cultivan directamente de un sujeto se conocen como células primarias. Con la excepción de algunos derivados de tumores, la mayoría de los cultivos de células primarias tienen una vida útil limitada.
Una línea celular establecida o inmortalizada ha adquirido la capacidad de proliferar indefinidamente mediante mutación aleatoria o modificación deliberada, como la expresión artificial del gen de la telomerasa . Numerosas líneas celulares están bien establecidas como representativas de tipos de células particulares .
Para la mayoría de las células primarias aisladas, se someten al proceso de senescencia y dejan de dividirse después de un cierto número de duplicaciones de población, mientras que generalmente conservan su viabilidad (descrito como el límite de Hayflick ).
Aparte de la temperatura y la mezcla de gases, el factor más comúnmente variado en los sistemas de cultivo es el medio de crecimiento celular . Las recetas de medios de crecimiento pueden variar en pH , concentración de glucosa, factores de crecimiento y la presencia de otros nutrientes. Los factores de crecimiento utilizados para complementar los medios a menudo se derivan del suero de sangre animal, como suero fetal bovino (FBS), suero bovino de ternera, suero equino y suero porcino. Una complicación de estos ingredientes derivados de la sangre es el potencial de contaminación del cultivo con virus o priones , particularmente en biotecnología médica.aplicaciones. La práctica actual es minimizar o eliminar el uso de estos ingredientes siempre que sea posible y usar lisado de plaquetas humanas (hPL). [9] Esto elimina la preocupación de la contaminación entre especies cuando se usa FBS con células humanas. hPL ha surgido como una alternativa segura y confiable como reemplazo directo de FBS u otro suero animal. Además, se pueden usar medios químicamente definidos para eliminar cualquier rastro de suero (humano o animal), pero esto no siempre se puede lograr con diferentes tipos de células. Las estrategias alternativas implican obtener sangre animal de países con un riesgo mínimo de EEB / EET , como Estados Unidos, Australia y Nueva Zelanda, [10]y usar concentrados de nutrientes purificados derivados de suero en lugar de suero animal completo para cultivo celular. [11]
La densidad de placa (número de células por volumen de medio de cultivo) juega un papel crítico para algunos tipos de células. Por ejemplo, una densidad de placas inferior hace que las células de la granulosa exhiben la producción de estrógenos, mientras que una densidad de placas superior hace aparecer como progesterona -producir tecales células luteína . [12]
Las células pueden cultivarse en suspensión o en cultivos adherentes . [13] Algunas células viven naturalmente en suspensión, sin estar adheridas a una superficie, como las células que existen en el torrente sanguíneo. También hay líneas celulares que se han modificado para poder sobrevivir en cultivos en suspensión, de modo que puedan crecer a una densidad más alta que la que permitirían las condiciones de adherencia. Las células adherentes requieren una superficie, como un plástico de cultivo de tejidos o un microvehículo , que puede recubrirse con componentes de matriz extracelular (como colágeno y laminina) para aumentar las propiedades de adhesión y proporcionar otras señales necesarias para el crecimiento y la diferenciación. La mayoría de las células derivadas de tejidos sólidos son adherentes. Otro tipo de cultura adherente escultivo organotípico , que implica el crecimiento de células en un entorno tridimensional (3-D) en lugar de placas de cultivo bidimensionales. Este sistema de cultivo 3D es bioquímica y fisiológicamente más similar al tejido in vivo , pero es técnicamente difícil de mantener debido a muchos factores (por ejemplo, difusión). [14]
Existen diferentes tipos de medios de cultivo celular que se utilizan de forma rutinaria en las ciencias de la vida, incluidos los siguientes:
Componente | Función |
---|---|
Fuente de carbono ( glucosa / glutamina ) | Fuente de energía |
Aminoácidos | Bloques de construcción de proteínas |
Vitaminas | Promover la supervivencia y el crecimiento celular. |
Solución salina equilibrada | Una mezcla isotónica de iones para mantener una presión osmótica óptima dentro de las células y proporcionar iones metálicos esenciales para actuar como cofactores de reacciones enzimáticas, adhesión celular, etc. |
Tinte rojo fenol | indicador de pH . El color del rojo fenol cambia de naranja / rojo a un pH de 7-7,4 a amarillo a un pH ácido (más bajo) y púrpura a un pH básico (más alto). |
Tampón de bicarbonato / HEPES | Se utiliza para mantener un pH equilibrado en los medios. |
Parámetro | |
---|---|
Temperatura | 37 ° C |
CO2 | 5% |
Humedad relativa | 95% |
La contaminación cruzada de líneas celulares puede ser un problema para los científicos que trabajan con células cultivadas. [15] Los estudios sugieren que entre el 15 y el 20% de las veces, las células utilizadas en los experimentos se han identificado erróneamente o se han contaminado con otra línea celular. [16] [17] [18] Incluso se han detectado problemas con la contaminación cruzada de líneas celulares en líneas del panel NCI-60 , que se utilizan de forma rutinaria para estudios de detección de drogas. [19] [20] Principales depósitos de líneas celulares, incluida la Colección Americana de Cultivos Tipo(ATCC), la Colección Europea de Cultivos Celulares (ECACC) y la Colección Alemana de Microorganismos y Cultivos Celulares (DSMZ), han recibido presentaciones de líneas celulares de investigadores que fueron identificados erróneamente por ellos. [19] [21] Tal contaminación plantea un problema para la calidad de la investigación producida utilizando líneas de cultivo celular, y los principales repositorios están ahora autenticando todas las presentaciones de líneas celulares. [22] ATCC utiliza huellas dactilares de ADN de repetición corta en tándem (STR) para autenticar sus líneas celulares. [23]
Para abordar este problema de contaminación cruzada de líneas celulares, se anima a los investigadores a autenticar sus líneas celulares en un pase temprano para establecer la identidad de la línea celular. La autenticación debe repetirse antes de congelar las reservas de líneas celulares, cada dos meses durante el cultivo activo y antes de cualquier publicación de los datos de investigación generados utilizando las líneas celulares. Se utilizan muchos métodos para identificar líneas celulares, incluido el análisis de isoenzimas , tipificación de antígenos de linfocitos humanos (HLA), análisis cromosómico, cariotipo, morfología y análisis STR . [23]
Un contaminante cruzado de línea celular importante es la línea celular inmortal HeLa .
Como las células generalmente continúan dividiéndose en cultivo, generalmente crecen para llenar el área o volumen disponible. Esto puede generar varios problemas:
La elección del medio de cultivo podría afectar la relevancia fisiológica de los hallazgos de los experimentos de cultivo celular debido a las diferencias en la composición y concentraciones de nutrientes. [25] Recientemente se demostró un sesgo sistemático en los conjuntos de datos generados para las pantallas de silenciamiento de genes CRISPR y RNAi , [26] y para el perfil metabólico de las líneas celulares de cáncer . [25] El uso de un medio de crecimiento que represente mejor los niveles fisiológicos de nutrientes puede mejorar la relevancia fisiológica de los estudios in vitro y, recientemente, los tipos de medios, como Plasmax [27] y Human Plasma Like Medium (HPLM),[28] fueron desarrollados.
Entre las manipulaciones comunes que se llevan a cabo en las células de cultivo se encuentran los cambios de medios, las células de paso y las células de transfección. Por lo general, se realizan mediante métodos de cultivo de tejidos que se basan en una técnica aséptica . La técnica aséptica tiene como objetivo evitar la contaminación con bacterias, levaduras u otras líneas celulares. Las manipulaciones se llevan a cabo típicamente en una cabina de bioseguridad o cabina de flujo laminar para excluir microorganismos contaminantes. También se pueden añadir al medio de crecimiento antibióticos (por ejemplo, penicilina y estreptomicina ) y antifúngicos (por ejemplo, anfotericina B y solución de antibiótico- antimicótico) .
A medida que las células se someten a procesos metabólicos, se produce ácido y el pH disminuye. A menudo, se agrega un indicador de pH al medio para medir el agotamiento de nutrientes.
En el caso de cultivos adherentes, el medio se puede eliminar directamente por aspiración y luego se reemplaza. Los cambios de medio en cultivos no adherentes implican centrifugar el cultivo y resuspender las células en medio fresco.
El paso (también conocido como subcultivo o división de células) implica transferir una pequeña cantidad de células a un nuevo recipiente. Las células se pueden cultivar durante más tiempo si se dividen con regularidad, ya que evita la senescencia asociada con una alta densidad celular prolongada. Los cultivos en suspensión se pasan fácilmente con una pequeña cantidad de cultivo que contiene algunas células diluidas en un volumen mayor de medio fresco. Para cultivos adherentes, las células primero deben separarse; esto se hace comúnmente con una mezcla de tripsina - EDTA ; sin embargo, ahora se encuentran disponibles otras mezclas de enzimas para este propósito. A continuación, se puede utilizar una pequeña cantidad de células desprendidas para sembrar un nuevo cultivo. Algunos cultivos celulares, como las células RAW, se raspan mecánicamente de la superficie de su recipiente con raspadores de goma.
Otro método común para manipular células implica la introducción de ADN extraño por transfección . Esto a menudo se realiza para hacer que las células expresen un gen de interés. Más recientemente, la transfección de construcciones de ARNi se ha realizado como un mecanismo conveniente para suprimir la expresión de un gen / proteína particular. El ADN también se puede insertar en las células usando virus, en métodos denominados transducción , infección o transformación . Los virus, como agentes parasitarios, son muy adecuados para introducir ADN en las células, ya que esto es parte de su curso normal de reproducción.
Las líneas celulares que se originan en humanos han sido algo controvertidas en bioética , ya que pueden sobrevivir a su organismo original y luego usarse en el descubrimiento de tratamientos médicos lucrativos. En la decisión pionera en esta área, la Corte Suprema de California sostuvo en Moore v. Regents de la Universidad de California que los pacientes humanos no tienen derechos de propiedad sobre líneas celulares derivadas de órganos extraídos con su consentimiento. [29]
Es posible fusionar células normales con una línea celular inmortalizada . Este método se utiliza para producir anticuerpos monoclonales . En resumen, los linfocitos aislados del bazo (o posiblemente la sangre) de un animal inmunizado se combinan con una línea celular de mieloma inmortal (linaje de células B) para producir un hibridoma que tiene la especificidad de anticuerpo del linfocito primario y la inmortalidad del mieloma. Se usa medio de crecimiento selectivo (HA o HAT) para seleccionar contra células de mieloma no fusionadas; los linfocitos primarios mueren rápidamente en cultivo y solo sobreviven las células fusionadas. Estos se seleccionan para la producción del anticuerpo requerido, generalmente en grupos para comenzar y luego después de la clonación única.
Una cepa celular se deriva de un cultivo primario o de una línea celular mediante la selección o clonación de células que tienen propiedades o características específicas que deben definirse. Las cepas celulares son células que se han adaptado al cultivo pero, a diferencia de las líneas celulares, tienen un potencial de división finito. Las células no inmortalizadas dejan de dividirse después de 40 a 60 duplicaciones de población [30] y, después de esto, pierden su capacidad de proliferar (un evento determinado genéticamente conocido como senescencia). [31]
El cultivo masivo de líneas celulares animales es fundamental para la fabricación de vacunas virales y otros productos de la biotecnología. El cultivo de células madre humanas se usa para expandir el número de células y diferenciar las células en varios tipos de células somáticas para trasplante. [32] El cultivo de células madre también se utiliza para recolectar las moléculas y exosomas que liberan las células madre con fines de desarrollo terapéutico. [33]
Los productos biológicos producidos por tecnología de ADN recombinante (ADNr) en cultivos de células animales incluyen enzimas , hormonas sintéticas , inmunobiológicos ( anticuerpos monoclonales , interleucinas , linfocinas ) y agentes anticancerígenos . Aunque se pueden producir muchas proteínas más simples usando rDNA en cultivos bacterianos, actualmente se deben producir proteínas más complejas que están glicosiladas (modificadas con carbohidratos) en células animales. Un ejemplo importante de una proteína tan compleja es la hormona eritropoyetina.. El costo de cultivar cultivos de células de mamíferos es alto, por lo que se están realizando investigaciones para producir proteínas tan complejas en células de insectos o en plantas superiores, el uso de células embrionarias individuales y embriones somáticos como fuente para la transferencia directa de genes a través del bombardeo de partículas, la expresión de genes de tránsito y La observación por microscopía confocal es una de sus aplicaciones. También ofrece confirmar el origen unicelular de los embriones somáticos y la asimetría de la primera división celular, que inicia el proceso.
El cultivo celular también es una técnica clave para la agricultura celular , que tiene como objetivo proporcionar nuevos productos y nuevas formas de producir productos agrícolas existentes como leche, carne (cultivada) , fragancias y cuerno de rinoceronte a partir de células y microorganismos. Por tanto, se considera un medio para lograr una agricultura libre de animales . También es una herramienta central para la enseñanza de la biología celular. [34]
La investigación en ingeniería de tejidos , células madre y biología molecular involucra principalmente cultivos de células en placas de plástico planas. Esta técnica se conoce como cultivo celular bidimensional (2D) y fue desarrollada por primera vez por Wilhelm Roux quien, en 1885, extrajo una porción de la placa medular de un pollo embrionario y la mantuvo en solución salina tibia durante varios días en un vaso plano. plato. A partir del avance de la tecnología de polímeros surgió la placa de plástico estándar actual para el cultivo de células 2D, comúnmente conocida como placa de Petri . Julius Richard Petri , un bacteriólogo alemán , generalmente se le atribuye esta invención mientras trabajaba como asistente deRobert Koch . Actualmente, varios investigadores también utilizan matraces de laboratorio de cultivo , cónicos e incluso bolsas desechables como las que se usan en los biorreactores de un solo uso .
Aparte de las placas de Petri, los científicos llevan mucho tiempo cultivando células en matrices de origen biológico como el colágeno o la fibrina, y más recientemente, en hidrogeles sintéticos como la poliacrilamida o el PEG. Hacen esto para provocar fenotipos que no se expresan en sustratos rígidos convencionalmente. Existe un interés creciente en controlar la rigidez de la matriz , [35] un concepto que ha llevado a descubrimientos en campos como:
El cultivo celular en tres dimensiones se ha promocionado como "la nueva dimensión de la biología". [50] En la actualidad, la práctica del cultivo celular sigue basándose en distintas combinaciones de estructuras celulares únicas o múltiples en 2D. [51] Actualmente, hay un aumento en el uso de cultivos de células 3D en áreas de investigación que incluyen el descubrimiento de fármacos , la biología del cáncer, la medicina regenerativa , la evaluación de nanomateriales y la investigación en ciencias de la vida básicas . [52] [53] [54]Los cultivos de células 3D se pueden cultivar utilizando un andamio o una matriz, o sin andamios. Los cultivos basados en andamios utilizan una matriz 3D acelular o una matriz líquida. Los métodos sin andamios se generan normalmente en suspensiones. [55] Hay una variedad de plataformas que se utilizan para facilitar el crecimiento de estructuras celulares tridimensionales, incluidos sistemas de andamios como matrices de hidrogel [56] y andamios sólidos, y sistemas sin andamios, como placas de baja adhesión, levitación magnética facilitada por nanopartículas. , [57] y placas abatibles colgantes. [58] [59] El cultivo de células en 3D conduce a una amplia variación en las firmas de expresión génica y en parte imita los tejidos en los estados fisiológicos. [60]
Cultivo celular 3D en andamios
Eric Simon, en un informe de subvención del NIH SBIR de 1988, mostró que el electrohilado podría usarse para producir andamios fibrosos de poliestireno y policarbonato a escala nanométrica y submicrométrica específicamente destinados a su uso como sustratos de células in vitro . Este uso temprano de celosías fibrosas electrohiladas para cultivo celular e ingeniería de tejidos mostró que varios tipos de células, incluidos los fibroblastos del prepucio humano (HFF), el carcinoma humano transformado (HEp-2) y el epitelio pulmonar de visón (MLE) se adherirían y proliferarían sobre las fibras de policarbonato. . Se observó que, a diferencia de la morfología aplanada que se ve típicamente en el cultivo 2D, las células cultivadas en las fibras electrohiladas exhibieron una morfología tridimensional redondeada más histotípica que generalmente se observa in vivo . [61]
Como la matriz extracelular natural (MEC) es importante en la supervivencia, proliferación, diferenciación y migración de las células, las diferentes matrices de cultivo de hidrogel que imitan la estructura natural de la MEC se consideran enfoques potenciales para el cultivo celular in vivo. [62] Los hidrogeles están compuestos por poros interconectados con alta retención de agua, lo que permite un transporte eficiente de sustancias como nutrientes y gases. Se encuentran disponibles varios tipos diferentes de hidrogeles de materiales naturales y sintéticos para el cultivo celular en 3D, incluidos los hidrogeles de extracto de ECM animal, hidrogeles de proteínas, hidrogeles de péptidos, hidrogeles de polímeros e hidrogel de nanocelulosa a base de madera .
El método de cultivo de células 3D por levitación magnética (MLM) es la aplicación de tejido 3D en crecimiento induciendo células tratadas con conjuntos de nanopartículas magnéticas en campos magnéticos que varían espacialmente utilizando controladores magnéticos de neodimio y promoviendo interacciones célula a célula levitando las células hacia el aire / interfaz líquida de una placa de Petri estándar. Los conjuntos de nanopartículas magnéticas consisten en nanopartículas magnéticas de óxido de hierro, nanopartículas de oro y el polímero polilisina. El cultivo de células 3D es escalable, con la capacidad de cultivar de 500 células a millones de células o desde un plato único hasta sistemas de alto rendimiento y bajo volumen.
El cultivo celular es un componente fundamental del cultivo de tejidos y la ingeniería de tejidos , ya que establece los conceptos básicos del crecimiento y mantenimiento de las células in vitro . La principal aplicación del cultivo de células humanas se encuentra en la industria de las células madre , donde las células madre mesenquimales se pueden cultivar y criopreservar para su uso futuro. La ingeniería de tejidos ofrece potencialmente mejoras dramáticas en la atención médica de bajo costo para cientos de miles de pacientes al año.
Actualmente , las vacunas contra la poliomielitis , el sarampión , las paperas , la rubéola y la varicela se elaboran en cultivos celulares. Debido a la amenaza de la pandemia H5N1 , el gobierno de los Estados Unidos está financiando la investigación sobre el uso de cultivos celulares para las vacunas contra la influenza . Las ideas novedosas en el campo incluyen vacunas basadas en ADN recombinante , como una elaborada con adenovirus humano (un virus del resfriado común) como vector, [63] [64] y nuevos adyuvantes. [sesenta y cinco]
Además del cultivo de líneas celulares inmortalizadas bien establecidas, las células de explantes primarios de una plétora de organismos pueden cultivarse durante un período de tiempo limitado antes de que se produzca la senescencia (véase el límite de Hayflick). Las células primarias cultivadas se han utilizado ampliamente en la investigación, como es el caso de los queratocitos de peces en los estudios de migración celular. [66] [34] [67]
Los cultivos de células vegetales se cultivan típicamente como cultivos en suspensión celular en un medio líquido o como cultivos de callos en un medio sólido. El cultivo de células vegetales indiferenciadas y callos requiere el equilibrio adecuado de las hormonas de crecimiento vegetal auxina y citoquinina .
Las células derivadas de Drosophila melanogaster (más prominentemente, células de Schneider 2 ) pueden usarse para experimentos que pueden ser difíciles de realizar en moscas o larvas vivas, como estudios bioquímicos o estudios que usan ARNip . Líneas celulares derivadas de gusano ejército de Spodoptera frugiperda , incluyendo Sf9 y Sf21 , y desde el falso medidor Trichoplusia ni , células High Five , se utilizan comúnmente para la expresión de proteínas recombinantes usando baculovirus . [68]
Para las bacterias y las levaduras, generalmente se cultivan pequeñas cantidades de células sobre un soporte sólido que contiene nutrientes incrustados en él, generalmente un gel como el agar, mientras que los cultivos a gran escala se cultivan con las células suspendidas en un caldo de nutrientes.
El cultivo de virus requiere el cultivo de células de origen mamífero, vegetal, fúngico o bacteriano como huéspedes para el crecimiento y replicación del virus. Se pueden generar virus completos de tipo salvaje , virus recombinantes o productos virales en tipos de células distintos de sus huéspedes naturales en las condiciones adecuadas. Dependiendo de la especie del virus, la infección y la replicación viral pueden resultar en la lisis de la célula huésped y la formación de una placa viral .
Esta lista está incompleta ; puede ayudar agregando elementos faltantes . ( Julio de 2011 ) |
Línea celular | Sentido | Organismo | Tejido de origen | Morfología | Enlaces |
---|---|---|---|---|---|
3T3-L1 | "Transferencia de 3 días, inóculo 3 x 10 ^ 5 células" | Ratón | Embrión | Fibroblasto | ECACC Cellosaurus |
4T1 | Ratón | Glándula mamaria | ATCC Cellosaurus | ||
1321N1 | Humano | Cerebro | Astrocitoma | ECACC Cellosaurus | |
9L | Rata | Cerebro | Glioblastoma | ECACC Cellosaurus | |
A172 | Humano | Cerebro | Glioblastoma | ECACC Cellosaurus | |
A20 | Ratón | Linfoma B | Linfocito B | Cellosaurus | |
A253 | Humano | Conducto submandibular | Carcinoma de cabeza y cuello | ATCC Cellosaurus | |
A2780 | Humano | Ovario | Carcinoma de ovario | ECACC Cellosaurus | |
A2780ADR | Humano | Ovario | Derivado de A2780 resistente a la adriamicina | ECACC Cellosaurus | |
A2780cis | Humano | Ovario | Derivado resistente al cisplatino de A2780 | ECACC Cellosaurus | |
A431 | Humano | Epitelio cutáneo | Carcinoma de células escamosas | ECACC Cellosaurus | |
A549 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
AB9 | Pez cebra | Aleta | Fibroblasto | ATCC Cellosaurus | |
AHL-1 | Pulmón de hámster armenio-1 | Hámster | Pulmón | ECACC Cellosaurus | |
ALC | Ratón | Médula ósea | Stroma | PMID 2435412 [69] Cellosaurus | |
B16 | Ratón | Melanoma | ECACC Cellosaurus | ||
B35 | Rata | Neuroblastoma | ATCC Cellosaurus | ||
BCP-1 | Humano | PBMC | Linfoma de derrame primario VIH + | ATCC Cellosaurus | |
BEAS-2B | Epitelio bronquial + Híbrido de virus Adenovirus 12-SV40 (Ad12SV40) | Humano | Pulmón | Epitelial | ECACC Cellosaurus |
bEnd.3 | Cerebro Endotelial 3 | Ratón | Cerebro / corteza cerebral | Endotelio | Cellosaurus |
BHK-21 | Baby Hamster Kidney-21 (Riñón de hámster bebé-21) | Hámster | Riñón | Fibroblasto | ECACC Cellosaurus |
BOSC23 | Línea celular de envasado derivada de HEK 293 | Humano | Riñón (embrionario) | Epitelio | Cellosaurus |
BT-20 | Tumor de mama-20 | Humano | Epitelio mamario | Carcinoma de mama | ATCC Cellosaurus |
BxPC-3 | Xenoinjerto de biopsia de carcinoma de páncreas línea 3 | Humano | Adenocarcinoma de páncreas | Epitelial | ECACC Cellosaurus |
C2C12 | Ratón | Mioblasto | ECACC Cellosaurus | ||
C3H-10T1 / 2 | Ratón | Línea celular mesenquimatosa embrionaria | ECACC Cellosaurus | ||
C6 | Rata | Astrocito cerebral | Glioma | ECACC Cellosaurus | |
C6 / 36 | Insecto - mosquito tigre asiático | Tejido larvario | ECACC Cellosaurus | ||
Caco-2 | Humano | Colon | Carcinoma colorrectal | ECACC Cellosaurus | |
Cal-27 | Humano | Lengua | Carcinoma de células escamosas | ATCC Cellosaurus | |
Calu-3 | Humano | Pulmón | Adenocarcinoma | ATCC Cellosaurus | |
CGR8 | Ratón | Células madre embrionarias | ECACC Cellosaurus | ||
CHO | Ovario de hámster chino | Hámster | Ovario | Epitelio | ECACC Cellosaurus |
CML T1 | Leucemia mieloide crónica linfocito T 1 | Humano | Fase aguda de LMC | Leucemia de células T | DSMZ Cellosaurus |
CMT12 | Tumor mamario canino 12 | Perro | Glándula mamaria | Epitelio | Cellosaurus |
COR-L23 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
COR-L23 / 5010 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
COR-L23 / CPR | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
COR-L23 / R23- | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
COS-7 | Cercopithecus aethiops , SV-40 de origen defectuoso | Mono del Viejo Mundo - Cercopithecus aethiops ( Chlorocebus ) | Riñón | Fibroblasto | ECACC Cellosaurus |
COV-434 | Humano | Ovario | Carcinoma de células de la granulosa de ovario | PMID 8436435 [70] ECACC Cellosaurus | |
CT26 | Ratón | Colon | Carcinoma colorrectal | Cellosaurus | |
D17 | Perro | Metástasis pulmonar | Osteosarcoma | ATCC Cellosaurus | |
DAOY | Humano | Cerebro | Meduloblastoma | ATCC Cellosaurus | |
DH82 | Perro | Histiocitosis | Monocitos / macrófagos | ECACC Cellosaurus | |
DU145 | Humano | Carcinoma de próstata insensible a los andrógenos | ATCC Cellosaurus | ||
DuCaP | Duramadre el cáncer de la próstata | Humano | Carcinoma de próstata metastásico | Epitelial | PMID 11317521 [71] Cellosaurus |
E14Tg2a | Ratón | Células madre embrionarias | ECACC Cellosaurus | ||
EL4 | Ratón | Leucemia de células T | ECACC Cellosaurus | ||
EM-2 | Humano | Crisis blástica de CML | Línea Ph + CML | DSMZ Cellosaurus | |
EM-3 | Humano | Crisis blástica de CML | Línea Ph + CML | DSMZ Cellosaurus | |
EMT6 / AR1 | Ratón | Glándula mamaria | De tipo epitelial | ECACC Cellosaurus | |
EMT6 / AR10.0 | Ratón | Glándula mamaria | De tipo epitelial | ECACC Cellosaurus | |
FM3 | Humano | Metástasis en los ganglios linfáticos | Melanoma | ECACC Cellosaurus | |
GL261 | Glioma 261 | Ratón | Cerebro | Glioma | Cellosaurus |
H1299 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ATCC Cellosaurus | |
HaCaT | Humano | Piel | Queratinocito | CLS Cellosaurus | |
HCA2 | Humano | Colon | Adenocarcinoma | ECACC Cellosaurus | |
HEK 293 | Riñón embrionario humano 293 | Humano | Riñón (embrionario) | Epitelio | ECACC Cellosaurus |
HEK 293T | Derivado de HEK 293 | Humano | Riñón (embrionario) | Epitelio | ECACC Cellosaurus |
HeLa | "Henrietta Carece" | Humano | Epitelio del cuello uterino | Carcinoma de cuello uterino | ECACC Cellosaurus |
Hepa1c1c7 | Clon 7 de la línea 1 de hepatoma del clon 1 | Ratón | Hepatoma | Epitelial | ECACC Cellosaurus |
Hep G2 | Humano | Hígado | Hepatoblastoma | ECACC Cellosaurus | |
Cinco altos | Insecto (polilla) - Trichoplusia ni | Ovario | Cellosaurus | ||
HL-60 | Leucemia humana-60 | Humano | Sangre | Mieloblasto | ECACC Cellosaurus |
HT-1080 | Humano | Fibrosarcoma | ECACC Cellosaurus | ||
HT-29 | Humano | Epitelio del colon | Adenocarcinoma | ECACC Cellosaurus | |
J558L | Ratón | Mieloma | Célula de linfocitos B | ECACC Cellosaurus | |
Jurkat | Humano | células blancas de la sangre | Leucemia de células T | ECACC Cellosaurus | |
JY | Humano | Linfoblastoide | Célula B transformada con EBV | ECACC Cellosaurus | |
K562 | Humano | Linfoblastoide | Crisis blástica de CML | ECACC Cellosaurus | |
KBM-7 | Humano | Linfoblastoide | Crisis blástica de CML | Cellosaurus | |
KCL-22 | Humano | Linfoblastoide | CML | DSMZ Cellosaurus | |
KG1 | Humano | Linfoblastoide | AML | ECACC Cellosaurus | |
Ku812 | Humano | Linfoblastoide | Eritroleucemia | ECACC Cellosaurus | |
KYO-1 | Kioto-1 | Humano | Linfoblastoide | CML | DSMZ Cellosaurus |
L1210 | Ratón | Leucemia linfocítica | Líquido ascítico | ECACC Cellosaurus | |
L243 | Ratón | Hibridoma | Secreta mAb L243 (contra HLA-DR) | ATCC Cellosaurus | |
LNCaP | Cáncer de ganglio linfático de próstata | Humano | Adenocarcinoma de próstata | Epitelial | ECACC Cellosaurus |
MA-104 | Asociados microbiológicos-104 | Mono verde africano | Riñón | Epitelial | Cellosaurus |
MA2.1 | Ratón | Hibridoma | Secreta MA2.1 mAb (contra HLA-A2 y HLA-B17) | ATCC Cellosaurus | |
Ma-Mel 1, 2, 3 .... 48 | Humano | Piel | Una gama de líneas celulares de melanoma. | ECACC Cellosaurus | |
MC-38 | Ratón Colon-38 | Ratón | Colon | Adenocarcinoma | Cellosaurus |
MCF-7 | Fundación contra el cáncer de Michigan-7 | Humano | Seno | Carcinoma ductal de mama invasivo ER +, PR + | ECACC Cellosaurus |
MCF-10A | Fundación del Cáncer de Michigan-10A | Humano | Epitelio mamario | ATCC Cellosaurus | |
MDA-MB-157 | MD Anderson - Seno metastásico-157 | Humano | Metástasis de derrame pleural | Carcinoma de mama | ECACC Cellosaurus |
MDA-MB-231 | MD Anderson - Seno metastásico-231 | Humano | Metástasis de derrame pleural | Carcinoma de mama | ECACC Cellosaurus |
MDA-MB-361 | MD Anderson - Seno metastásico-361 | Humano | Melanoma (contaminado por M14) | ECACC Cellosaurus | |
MDA-MB-468 | MD Anderson - Seno metastásico-468 | Humano | Metástasis de derrame pleural | Carcinoma de mama | ATCC Cellosaurus |
MDCK II | Madin Darby Canine Kidney II | Perro | Riñón | Epitelio | ECACC Cellosaurus |
MG63 | Humano | Hueso | Osteosarcoma | ECACC Cellosaurus | |
MIA PaCa-2 | Humano | Próstata | Carcinoma de páncreas | ATCC Cellosaurus | |
MOR / 0.2R | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
Mono-Mac-6 | Humano | células blancas de la sangre | LMA metaplásica mieloide | DSMZ Cellosaurus | |
MRC-5 | Cepa celular 5 del Consejo de Investigación Médica | Humano | Pulmón (fetal) | Fibroblasto | ECACC Cellosaurus |
MTD-1A | Ratón | Epitelio | Cellosaurus | ||
Mi fin | Endotelial miocárdico | Ratón | Endotelio | Cellosaurus | |
NCI-H69 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
NCI-H69 / CPR | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
NCI-H69 / LX10 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
NCI-H69 / LX20 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
NCI-H69 / LX4 | Humano | Pulmón | Carcinoma de pulmón | ECACC Cellosaurus | |
Neuro-2a | Ratón | Nervio / neuroblastoma | Células madre neuronales | ECACC Cellosaurus | |
NIH-3T3 | NIH , de transferencia de 3 días, inóculo 3 x 10 5 células | Ratón | Embrión | Fibroblasto | ECACC Cellosaurus |
NALM-1 | Humano | Sangre periférica | LMC por crisis blástica | ATCC Cellosaurus | |
NK-92 | Humano | Leucemia / linfoma | ATCC Cellosaurus | ||
NTERA-2 | Humano | Metástasis pulmonar | Carcinoma embrionario | ECACC Cellosaurus | |
NW-145 | Humano | Piel | Melanoma | ESTDAB Cellosaurus | |
OK | Riñón de zarigüeya | Zarigüeya de Virginia - Didelphis virginiana | Riñón | ECACC Cellosaurus | |
Líneas celulares OPCN / OPCT | Humano | Próstata | Gama de líneas tumorales de próstata | Cellosaurus | |
P3X63Ag8 | Ratón | Mieloma | ECACC Cellosaurus | ||
PANC-1 | Humano | Conducto | Carcinoma epitelioide | ATCC Cellosaurus | |
PC12 | Rata | Médula suprarrenal | Feocromocitoma | ECACC Cellosaurus | |
PC-3 | Cáncer de próstata-3 | Humano | Metástasis ósea | Carcinoma de próstata | ECACC Cellosaurus |
Mirar | Humano | Leucemia de células T | DSMZ Cellosaurus | ||
PNT1A | Humano | Próstata | Línea tumoral transformada por SV40 | ECACC Cellosaurus | |
PNT2 | Humano | Próstata | Línea tumoral transformada por SV40 | ECACC Cellosaurus | |
Pt K2 | La segunda línea celular derivada de Potorous tridactylis | Potoroo de nariz larga - Potoroso tridactylus | Riñón | Epitelial | ECACC Cellosaurus |
Raji | Humano | Linfoma B | Tipo linfoblastos | ECACC Cellosaurus | |
RBL-1 | Leucemia basófila de rata-1 | Rata | Leucemia | Célula basófila | ECACC Cellosaurus |
RenCa | Carcinoma renal | Ratón | Riñón | Carcinoma renal | ATCC Cellosaurus |
RIN-5F | Ratón | Páncreas | ECACC Cellosaurus | ||
RMA-S | Ratón | Tumor de células T | Cellosaurus | ||
S2 | Schneider 2 | Insecto - Drosophila melanogaster | Embriones en etapa tardía (de 20 a 24 horas de vida) | ATCC Cellosaurus | |
SaOS-2 | Sarcoma OSteogénico-2 | Humano | Hueso | Osteosarcoma | ECACC Cellosaurus |
Sf21 | Spodoptera frugiperda 21 | Insecto (polilla) - Spodoptera frugiperda | Ovario | ECACC Cellosaurus | |
SF9 | Spodoptera frugiperda 9 | Insecto (polilla) - Spodoptera frugiperda | Ovario | ECACC Cellosaurus | |
SH-SY5Y | Humano | Metástasis de médula ósea | Neuroblastoma | ECACC Cellosaurus | |
SiHa | Humano | Epitelio del cuello uterino | Carcinoma de cuello uterino | ATCC Cellosaurus | |
SK-BR-3 | Cáncer de mama Sloan-Kettering 3 | Humano | Seno | Carcinoma de mama | DSMZ Cellosaurus |
SK-OV-3 | Cáncer de ovario de Sloan-Kettering 3 | Humano | Ovario | Carcinoma de ovario | ECACC Cellosaurus |
SK-N-SH | Humano | Cerebro | Epitelial | ATCC Cellosaurus | |
T2 | Humano | Leucemia de células T / hibridoma de la línea de células B | ATCC Cellosaurus | ||
T-47D | Humano | Seno | Carcinoma ductal de mama | ECACC Cellosaurus | |
T84 | Humano | Metástasis pulmonar | Carcinoma colorrectal | ECACC Cellosaurus | |
T98G | Humano | Glioblastoma-astrocitoma | Epitelio | ECACC Cellosaurus | |
THP-1 | Humano | Monocitos | Leucemia monocítica aguda | ECACC Cellosaurus | |
U2OS | Humano | Osteosarcoma | Epitelial | ECACC Cellosaurus | |
U373 | Humano | Glioblastoma-astrocitoma | Epitelio | ECACC Cellosaurus | |
U87 | Humano | Glioblastoma-astrocitoma | De tipo epitelial | ECACC Cellosaurus | |
U937 | Humano | Linfoma monocítico leucémico | ECACC Cellosaurus | ||
VCaP | Cáncer vertebral de próstata | Humano | Metástasis de vértebra | Carcinoma de próstata | ECACC Cellosaurus |
Vero | En esperanto: verda (verde, para mono verde) reno (riñón) | Mono verde africano - Chlorocebus sabaeus | Epitelio renal | ECACC Cellosaurus | |
VG-1 | Humano | Linfoma de derrame primario | Cellosaurus | ||
WM39 | Humano | Piel | Melanoma | ESTDAB Cellosaurus | |
WT-49 | Humano | Linfoblastoide | ECACC Cellosaurus | ||
YAC-1 | Ratón | Linfoma | ECACC Cellosaurus | ||
YAR | Humano | Linfoblastoide | Célula B transformada con EBV | Inmunología humana [72] ECACC Cellosaurus |
Recursos de la biblioteca sobre cultivo celular |
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