Aedes taeniorhynchus , o el mosquito negro de las marismas , es un mosquito de la familia Culicidae . Es un portador devirus encefalíticos, incluida la encefalitis equina venezolana [3], y puede transmitir Dirofilaria immitis . [4] Reside en las Américas y es conocido por picar mamíferos, reptiles y aves. Como otros mosquitos, Ae. Los adultos de taeniorhynchus sobreviven con una dieta combinada de sangre y azúcar, y las hembras generalmente requieren una ingesta de sangre antes de poner huevos. [5]
Aedes taeniorhynchus | |
---|---|
Mosquito hembra de la marisma negra | |
clasificación cientifica | |
Reino: | Animalia |
Filo: | Artrópodos |
Clase: | Insecta |
Pedido: | Dípteros |
Familia: | Culicidae |
Género: | Aedes |
Especies: | A. taeniorhynchus |
Nombre binomial | |
Aedes taeniorhynchus (Wiedemann, 1821) | |
Sinónimos [1] [2] | |
|
Este mosquito ha sido estudiado para investigar su desarrollo, marcadores fisiológicos y patrones de comportamiento, incluidos los ciclos periódicos de picadura , vuelo y enjambre . Esta especie se caracteriza por desarrollarse en ciclos periódicos, con alta sensibilidad a la luz y los patrones de vuelo que dan como resultado frecuencias específicas de aleteo que permiten tanto la detección de especies como la distinción de sexos. [6] [7]
Ae. taeniorhynchus es conocido por ser una plaga para los humanos y los mecanismos para controlar Ae. Se han desarrollado poblaciones de taeniorhynchus . Estados Unidos ha gastado millones de dólares para controlar y contener Ae. taeniorhynchus. [8]
Taxonomía
El entomólogo alemán Christian Rudolph Wilhelm Wiedemann describió Ae. ( Ochlerotatus ) taeniorhynchus en 1821. Los nombres alternativos para la especie incluyen Culex taeniorhynchus (Wiedemann, 1821), Ochlerotatus taeniorhynchus (Wiedemann, 1821) y Culex damnosus (Say 1823). [9] [10]
Aedes niger , también conocida como Aedes portoricensis , es una subespecie de Ae. taeniorhynchus . [11] Se puede identificar por su última articulación tarsal posterior, que es mayoritariamente negra en lugar de bandas blancas. [11] Reside en Florida y puede migrar hasta 95 millas (153 km). [11]
Análisis de datos de microsatélites sobre los genes de Ae. taeniorhynchus que vive en las Islas Galápagos muestra una diferenciación genética entre las poblaciones de mosquitos costeros y de las tierras altas. [12] Los datos indican un flujo mínimo de genes entre las poblaciones que solo ocurre durante los períodos de mayor precipitación. [12] Las diferencias genéticas sugieren que las diferencias de hábitat llevaron a impulsar la adaptación y la divergencia en las especies, lo que eventualmente condujo a una futura especiación. [12] Los mosquitos de las tierras altas tienen características poblacionales características de un efecto fundador debido a una baja diversidad genética que se manifiesta como una baja heterocigosidad y una baja riqueza alélica, que puede haber resultado de la latencia de los huevos durante los períodos de sequía. [12]
Descripción
Ae. Los adultos de taeniorhynchus son en su mayoría negros con áreas de bandas blancas. Aparece una sola banda blanca en el centro de la probóscide , varias bandas blancas se extienden por los extremos distales de las patas siguiendo las articulaciones de las patas y las últimas articulaciones de las patas traseras están completamente coloreadas de blanco. [11] Ae. Las alas de taeniorhynchus son largas y estrechas con venas escamosas. [13] Investigación experimental de la coloración evolutiva de Ae. taeniorhynchus arrojó resultados negativos. [14] Los mosquitos criados en condiciones de oscuridad, fondos de color negro, blanco o verde y condiciones de iluminación de luz fluorescente o luz solar, no mostraron cambios de color en el cuerpo graso ni en la cápsula de la cabeza, silla o sifón. [14] Se sugiere que esta falta de coloración críptica se debe a la falta de amenaza para la especie; Debido a que el hábitat de la especie es una fuente de agua temporal que se utiliza para el crecimiento de las larvas, este entorno temporal tiene pocos depredadores y relativamente poco peligro. [14]
Los machos y las hembras se pueden distinguir en función de sus antenas: los machos tienen antenas plumosas (parecidas a plumas), mientras que las antenas de las hembras tienen escaso pelo. [13]
Deteccion de ruido
Ae. Los enjambres de taeniorhynchus se pueden detectar a través del sonido. Los ruidos con frecuencias entre 0,3 y 3,4 kHz a un nivel de sonido de 21 dB se pueden detectar a una distancia de 10 a 50 m. Se puede escuchar un mosquito individual a una distancia de 2 a 5 cm cuando el nivel de sonido aumenta a 22-25 dB. [7] Los mosquitos machos y hembras también se pueden distinguir por sus frecuencias de aleteo, que son de 700 a 800 Hz para los machos y de 400 a 500 Hz para las hembras. [7] Como resultado, los sonidos de vuelo se utilizan para determinar la actividad de vuelo y distinguir el sexo de los grupos.
Microbioma
Los mosquitos Aedes tienen un microbioma característico que modula los efectos de la dieta. [15] Se informa que la composición del microbioma difiere entre machos y hembras en los mosquitos Aedes , como Aedes albopictus [16] y Aedes aegypti. [17] Es decir, en Aedes albopictus , los machos se alimentan de néctar para adquirir Actinobacteria, mientras que las hembras contienen Proteobacteria (como Enterobacteriaceae ) que median los niveles de estrés redox causado por la ingesta de sangre. [dieciséis]
Especies similares
Las principales distinciones físicas entre Ae. taeniorhynchus y otras especies provienen de la banda blanca que cubre varias partes del cuerpo a lo largo de Ae. taeniorhynchus . La especie, como otros mosquitos Aedes , exhibe bandas basales en el abdomen, pero Ae. taeniorhynchus también exhibe palpos con puntas blancas y un anillo central blanco en la probóscide. [13]
Esta especie se parece a Aedes sollicitans , excepto por sutiles diferencias en las etapas larvaria y adulta. En la etapa larvaria, Ae. taeniorhynchus tiene un tubo de respiración más corto, sus parches de escamas son redondeados en lugar de puntiagudos en las puntas, y las espinas que recubren los bordes de cada parche de escamas son más pequeñas cerca de la base del parche de escamas. [11] En la etapa adulta, Ae. taeniorhynchus es más pequeño y mayormente negro, mientras que Ae. sollicitans es de color marrón dorado. [11]
La especie también tiene similitud con Aedes jacobinae , que cae dentro del subgénero Taeniorhynchus debido a su estructura particular de hipopigio, pero se considera una especie distinta porque no tiene marcas en las patas. [18] De manera similar, esta especie también se puede distinguir del Aedes albopictus , comúnmente conocido como el mosquito tigre asiático, como Ae. taeniorhynchus , a diferencia de Ae. albopictus , no tiene marcas en el dorso. [19]
Distribución
Ae. taeniorhynchus se distribuye ampliamente en América del Norte y del Sur , aunque está más concentrado en las regiones del sur. [20] [21] En el momento del descubrimiento inicial de la mosca, la especie residía en regiones costeras y luego se trasladó gradualmente hacia el interior de las Américas. [18] El análisis del flujo de genes derivado de los datos de microsatélites indicó que los mosquitos ubicados en las Islas Galápagos en la Isla del Pacífico con frecuencia migran entre islas de forma aislada por distancia. [22] La incidencia de los puertos fue un factor importante que contribuyó a la migración , lo que sugiere que el transporte con ayuda humana contribuyó a la migración entre islas. [22]
Habitat
Ae. taeniorhynchus reside en hábitats con una fuente de agua temporal, lo que hace que los manglares y las marismas saladas u otras áreas con suelo húmedo sean lugares populares para la puesta de huevos y el crecimiento inmaduro. [23] Estos hábitats son muy variables, pero a menudo tienen una alta salinidad con un contenido de sal soluble observado en el suelo de al menos 1644 ppm. [24]
En el caso de condiciones ambientales de sequedad y bajas temperaturas que son desfavorables para la eclosión de los huevos, los huevos pueden permanecer inactivos durante años. [25] Los factores que controlan la escala del crecimiento de A. taeniorhynchus durante la preemergencia dependen de las condiciones ambientales que coincidan con el nivel de humedad y la temperatura. En el sur de Florida , los factores principales son la altura de la marea y la cantidad de lluvia, [26] mientras que los sitios en California dependen únicamente de la altura de la marea. [27] En Virginia , estos factores se limitan a los niveles de lluvia y temperatura. [28] Los factores generalmente favorables pueden volverse negativos en valores extremos, lo que hace que la tasa de supervivencia disminuya. El exceso de agua elimina los huevos de los mosquitos [26] y las temperaturas extremadamente altas pueden provocar la evaporación de la fuente de agua. [27]
Esta especie exhibe sensibilidad a la temperatura, con diferencias encontradas para temperaturas constantes, divididas y alternas. [29] A temperaturas constantes de 22, 27 y 32 ° C, la esperanza de vida aumentaba con la temperatura, pero a temperaturas divididas, los mosquitos también se dividían entre la vida y la muerte. [29] A diferentes temperaturas, la tasa de envejecimiento fue independiente en los machos, pero más alta para las hembras que viven a 22 y 27 ° C. [29] A temperaturas alternas, la esperanza de vida era independiente de la temperatura para todos los sexos y temperaturas, excepto por el hecho de favorecer la alternancia entre 22 y 27 ° C por parte de las hembras. [29]
Lugares de reproducción de Ae. taeniorhynchus a menudo están en contacto con vegetación como Distichlis spicata (hierba espiga) y Spartina patens (heno de pradera salada) en las marismas de hierba y Batis maritima (saltwort) y especies del género Salicornia (glassworts) en manglares. [21] Esta especie de mosquito se encuentra muy cerca de otros mosquitos que residen en marchas. Estos incluyen Aedes sollicitans (mosquito de las marismas del este), Anopheles bradleyi y A. atropos . [21]
Historia de vida
Según estudios de campo de observación, Ae. taeniorhynchus lleva a cabo varias tendencias de comportamiento en diferentes etapas de la vida. Se encontró que el crecimiento y la pupación de esta especie se vieron afectados por factores ambientales de nutrición, densidad de población, salinidad, luz-oscuridad y temperatura. [30]
Huevos
Las hembras ponen huevos en tierra seca y la eclosión de los huevos se desencadena por la presencia de agua, como la lluvia o las inundaciones. [31] El rendimiento de la puesta de huevos de las hembras, un indicador de fecundidad , difiere según la dieta: en poblaciones de baja autogenia, las hembras autógenas raras pusieron cada una menos de 30 huevos, mientras que el rendimiento de huevos fue significativamente mayor en poblaciones con mayoría de hembras autógenas. [25] Los huevos puestos en las condiciones adecuadas de temperatura y humedad se someten a embriogénesis y luego permanecen inactivos hasta la eclosión. [30]
Larvas en estrellas
Tras la eclosión, la especie progresa a través de 4 estadios larvarios : los primeros 3 estadios se ven afectados principalmente por la temperatura, con efectos menores por la salinidad; el cuarto estadio se ve afectado por todos los factores ambientales. [30] En el cuarto estadio, el aumento de alimentos aceleró el tiempo de desarrollo, mientras que el hacinamiento y la salinidad atrofiaron el crecimiento. [30]
La temperatura preferida para los 4 estadios está entre 30 ° C y 38 ° C, pero la temperatura promedio preferida aumenta con la edad. [32] El primer estadio prefiere una temperatura promedio de 31,8 ° C y el cuarto estadio temprano prefiere una temperatura de 34,6 °. [32] El cuarto estadio tardío, sin embargo, tiene una temperatura preferida más baja que el cuarto estadio temprano, a 33.0 °. [32] Se encontró que las larvas hambrientas tienen un rango de temperatura preferido más amplio que se centra en temperaturas más bajas. [32] Se encontró que las colonias de larvas de laboratorio cultivadas durante años a 27.0 ° C prefieren temperaturas consistentemente más bajas. [32]
Se observó que las larvas de cuarto estadio bebían agua de mar (100 nL / h) y secretaban líquido hiperosmótico a través del recto. [33] Este líquido es similar al agua de mar pero con niveles de potasio 18 veces más altos. [33] Debido a que el líquido secretado no permite el equilibrio osmótico con el líquido ingerido, los estudios sugieren que las papilas anales ayudan en la secreción de sal. [33]
Crisálida
Todos los factores ambientales afectan la pupación con respecto al ritmo diurno del insecto , que tiene un período de 21,5 horas. [30] Los factores que conducen a un mayor período de pupa incluyen el borrado de los ciclos de luz-oscuridad con todas las condiciones de oscuridad o luz, aumento de la salinidad y hacinamiento. Estas tendencias continuaron adhiriéndose a una preferencia por temperaturas cercanas a 27 ° C o 32 ° C. [30] Las pupas también exhiben formación de agregación diferencial debido a estos factores ambientales. Las agregaciones de tipo racimo se forman junto con el apiñamiento temporal y el exceso de comida, mientras que las agregaciones de tipo bola pueden manifestarse por amontonamiento temporal pero falta de alimento. [34] A temperaturas constantes más bajas de 22 ° C y 25 ° C, pueden formarse agregaciones de tipo racimo, pero temperaturas más altas de 30 ° y 32 ° C inhiben la formación de agregaciones. [34] Las agregaciones produjeron pupas con pesos corporales secos ligeramente más pesados y promovieron la sincronización del desarrollo en la ecdisis y una mayor probabilidad de migración en la emergencia. [34]
Etapas adultas
Los mosquitos machos y hembras emergen de sus sitios de huevos de manera similar. Permanecen en sus fuentes de agua durante 12 a 24 horas. [23] Los adultos luego migran lejos del terreno de puesta de huevos en el transcurso de 1 a 4 días. [8] Los diferentes sexos exhiben una migración diferencial, con la mayoría de las hembras viajando al menos 20 millas (32 km) y la mayoría de los machos viajando no más de 2 millas (3,2 km). [8] La migración femenina sigue un patrón aleatorio sin limitación en la dirección de la migración y la migración ocurre a lo largo de un ciclo de 5 días. [8] Los machos inicialmente viajan con las hembras hasta que llegan a un punto de parada de 1 a 2 millas (1,6 a 3,2 km), donde reemplazan la migración con enjambres . [8]
Los patrones de vuelo se establecen en la etapa adulta y no se ven afectados por patrones de comportamiento de etapas anteriores de la vida. [6] Los adultos comienzan a morder el día 4 y siguen un ciclo de 5 días hasta la muerte. Entre los sexos, la intensidad máxima de picadura ocurre en las hembras a las edades de 4, 9 y 14 días. [23] Las hembras adultas de mosquitos continúan viviendo y poniendo huevos durante 3 a 4 semanas antes de morir. [23] Aquellos que sobreviven por más tiempo continúan mordiendo pero dejan de poner huevos. [23]
Recursos alimenticios
Sangre
Ae. Los huevos de taeniorhynchus pueden madurar tanto de forma autógena como anautógena , y los huevos autógenos se alimentan de azúcar y los huevos autógenos requieren una ingestión de sangre. [35] Estas fuentes de alimentos promueven la maduración mediante la producción de hormonas a partir de los cuerpos allata (CA) y la célula neurosecretora medial perikarya (MNCA), de las cuales solo la liberación de hormonas de las MNCA es responsable de la maduración autógena. [35] Se puede influir en la dependencia de las larvas de una comida de sangre para que los mosquitos sean menos autógenos, al no permitir que las hembras se alimenten de azúcar e imponer otros cambios en la dieta. [36]
Los mosquitos adultos se alimentan de una dieta combinada de sangre y azúcar, con una dieta óptima que consiste en azúcar para los machos y sangre y azúcar para las hembras. [5] La mayoría de Ae. taeniorhynchus dependen de los mamíferos y las aves para alimentarse de sangre, especialmente dependiendo de los bovinos , conejos y armadillos . [37] Los mosquitos en las Islas Galápagos se alimentan de mamíferos y reptiles, con igual preferencia, pero se alimentan poco de aves. [38] Dado que esto difiere de la alimentación típica de Ae. taeniorhynchus en aves, los estudios sugieren que la especie es un alimentador oportunista , en el que se alimenta más de los organismos más fácilmente disponibles y accesibles. [38] Ae. taeniorhynchus actúa como un ectoparásito de Diomedea irrorata , conocido como albatros ondulado. [39] Los mosquitos pican a los albatros ondulados, provocando o transmitiendo directamente enfermedades que provocan la mortalidad de los polluelos, la migración de colonias o la deserción de huevos en los albatros. [39]
Los estudios experimentales muestran que ambos sexos pueden sobrevivir con una dieta que solo contenga azúcar durante 2 a 3 meses, pero las hembras requieren ingesta de sangre para la producción de huevos. [40] En las hembras, la suplementación con sangre en mosquitos autógenos aumentó tanto la producción de huevos como la esperanza de vida. [40] Estudios observacionales adicionales de Ae. taeniorhynchus en la naturaleza demostró que el hábitat afecta el efecto de la fuente de harina: las hembras que habitan en los manglares pueden producir huevos incluso sin ingerir sangre, pero las de un ambiente de marismas saladas cubiertas de hierba no. [41] Las hembras de ambos hábitats, sin embargo, aún podían producir huevos cuando se les administraba sangre. [41]
Azúcar
Los estudios que observaron la ingesta de azúcar sin restricciones de las hembras correlacionaron el nivel de ingesta de sacarosa con la acumulación máxima de reservas de energía almacenadas. [42] Por el contrario, el nivel de ingesta de sacarosa no se correlaciona con una disminución de la actividad o cambios en la senescencia . [42]
La alimentación con carbohidratos de mosquitos hembras en un entorno de laboratorio indicó que los carbohidratos glucosa, fructosa, manosa, galactosa, sacarosa, trehalosa, melibiosa, maltosa, rafinosa, melizitosa, dextrina, manitol y sorbitol son los más efectivos para ayudar a la supervivencia; La especie no utiliza arabinosa, ramnosa, fucosa, sorbosa, lactosa, celobiosa, inulina, a -metilmanosido, dulcitol ni inositol; se utilizan xilosa, glucógeno, a -metilglucósido y glicerol, pero a una tasa metabólica lenta; y la sorbosa no se pudo metabolizar. [43] La alimentación con glucosa permitido para la velocidad máxima de vuelo, mientras que otros hidratos de carbono, tales como todas las pentosas, sorbosa, lactosa, celobiosa, glucógeno, inulina, una metil manósido, dulcitol, y inositol fueron insuficientes para permitir el vuelo, indicado por un retraso en vuelo después de la alimentación. [29]
Néctar
Si la emergencia ocurre en un lugar con flores, ambos sexos se alimentan de néctar antes de la migración. [44] El análisis del contenido de fructosa y glucógeno indica que los mosquitos a menudo se alimentan de néctar poco después del anochecer y se alimentan con moderación de néctar durante el día. [45]
Comportamiento
Apareamiento
Los machos alcanzan la madurez sexual aproximadamente 2 días después de la emergencia y las hembras alcanzan la madurez sexual a la edad de 12 días, con planes de aparearse solo una vez. [21]
Los estudios de observación de las interacciones de apareamiento tanto en un entorno de laboratorio como en un entorno de campo notaron que la cópula entre mosquitos ocurría después del atardecer. Los resultados señalaron que la cópula depende de la edad de las hembras, y que la inseminación ocurre en hembras de 30 a 40 horas de edad. [46] En ambos entornos estudiados, las hembras son capaces de aparearse sin inducir inseminación, ya que solo el 1% de las hembras contenían esperma después de 2 notas de apareamiento potencial. [46] El apareamiento no solo brinda una oportunidad para la inseminación, sino que también contribuye a la síntesis de vitelogenina en las mujeres, ya que se ha demostrado que las inyecciones experimentales de líquido de la glándula accesoria masculina (MAGF) provocan la liberación del factor estimulante del cuerpo cardíaco (CC) en los ovarios, que estimula la investigación de la hormona neurosecretora del desarrollo del óvulo (EDNH). [47]
Otros estudios de laboratorio de la especie señalaron una dependencia de la edad tanto en hembras como en machos para una copulación e inseminación satisfactoria. [48] La cópula es iniciada por los machos y solo ocurre cuando el macho primero desengancha sus piernas, entrelaza los genitales masculinos y femeninos en una posición de extremo a extremo y luego cuelga de la hembra por un corto período de tiempo. [48] La inseminación solo puede resultar de la cópula. [48] Si la cópula tiene éxito, los mosquitos se emparejan en vuelo, luego aterrizan y permanecen juntos durante unos segundos. [48] Para terminar la cópula, el macho se va volando o la hembra vuela mientras carga al macho hasta que cae. [48]
La mayoría de las hembras jóvenes rechazaron los intentos de copulación (no receptivas), y muchas de las que copularon rechazaron los intentos de inseminación (refractarios), y la aceptación de la cópula y la inseminación (receptiva) aumentaron con la edad de las hembras cuando se expusieron a una cohorte de machos mayores. [48] Las hembras no receptivas evitaban a los machos volando con aumentos repentinos de velocidad o giros bruscos. [48]
Durante el apareamiento, los machos pueden transferir sustancias producidas por sus glándulas accesorias que afectan la fisiología y el comportamiento de la hembra. [49] Estas sustancias de las glándulas accesorias pueden limitar o mejorar las actividades reproductivas femeninas. [49] Las limitaciones incluyen la prevención temporal del apareamiento de hembras en el futuro, la estimulación de la oviposición y la reducción de la búsqueda de huéspedes, mientras que las mejoras implican cambios en el ritmo circadiano femenino y las prioridades metabólicas que provocan una mayor probabilidad de reproducción. [49]
Cuidado de padres
Se sabe que las hembras practican la oviposición , con preferencia por suelos de alta humedad, con una saturación de agua superior al 70%. [50] El tamaño de las nidadas de las hembras es de 100-200 huevos, con al menos una puesta por hembra. [21]
En estudios experimentales con mosquitos hembras ovariectomizados, las hembras no pudieron sintetizar vitelogenina, un precursor de la proteína de la yema, a menos que se les diera un ovario donante de un mosquito alimentado con azúcar o sangre. [51] La síntesis de vitelogenina todavía ocurría cuando el ovario donante provenía de Ae. aegypti , y la derivación del ovario de un mosquito alimentado con sangre causó la producción del factor estimulante del cuerpo cardíaco, lo que indica que los procesos hormonales para la oviposición no son específicos de la especie. [51]
En un estudio de huevos puestos en cuencas forestales de Rhizophora mangle L. (mangle rojo) y Avicennia germinans L. (mangle negro), la presencia de huevos se correlacionó con la elevación y el nivel de detritos . [52] La oviposición se dirigió de las cuencas de manglar negro a las cuencas de manglar rojo, posiblemente debido a la reducción de detritos y contenido orgánico reducido en el suelo causado por el pastoreo de mangle negro por Melampus coffeus L. , un caracol. [52] Debido a que las cáscaras de huevo y los huevos comparten el mismo hábitat, se sugiere que la oviposición se puede delinear utilizando cáscaras de huevo. [52] El análisis de muestreo de cáscaras de huevo de 34 sitios de bosques de manglares indicó que todos los bosques de la cuenca de manglares pueden producir Ae. taeniorhynchus , independientemente de la geomorfología del bosque, el suelo y la vegetación, pero los sitios recientemente inundados son los más óptimos. [53]
Además, los sulfatos y otras sales se consideraron favorables para la oviposición de hembras en un entorno de laboratorio, pero las concentraciones de sulfato en el campo pueden ser demasiado bajas para que este efecto sea significativo. [54] También se determinó que la textura del sustrato es un factor que contribuye a la oviposición, y los estudios de la puesta de huevos en el tamaño de las partículas de arena indican una preferencia por las partículas de arena con un tamaño de 0,33 a 0,62 mm. [55]
Ciclos de vuelo
Las hembras adultas de mosquitos listas para poner huevos se diferencian de otras hembras adultas en muchos comportamientos importantes. Realizan un vuelo especial a los 7, 12 y 17 años, siguiendo un ciclo de 5 días. [23] Los cambios en la dieta tienen efectos sobre el vuelo en los machos y las hembras: los machos alimentados con azúcar solo exhibieron cambios en los patrones de vuelo que se asemejaban a un enjambre cíclico, las hembras alimentadas con azúcar solo exhibieron patrones de vuelo consistentes que consisten en un ciclo de vuelo de 4 semanas de 40 minutos durante la oscuridad y 20 minutos durante la luz, las hembras alimentadas con azúcar y sangre experimentaron un vuelo reducido después de 2 semanas, y las hembras alimentadas con sangre sola volaron no más de 10 días. [40] Las hembras hambrientas luego alimentadas con sangre permanecieron sedentarias durante 8 horas antes de regresar al vuelo. [40] Los vuelos se realizan con el propósito de adquirir néctar, y la distancia de vuelo depende de la velocidad del viento, la dirección, el paisaje y la disponibilidad de néctar. [21] Las hembras suelen volar de 2 a 5 millas en busca de néctar, pero se han registrado vuelos de 30 millas como resultado de otros factores de vuelo. [21] Los adultos que buscan una comida de sangre también pueden volar hasta 40 kilómetros. [19]
Los patrones de vuelo de estos mosquitos están estrechamente relacionados con la sensibilidad a la luz, ya que los patrones de vuelo aumentan con la fuerza de la luz de la luna: las hembras aumentan la actividad de vuelo del 95% en cuarto de luna al 546% en luna llena. [56] Los mosquitos adultos machos y hembras son repelidos por la luz, [31] permitiendo que los mosquitos sean atrapados con trampas de luz. [8] [57] Sin embargo, las hembras están listas para poner huevos para no exhibir este comportamiento. [23] En un entorno experimental, se descubrió que los mosquitos criados en condiciones de 12 horas de luz: 12 horas de oscuridad exhibían actividad de vuelo tanto en períodos de luz apagada como de luz encendida en un patrón de alternancia bimodal. Los mosquitos se adaptaron a las nuevas condiciones de luz en un plazo de 24 a 36 horas, en las que un apagado retardado restablece el patrón, pero un apagado temprano no lo hace. [6]
Los machos adultos comienzan a formar enjambres superiores a partir de los 4 días de edad y duran hasta las 2-3 semanas de edad. [23] Estos enjambres se forman cada tarde y cada mañana en un lugar y hora fijos [23] y duran un máximo de 30 minutos. [21] En observaciones de campo de Ae. taeniorhynchus en Florida, los enjambres matutinos y vespertinos normalmente estaban a mitad de camino en el punto de tiempo de 4 minutos antes y después del crepúsculo , respectivamente. [23] Se desconoce el estímulo inicial para el comportamiento de enjambre, pero el tiempo dedicado a enjambrar depende de la sensibilidad de los machos individuales a la fuerza impulsora del enjambre y al tamaño del enjambre, con pequeños enjambres que duran 12 minutos y grandes enjambres que duran 27 minutos. [23] Estos enjambres se caracterizan como enjambres de paso transitorio, donde los machos participan en el enjambre durante 1,5 minutos a la vez en lugar de a tiempo completo. [23] A pesar del acto de que los machos forman enjambres superiores, no se ha observado que el apareamiento coincida con el enjambre . [23]
Parásitos
Los parásitos de esta especie incluyen Amblyospora polykarya , una especie de Microspora que dura una sola generación en Ae. taeniorhynchus , [58] y Goelomomyces psorophorae , un hongo que afecta los ovarios de los mosquitos que detiene la madurez del huevo y mata todas las larvas. [59]
El análisis de la harina de sangre y la detección de parásitos de mosquitos en las Islas Galápagos mediante PCR sugirieron relaciones entre la especie y los parásitos Hepatozoon que infectan a los reptiles de la zona. [38] La aparición de una población mixta de Hepatozoon en el huésped reptil sugiere que Ae. taeniorhynchus provocó una ruptura de la relación huésped-especie entre algunas parastias Heptazoon y reptiles nativos. [38] En un análisis topológico del parasitismo en la red alimentaria, Ae. taeniorhynchus , junto con Culex tarsalis , fueron los organismos más importantes dentro de una sub-red parásito-depredador, lo que significa que tienen la mayoría de las conexiones de la red alimentaria entre los organismos mapeados. [ cita requerida ]
Transmisión de enfermedades
Ae. taeniorhynchus es portador del virus del Nilo Occidental , virus iridiscente de mosquitos , [60] el tipo oriental y occidental de encefalomielitis equina , [61] virus de la encefalomielitis equina venezolana [3] y virus de la fiebre amarilla . [62] Los estudios experimentales también establecieron que la especie es capaz de transmisión mecánica de Bacillus anthracis . [63] Los estudios experimentales sobre el virus de la fiebre del Valle del Rift mostraron que la infectividad es independiente de la temperatura, pero la diseminación y transmisión viral es más rápida a temperaturas más altas. [64]
Esta especie puede transmitir Dirofilaria immitis , un gusano filarial que puede causar dirofilariasis en perros . [4] La infección por D. immitis ocurre a través del establecimiento de parásitos en Ae. taeniorhynchus túbulos de Malpighi en un proceso que cambia el borde microvillar para impedir el transporte de líquido. [65] El parásito tarda hasta 48 horas en establecerse en su huésped; el establecimiento puede no ocurrir si el huésped es resistente. [65] También se observó que este parásito se propagaba a los cormoranes no voladores en las Galápagos, y el análisis del flujo de genes correlacionó la infección parasitaria con Ae. taeniorhynchus patrones de migración y sugiriendo que Ae. taeniorhynchus es el vector probable de transmisión. [22]
Interacciones con humanos
Esta especie de mosquito se considera una plaga entre los seres humanos, y los distritos de Florida intentan controlar los mosquitos desde 1927 y gastaron 1,5 millones de dólares en el control de insectos en 1951. [8] La acetoarsenita de cobre, conocida como verde de París , se utiliza como insecticida para Ae. taeniorhynchus en el sitio de reproducción de la especie, ya que la sustancia actúa como un veneno tóxico para el estómago. [66] El DDT , otro insecticida, también se consideró eficaz contra los mosquitos de las marismas y se ha utilizado para Ae. tratamiento con taeniorhynchus en el pasado. [67] Las combinaciones de trampa y cebo probadas contra la especie indican que las trampas tipo CDC con dióxido de carbono , octenol y calor como cebo aumentan el éxito de captura de Ae. taeniorhynchus . [68]
Los humanos también han tratado de limitar las picaduras de Ae. taeniorhynchus porque vuela muy rápido y comienzan la extracción de sangre rápidamente, en comparación con el mosquito promedio, usando ropa protectora tratada químicamente. Se mostró ropa tratada con permetrina [(3-fenoxifenil) metil (±) cis / trans 3- (2-dicloroetenil) 2, 2-dimetilciclopropanocarboxilato] junto con la aplicación de deet ( N, N -dietil- m -toluamida) en la piel. ser extremadamente eficaz para reducir las picaduras de mosquitos en comparación con el uso de una sola forma de protección o sin protección. [69] ¡ El Off! El dispositivo repelente de mosquitos con clip, que libera metoflutrina insecticida piretroide en forma de vapor, también se evaluó contra Ae. taeniorhynchus en dos ubicaciones de campo de Florida y se encontró que proporciona un 79% de protección contra las picaduras de mosquitos durante 3 horas. [70]
Se han identificado otras toxinas contra Ae. taeniorhynchus . Bacillus thuringiensis var. kurstaki (HD-1) puede producir un cristal paraesporal en forma de cuerpo de inclusión tóxico. [71] Las proteínas aisladas de un cristal paraesporal produjeron dos proteínas distintas de los tipos k-1 y k-73 , de las cuales solo la k-1 , una proteína de 65 kD, resultó ser tóxica para Ae. larvas de taeniorhynchus . [71]
Ver también
- Lista de especies de Aedes
Referencias
- ^ https://www.uniprot.org/taxonomy/329105
- ^ https://www.itis.gov/servlet/SingleRpt/SingleRpt?search_topic=TSN&search_value=126381#null
- ↑ a b Turell, Michael J .; Ludwig, George V .; Beaman, Joseph R. (1 de enero de 1992). "Transmisión del virus de la encefalomielitis equina venezolana por Aedes sollicitans y Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae)". Revista de Entomología Médica . 29 (1): 62–65. doi : 10.1093 / jmedent / 29.1.62 . ISSN 0022-2585 . PMID 1552530 .
- ^ a b Connelly, JK Nayar y CR (3 de febrero de 2017). "Enfermedad del gusano del corazón del perro transmitida por mosquitos" . edis.ifas.ufl.edu . Consultado el 29 de septiembre de 2019 .
- ^ a b Briegel, Hans; Kaiser, Claire (1973). "Vida útil de los mosquitos (Culicidae, Diptera) en condiciones de laboratorio". Gerontología . 19 (4): 240–249. doi : 10.1159 / 000211976 . ISSN 0304-324X . PMID 4775101 .
- ^ a b c Nayar, JK; Sauerman, DM (1 de junio de 1971). "El efecto de los regímenes de luz sobre el ritmo circadiano de la actividad de vuelo en el mosquito Aedes Taeniorhynchus" . Revista de Biología Experimental . 54 (3): 745–756. ISSN 0022-0949 . PMID 5090100 .
- ^ a b c Mankin, RW (1994). "Detección acústica de enjambres de Aedes taeniorhynchus y éxodos de emergencia en marismas remotas" (PDF) . Revista de la Asociación Estadounidense de Control de Mosquitos . 10 (2): 302–308.
- ^ a b c d e f g Provost, Maurice W. (septiembre de 1952). "La dispersión de Aedes taeniorhynchus. 1. Estudios preliminares" (PDF) . Noticias de mosquitos . 12 : 174–90.
- ^ "Taxonomía - Ochlerotatus taeniorhynchus (mosquito de la marisma negra) (Aedes taeniorhynchus)" . UniProt . Consultado el 20 de noviembre de 2019 .
- ^ "Página de informe estándar ITIS: Aedes taeniorhynchus" . www.itis.gov . Consultado el 5 de febrero de 2020 .
- ^ a b c d e f Komp, WHW (1923). "Guía para la identificación de mosquitos para trabajadores de campo dedicados al control de la malaria en los Estados Unidos". Informes de salud pública . 38 (20): 1061–1080. doi : 10.2307 / 4576745 . ISSN 0094-6214 . JSTOR 4576745 .
- ^ a b c d Bataille, Arnaud; Cunningham, Andrew A .; Cruz, Marilyn; Cedeño, Virna; Goodman, Simon J. (2010). "Efectos estacionales y dinámica poblacional a escala fina de Aedes taeniorhynchus, un importante vector de enfermedades en las Islas Galápagos". Ecología molecular . 19 (20): 4491–4504. doi : 10.1111 / j.1365-294X.2010.04843.x . ISSN 1365-294X . PMID 20875066 .
- ^ a b c Agramonte, Natasha Marie; Connelly, C. Roxanne (abril de 2014). "Mosquito de la marisma salada negra - Aedes taeniorhynchus (Wiedemann)" . Departamento de Entomología y Nematología de la Universidad de Florida . Consultado el 20 de noviembre de 2019 .
- ^ a b c Benedict, MQ; Seawright, JA (1 de enero de 1987). "Cambios en la pigmentación en mosquitos (Diptera: Culicidae) en respuesta al color del medio ambiente". Anales de la Sociedad Entomológica de América . 80 (1): 55–61. doi : 10.1093 / aesa / 80.1.55 . ISSN 0013-8746 .
- ^ Jupatanakul, Natapong; Sim, Shuzhen; Dimopoulos, George (noviembre de 2014). "El microbioma de insectos modula la competencia de los vectores para los arbovirus" . Virus . 6 (11): 4294–4313. doi : 10.3390 / v6114294 . PMC 4246223 . PMID 25393895 .
- ^ a b Valiente Moro, Claire; Tran, Florence Hélène; Raharimalala, Fara Nantenaina; Ravelonandro, Pierre; Mavingui, Patrick (27 de marzo de 2013). "Diversidad de bacterias cultivables incluyendo Pantoea en mosquito salvaje Aedes albopictus" . Microbiología BMC . 13 : 70. doi : 10.1186 / 1471-2180-13-70 . ISSN 1471-2180 . PMC 3617993 . PMID 23537168 .
- ^ Terenius, Olle; Lindh, Jenny M .; Eriksson-Gonzales, Karolina; Bussière, Luc; Laugen, Ane T .; Bergquist, Helen; Titanji, Kehmia; Faye, Ingrid (junio de 2012). "Dinámica bacteriana del intestino medio en Aedes aegypti" . Ecología Microbiología FEMS . 80 (3): 556–565. doi : 10.1111 / j.1574-6941.2012.01317.x . ISSN 1574-6941 . PMID 22283178 .
- ^ a b Serafim, José; Davis, Nelson C. (1 de marzo de 1933). "Distribución de AËdes (Taeniorhynchus) Taeniorhynchus (Wiedemann). Aedes (Taeniorhynchus) Jacobinae, nueva especie". Anales de la Sociedad Entomológica de América . 26 (1): 13-19. doi : 10.1093 / aesa / 26.1.13 . ISSN 0013-8746 .
- ^ a b "Aedes taeniorhynchus" . www.coj.net . Consultado el 2 de octubre de 2019 .[ enlace muerto permanente ]
- ^ "WRBU: Aedes taeniorhynchus" . www.wrbu.org . Consultado el 29 de septiembre de 2019 .
- ^ a b c d e f g h "Especies de mosquitos de Nueva Jersey: Rutgers Center for Vector Biology" . vectorbio.rutgers.edu . Consultado el 2 de octubre de 2019 .
- ^ a b c Bataille, Arnaud; Cunningham, Andrew A .; Cruz, Marilyn; Cedeño, Virna; Goodman, Simon J. (1 de diciembre de 2011). "La adaptación, el aislamiento por distancia y el transporte mediado por humanos determinan los patrones de flujo de genes entre poblaciones del vector de la enfermedad Aedes taeniorhynchus en las Islas Galápagos". Infección, Genética y Evolución . 11 (8): 1996-2003. doi : 10.1016 / j.meegid.2011.09.009 . ISSN 1567-1348 . PMID 21968211 .
- ^ a b c d e f g h yo j k l m Nielsen, Erik Tetens; Nielsen, Astrid Tetens (1953). "Observaciones de campo sobre los hábitos de Aedes Taeniorhynchus". Ecología . 34 (1): 141-156. doi : 10.2307 / 1930314 . ISSN 0012-9658 . JSTOR 1930314 .
- ^ Knight, Kenneth L. (junio de 1965). "Algunas características físicas y químicas de los suelos costeros subyacentes a las áreas de reproducción de mosquitos" (PDF) . Noticias de mosquitos . 25 : 154-159.
- ^ a b O'meara, George F .; Edman, John D. (1 de octubre de 1975). "Producción de huevos autógenos en el mosquito de las marismas, aedes taeniorhynchus". El Boletín Biológico . 149 (2): 384–396. doi : 10.2307 / 1540534 . ISSN 0006-3185 . JSTOR 1540534 . PMID 1239308 .
- ^ a b Ritchie, Scott A .; Montague, Clay L. (1 de febrero de 1995). "Poblaciones simuladas del mosquito de la marcha de la sal negra (Aedes taeniorhynchus) en un manglar de Florida". Modelización ecológica . 77 (2): 123-141. doi : 10.1016 / 0304-3800 (93) E0083-F . ISSN 0304-3800 .
- ^ a b Lang, James D. (julio de 2003). "Factores que afectan a los inmaduros de Ochlerotatus taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) en el condado de San Diego, California". Revista de Entomología Médica . 40 (4): 387–394. doi : 10.1603 / 0022-2585-40.4.387 . ISSN 0022-2585 . PMID 14680101 . S2CID 20639393 .
- ^ Ailes, MC (mayo de 1998). "No se pudo predecir la abundancia de mosquitos de las marismas Aedes sollicitans y A. taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) mediante el uso de variables de marea y clima". Revista de Entomología Médica . 35 (3): 200-204. doi : 10.1093 / jmedent / 35.3.200 . ISSN 0022-2585 . PMID 9615534 .
- ^ a b c d e Nayar, JK (1 de julio de 1972). "Efectos de las temperaturas constantes y fluctuantes sobre la vida de los adultos de Aedes taeniorhynchus". Revista de fisiología de insectos . 18 (7): 1303-1313. doi : 10.1016 / 0022-1910 (72) 90259-4 . ISSN 0022-1910 . PMID 5039260 .
- ^ a b c d e f Nayar, JK (15 de septiembre de 1967). "El ritmo de pupación en Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae). II. Sincronización Ontogenética, tasa de desarrollo y ritmo endógeno diurno de pupación". Anales de la Sociedad Entomológica de América . 60 (5): 946–971. doi : 10.1093 / aesa / 60.5.946 . ISSN 0013-8746 . PMID 6077388 .
- ^ a b Estación Experimental Agrícola de Nueva Jersey .; Station, Experimento Agrícola de Nueva Jersey; Smith, John Bernhard (1904). Informe de la Estación Experimental Agrícola del estado de Nueva Jersey sobre los mosquitos que se producen dentro del estado, sus hábitos, historia de vida, & c . Trenton, Nueva Jersey: MacCrellish & Quigley, impresores estatales.
- ^ a b c d e Linley, JR; Evans, DG (1971). "Comportamiento de larvas y pupas de Aedes Taeniorhynchus en un gradiente de temperatura". Entomologia Experimentalis et Applicata . 14 (3): 319–332. doi : 10.1111 / j.1570-7458.1971.tb00170.x . ISSN 1570-7458 . S2CID 86533634 .
- ^ a b c Bradley, TJ; Phillips, JE (1 de octubre de 1975). "La secreción de líquido hiperosmótico por el recto de una larva de mosquito de agua salina, Aedes taeniorhynchus" . Revista de Biología Experimental . 63 (2): 331–342. ISSN 0022-0949 . PMID 1202126 .
- ^ a b c Nayar, JK; Sauerman, DM (1968). "Interrelaciones de la formación de agregación larvaria y la densidad de población en Aedes Taeniorhynchus1, sus efectos sobre la ecdisis pupal y las características adultas en la emergencia". Entomologia Experimentalis et Applicata . 11 (4): 423–442. doi : 10.1111 / j.1570-7458.1968.tb02071.x . ISSN 1570-7458 . S2CID 86306401 .
- ^ a b Lea, Arden O. (1 de septiembre de 1970). "Endocrinología de la maduración del huevo en Aedes taeniorhynchus autógenos y anautógenos". Revista de fisiología de insectos . 16 (9): 1689–1696. doi : 10.1016 / 0022-1910 (70) 90268-4 . ISSN 0022-1910 . PMID 5529179 .
- ^ Lea, Arden O. (10 de abril de 1964). "Estudios sobre la regulación dietética y endocrina de la reproducción autógena en Aedes Taeniorhynchus (Wied". Revista de Entomología Médica . 1 : 40-44. Doi : 10.1093 / jmedent / 1.1.40 . PMID 14188823 .
- ^ Edman, JD (30 de diciembre de 1971). "Patrones de alimentación del anfitrión de los mosquitos de Florida. I. Aedes, Anopheles, Coquillettidia, Mansonia y Psorophora". Revista de Entomología Médica . 8 (6): 687–695. doi : 10.1093 / jmedent / 8.6.687 . ISSN 0022-2585 . PMID 4403447 .
- ^ a b c d Bataille, Arnaud; Fournié, Guillaume; Cruz, Marilyn; Cedeño, Virna; Parker, Patricia G .; Cunningham, Andrew A .; Goodman, Simon J. (1 de diciembre de 2012). "Selección de hospedadores e infección parasitaria en Aedes taeniorhynchus, vector de enfermedades endémicas en las Islas Galápagos". Infección, Genética y Evolución . 12 (8): 1831–1841. doi : 10.1016 / j.meegid.2012.07.019 . ISSN 1567-1348 . PMID 22921730 .
- ^ a b Anderson, David J .; Fortner, Sharon (1988). "Descuido de huevo de albatros ondulado y ectoparasitismo de mosquito asociado". El cóndor . 90 (3): 727–729. doi : 10.2307 / 1368369 . ISSN 0010-5422 . JSTOR 1368369 .
- ^ a b c d Nayar, JK; Sauerman, DM (15 de diciembre de 1971). "Los efectos de la dieta sobre la esperanza de vida, la fecundidad y el potencial de vuelo de los adultos Aedes Taeniorhynchus". Revista de Entomología Médica . 8 (5): 506–513. doi : 10.1093 / jmedent / 8.5.506 . ISSN 0022-2585 . PMID 5160252 .
- ^ a b O'Meara, George F .; Evans, David G. (22 de junio de 1973). "Requisitos de alimentación de sangre del mosquito: variación geográfica en Aedes taeniorhynchus". Ciencia . 180 (4092): 1291-1293. Código Bibliográfico : 1973Sci ... 180.1291O . doi : 10.1126 / science.180.4092.1291 . ISSN 0036-8075 . PMID 4145305 . S2CID 19715718 .
- ^ a b Nayar, JK; Sauerman, DM (1 de julio de 1974). "Regulación a largo plazo de la ingesta de sacarosa por el mosquito hembra, Aedes taeniorhynchus". Revista de fisiología de insectos . 20 (7): 1203–1208. doi : 10.1016 / 0022-1910 (74) 90226-1 . ISSN 0022-1910 . PMID 4853040 .
- ^ Nayar, JK; Sauerman, DM (1 de noviembre de 1971). "Efectos fisiológicos de los carbohidratos sobre la supervivencia, el metabolismo y el potencial de vuelo de la hembra Aedes taeniorhynchus". Revista de fisiología de insectos . 17 (11): 2221–2233. doi : 10.1016 / 0022-1910 (71) 90180-6 . ISSN 0022-1910 . PMID 5158362 .
- ^ Haeger, JS (1960). "Comportamiento anterior a la migración en el mosquito de las marismas, Aedes taeniorhynchus (Wiedemann)" . Noticias de mosquitos . 20 : 136-147.
- ^ Van, E. Handel; Day, JF (junio de 1990). "Hábitos de alimentación de néctar de Aedes taeniorhynchus". Revista de la Asociación Estadounidense de Control de Mosquitos . 6 (2): 270-273. ISSN 8756-971X . PMID 2370536 .
- ^ a b Edman, JD; Haeger, JS; Bidlingmayer, WL; Dow, RP; Nayar, JK; Rector, MW (17 de julio de 1972). "Comportamiento sexual de los mosquitos. 4. Observaciones de campo sobre apareamiento e inseminación de crías marcadas de Aedes taeniorhynchus". Anales de la Sociedad Entomológica de América . 65 (4): 848–852. doi : 10.1093 / aesa / 65.4.848 . ISSN 0013-8746 .
- ^ Borovsky, Dov (1985). "El papel del líquido de la glándula accesoria masculina en la estimulación de la vitelogénesis en Aedes taeniorhynchus". Archivos de Bioquímica y Fisiología de Insectos . 2 (4): 405–413. doi : 10.1002 / arch.940020408 . ISSN 1520-6327 .
- ^ a b c d e f g Lea, Arden O .; Evans, DG (15 de marzo de 1972). "Comportamiento sexual de los mosquitos. 1. Dependencia de la edad de la cópula y la inseminación en el Complejo Culex pipiens y Aedes taeniorhynchus en el Laboratorio" . Anales de la Sociedad Entomológica de América . 65 (2): 285-289. doi : 10.1093 / aesa / 65.2.285 . ISSN 0013-8746 .
- ^ a b c Klowden, Marc J. (1999). "El control está en el macho: los mosquitos machos afectan la fisiología y el comportamiento de la mujer" (PDF) . Revista de la Asociación Estadounidense de Control de Mosquitos . 15 (2): 213–220. PMID 10412116 .
- ^ Knight, KL; Baker, TE (1962). "El papel del contenido de humedad del sustrato en la selección de sitios de oviposición por Aedes taeniorhynchus (Wied.) Y A. sollicitans (Walk.)" . Noticias de mosquitos . 22 : 247-254.
- ^ a b Borovsky, Dov (1 de enero de 1982). "Liberación de la hormona neurosecretora del desarrollo del óvulo en Aedes aegypti y Aedes taeniorhynchus inducida por un factor ovárico". Revista de fisiología de insectos . 28 (4): 311–316. doi : 10.1016 / 0022-1910 (82) 90042-7 . ISSN 0022-1910 .
- ^ a b c Ritchie, Scott A .; Johnson, Eric S. (1 de julio de 1991). "Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) patrones de oviposición en un bosque de manglares de Florida". Revista de Entomología Médica . 28 (4): 496–500. doi : 10.1093 / jmedent / 28.4.496 . ISSN 0022-2585 . PMID 1941908 .
- ^ Ritchie, Scott A .; Addison, David S. (1 de agosto de 1992). "Preferencias de oviposición de Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) en los bosques de manglares de Florida" . Entomología ambiental . 21 (4): 737–744. doi : 10.1093 / ee / 21.4.737 . ISSN 0046-225X .
- ^ McGaughey, William Horton (1967). "Papel de las sales en la selección del sitio de oviposición por el mosquito negro de las marismas, Aedes taeniorhynchus (Wiedemann)" . Capstones, tesis y disertaciones de la Universidad Estatal de Iowa : 1–79.
- ^ Russo, Raymond (7 de noviembre de 1978). "Textura del sustrato como estímulo de oviposición para Aedes Vexans (Diptera: Culicidae)". Revista de Entomología Médica . 15 (1): 17-20. doi : 10.1093 / jmedent / 15.1.17 . ISSN 0022-2585 .
- ^ Bidlingmayer, WL (1964). "El efecto de la luz de la luna en la actividad de vuelo de los mosquitos". Ecología . 45 (1): 87–94. doi : 10.2307 / 1937110 . ISSN 0012-9658 . JSTOR 1937110 .
- ^ Fisk, FW; Le Van, JH (1 de junio de 1940). "Colecciones de mosquitos en Charleston, Carolina del Sur, utilizando la trampa de luz de Nueva Jersey". Revista de Entomología Económica . 33 (3): 578–585. doi : 10.1093 / jee / 33.3.578 . ISSN 0022-0493 .
- ^ Señor, Jeffrey C .; Hall, Donald W .; Ellis, E. Ann (1 de enero de 1981). "Ciclo de vida de una nueva especie de Amblyospora (Microspora: Amblyosporidae) en el mosquito Aedes taeniorhynchus". Revista de patología de invertebrados . 37 (1): 66–72. doi : 10.1016 / 0022-2011 (81) 90056-2 . ISSN 0022-2011 .
- ^ LuM, PTM (1963). "La infección de Aedes taeniorhynchus (Wiedemann) y Psorophora howardii Coquillett por el hongo Goelomomyces" . Revista de patología de insectos . 5 (2): 157-166.
- ^ Clark, Truman B .; Kellen, William R .; Lum, Patrick TM (1 de diciembre de 1965). "Un virus iridiscente de mosquito (MIV) de Aedes taeniorhynchus (Wiedemann)". Revista de patología de invertebrados . 7 (4): 519–521. doi : 10.1016 / 0022-2011 (65) 90133-3 . ISSN 0022-2011 . PMID 5848799 .
- ^ Kelser, RA (1937). "Transmisión del virus de la encefalomía-elîtis equina por Aëdes taeniorhynchus" . www.cabdirect.org . Consultado el 29 de septiembre de 2019 .
- ^ Davis, Nelson C .; Shannon, Raymond C. (1 de enero de 1931). "Estudios sobre la fiebre amarilla en Sudamérica1". The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene . s1-11 (1): 21-29. doi : 10.4269 / ajtmh.1931.s1-11.21 . ISSN 0002-9637 .
- ^ Turell, MJ; Knudson, GB (1 de agosto de 1987). "Transmisión mecánica de Bacillus anthracis por moscas del establo (Stomoxys calcitrans) y mosquitos (Aedes aegypti y Aedes taeniorhynchus)" . Infección e inmunidad . 55 (8): 1859–1861. doi : 10.1128 / IAI.55.8.1859-1861.1987 . ISSN 0019-9567 . PMC 260614 . PMID 3112013 .
- ^ Turell, Michael J .; Rossi, Cynthia A .; Bailey, Charles L. (1 de noviembre de 1985). "Efecto de la temperatura de incubación extrínseca sobre la capacidad de Aedes Taeniorhynchus y Culex Pipiens para transmitir el virus de la fiebre del Valle del Rift". The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene . 34 (6): 1211-1218. doi : 10.4269 / ajtmh.1985.34.1211 . ISSN 0002-9637 . PMID 3834803 .
- ^ a b Bradley, Timothy J .; Donald M. Sauerman, Jr .; Nayar, Jai K. (1984). "Respuestas celulares tempranas en los túbulos de Malpighi del mosquito Aedes taeniorhynchus a la infección por Dirofilaria immitis (Nematoda)". La Revista de Parasitología . 70 (1): 82–88. doi : 10.2307 / 3281929 . ISSN 0022-3395 . JSTOR 3281929 . PMID 6737175 .
- ^ King, WV; McNeel, TE (17 de septiembre de 1937). "Experimentos con verde de París y arsenito de calcio como larvicidas para mosquitos Culicine". Revista de Entomología Económica . 31 : 85–86. doi : 10.1093 / jee / 31.1.85 .
- ^ Lindquist, Arthur W .; Madden, AH; Husman, CN; Travis, BV (1 de octubre de 1945). "DDT dispersado desde aviones para el control de mosquitos adultos". Revista de Entomología Económica . 38 (5): 541–544. doi : 10.1093 / jee / 38.5.541 . ISSN 0022-0493 . PMID 21008220 .
- ^ Kline, Daniel (1995). "Evaluación de campo del calor como un atrayente añadido a trampas cebadas con dióxido de carbono y octenol para Aedes taeniorhynchus" (PDF) . Revista de la Asociación Estadounidense de Control de Mosquitos . 11 (4): 454–456. PMID 8825507 .
- ^ Gouck, HK; Godwin, DR; Schreck, CE; Smith, Nelson (1 de octubre de 1967). "Pruebas de campo con mallas tratadas con repelente contra mosquitos negros de las marismas". Revista de Entomología Económica . 60 (5): 1451–1452. doi : 10.1093 / jee / 60.5.1451 . ISSN 0022-0493 . PMID 6054448 .
- ^ Xue, Rui-De; Qualls, Whitney A .; Smith, Michael L .; Gaines, Marcia K .; Weaver, James H .; Debboun, Mustapha (1 de mayo de 2012). "Evaluación de campo del repelente de mosquitos con clip Off! (Metoflutrina) contra Aedes albopictus y Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) en el noreste de Florida" . Revista de Entomología Médica . 49 (3): 652–655. doi : 10.1603 / ME10227 . ISSN 0022-2585 . PMID 22679874 . S2CID 26815971 .
- ^ a b Yamamoto, Takashi; McLaughlin, Roy E. (30 de noviembre de 1981). "Aislamiento de una proteína del cristal paraesporal de Bacillus thuringiensis var, kurstaki tóxico para la larva del mosquito Aedes taeniorhynchus". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 103 (2): 414–421. doi : 10.1016 / 0006-291X (81) 90468-X . ISSN 0006-291X . PMID 7332548 .