Un fluoróforo (o fluorocromo , de manera similar a un cromóforo ) es un compuesto químico fluorescente que puede volver a emitir luz tras la excitación de la luz. Los fluoróforos contienen típicamente varios grupos aromáticos combinados , o moléculas planas o cíclicas con varios enlaces π . [1]
Los fluoróforos a veces se usan solos, como trazador en fluidos, como colorante para teñir ciertas estructuras, como sustrato de enzimas , o como sonda o indicador (cuando su fluorescencia se ve afectada por aspectos ambientales como la polaridad o los iones). De manera más general, están unidos covalentemente a una macromolécula , que sirve como marcador (o tinte, o etiqueta, o informador) para reactivos afines o bioactivos ( anticuerpos , péptidos, ácidos nucleicos). Los fluoróforos se utilizan principalmente para teñir tejidos, células o materiales en una variedad de métodos analíticos, es decir, formación de imágenes fluorescentes y espectroscopía .
La fluoresceína , a través de su derivado de isotiocianato de amina, el isotiocianato de fluoresceína (FITC), ha sido uno de los fluoróforos más populares. Desde el marcaje de anticuerpos, las aplicaciones se han extendido a los ácidos nucleicos gracias a la carboxifluoresceína (FAM), TET, ...). Otros fluoróforos históricamente comunes son los derivados de rodamina (TRITC), cumarina y cianina . [2] Las nuevas generaciones de fluoróforos, muchos de los cuales son patentados, a menudo funcionan mejor, son más fotoestables, más brillantes y / o menos sensibles al pH que los tintes tradicionales con excitación y emisión comparables. [3] [4]
Fluorescencia
El fluoróforo absorbe energía luminosa de una longitud de onda específica y vuelve a emitir luz en una longitud de onda más larga. Las longitudes de onda absorbidas , la eficiencia de transferencia de energía y el tiempo antes de la emisión dependen tanto de la estructura del fluoróforo como de su entorno químico, ya que la molécula en su estado excitado interactúa con las moléculas circundantes. Las longitudes de onda de máxima absorción (≈ excitación) y emisión (por ejemplo, Absorción / Emisión = 485 nm / 517 nm) son los términos típicos que se utilizan para referirse a un fluoróforo dado, pero puede ser importante considerar todo el espectro. El espectro de longitud de onda de excitación puede ser una banda muy estrecha o más amplia, o puede estar todo más allá de un nivel de corte. El espectro de emisión suele ser más nítido que el espectro de excitación, y tiene una longitud de onda más larga y, en consecuencia, una energía más baja. Las energías de excitación varían desde el ultravioleta hasta el espectro visible , y las energías de emisión pueden continuar desde la luz visible hasta la región del infrarrojo cercano .
Las principales características de los fluoróforos son:
- Longitud de onda máxima de excitación y emisión (expresada en nanómetros (nm)): corresponde al pico en los espectros de excitación y emisión (normalmente un pico cada uno).
- Coeficiente de absorción molar (en Molar -1 cm -1 ): vincula la cantidad de luz absorbida, a una determinada longitud de onda, con la concentración de fluoróforo en solución.
- Rendimiento cuántico : eficiencia de la energía transferida de la luz incidente a la fluorescencia emitida (= número de fotones emitidos por fotones absorbidos).
- Curso de la vida (en picosegundos): duración del estado excitado de un fluoróforo antes de regresar a su estado fundamental. Se refiere al tiempo que tarda una población de fluoróforos excitados en desintegrarse a 1 / e (≈0,368) de la cantidad original.
- Desplazamiento de Stokes : diferencia entre la máxima excitación y la máxima longitud de onda de emisión.
- Fracción oscura : proporción de moléculas activas en emisión de fluorescencia. Para los puntos cuánticos , la microscopía prolongada de una sola molécula mostró que el 20-90% de todas las partículas nunca emiten fluorescencia. [5] Por otro lado, las nanopartículas de polímero conjugado (Pdots) casi no muestran una fracción oscura en su fluorescencia. [6] Las proteínas fluorescentes pueden tener una fracción oscura debido al plegamiento incorrecto de las proteínas o la formación defectuosa de cromóforos. [7]
Estas características impulsan otras propiedades, incluyendo el fotoblanqueo o fotorresistencia (pérdida de fluorescencia tras la excitación continua de la luz). Se deben considerar otros parámetros, como la polaridad de la molécula de fluoróforo, el tamaño y la forma del fluoróforo (es decir, para el patrón de fluorescencia de polarización ), y otros factores pueden cambiar el comportamiento de los fluoróforos.
Los fluoróforos también se pueden utilizar para apagar la fluorescencia de otros tintes fluorescentes (ver artículo Apagado (fluorescencia) ) o para transmitir su fluorescencia a una longitud de onda aún mayor (ver artículo Transferencia de energía de resonancia de Förster (FRET)).
Más información sobre el principio de fluorescencia .
Tamaño (peso molecular)
La mayoría de los fluoróforos son pequeñas moléculas orgánicas de 20 a 100 átomos (200 a 1000 Dalton ; el peso molecular puede ser mayor dependiendo de las modificaciones injertadas y las moléculas conjugadas), pero también hay fluoróforos naturales mucho más grandes que son proteínas : proteína verde fluorescente (GFP ) es de 27 k Da y varias ficobiliproteínas (PE, APC ...) tienen ≈240 k Da .
Las partículas de fluorescencia como puntos cuánticos : 2-10 nm de diámetro, 100-100.000 átomos, también se consideran fluoróforos. [8]
El tamaño del fluoróforo podría obstaculizar estéricamente la molécula marcada y afectar la polaridad de la fluorescencia.
Familias
Las moléculas de fluoróforo podrían utilizarse solas o servir como motivo fluorescente de un sistema funcional. Basándose en la complejidad molecular y los métodos sintéticos, las moléculas de fluoróforo podrían clasificarse generalmente en cuatro categorías: proteínas y péptidos, pequeños compuestos orgánicos, oligómeros y polímeros sintéticos y sistemas multicomponente. [9] [10]
Las proteínas fluorescentes GFP (verde), YFP (amarillo) y RFP (rojo) se pueden unir a otras proteínas específicas para formar una proteína de fusión , sintetizada en células después de la transfección de un portador de plásmido adecuado .
Los fluoróforos orgánicos no proteicos pertenecen a las siguientes familias químicas principales:
- Derivados del xanteno : fluoresceína , rodamina , verde Oregon , eosina y rojo Texas
- Cianina derivados de cianina, indocarbocianina , oxacarbocianina , thiacarbocyanine y merocianina
- Derivados de la escuaraína y escuaraínas de anillo sustituido , incluidos los tintes Seta y Square
- Derivados de rotaxano de escuareína : Ver colorantes Tau
- Derivados de naftaleno ( derivados de dansyl y prodan )
- Derivados de cumarina
- Derivados de oxadiazol : piridiloxazol , nitrobenzoxadiazol y benzoxadiazol
- Derivados del antraceno : antraquinonas , incluidas DRAQ5, DRAQ7 y CyTRAK Orange
- Derivados del pireno : azul cascada , etc.
- Derivados de oxazina : rojo Nilo , azul Nilo , violeta de cresilo , oxazina 170 , etc.
- Derivados de la acridina : proflavina , acridina naranja , acridina amarilla , etc.
- Derivados de arilmetina : auramina , violeta cristal , verde malaquita
- Derivados del tetrapirrol : porfina , ftalocianina , bilirrubina
- Derivados del dipirrometeno: BODIPY , aza-BODIPY
Estos fluoróforos emiten fluorescencia debido a electrones deslocalizados que pueden saltar una banda y estabilizar la energía absorbida. El benceno , uno de los hidrocarburos aromáticos más simples, por ejemplo, se excita a 254 nm y emite a 300 nm. [11] Esto discrimina los fluoróforos de los puntos cuánticos, que son nanopartículas semiconductoras fluorescentes .
Se pueden unir a la proteína a grupos funcionales específicos, tales como: grupos amino ( éster activo , carboxilato , isotiocianato , hidrazina ), grupos carboxilo ( carbodiimida ), tiol ( maleimida , bromuro de acetilo ), azida (mediante química de clic o de forma no específica ( glutaraldehído )).
Además, pueden estar presentes varios grupos funcionales para alterar sus propiedades, como la solubilidad, o conferir propiedades especiales, como el ácido borónico que se une a azúcares o múltiples grupos carboxilo para unirse a ciertos cationes. Cuando el tinte contiene un grupo donador de electrones y un grupo aceptor de electrones en los extremos opuestos del sistema aromático, este tinte probablemente será sensible a la polaridad del ambiente ( solvatocrómico ), por lo que se le llama sensible al ambiente. A menudo se usan colorantes dentro de las células, que son impermeables a las moléculas cargadas, como resultado de esto, los grupos carboxilo se convierten en un éster, que es eliminado por las esterasas dentro de las células, por ejemplo, fura-2AM y diacetato de fluoresceína .
Las siguientes familias de tintes son grupos de marcas registradas y no necesariamente comparten similitudes estructurales.
- Tinte CF (Biotium)
- Sondas DRAQ y CyTRAK (BioStatus)
- BODIPY ( Invitrogen )
- EverFluor ( Setareh Biotech)
- Alexa Fluor (Invitrogen)
- Bella Fluor (Setareh Biotech)
- DyLight Fluor (Thermo Scientific, Pierce)
- Atto y Tracy ( Sigma Aldrich )
- FluoProbes ( Interchim )
- Tintes Abberior (Abberior)
- Colorantes DY y MegaStokes (Dyomics)
- Tintes Sulfo Cy (Cyandye)
- HiLyte Fluor (AnaSpec)
- Tintes Seta, SeTau y Square (SETA BioMedicals)
- Colorantes Quasar y Cal Fluor ( Biosearch Technologies )
- Colorantes SureLight ( APC , RPE PerCP , ficobilisomas ) (Columbia Biosciences)
- APC, APCXL, RPE, BPE (Phyco-Biotech, Greensea, Prozyme, Flogen)
- Tintes Vio (Miltenyi Biotec)
Ejemplos de fluoróforos que se encuentran con frecuencia
Colorantes reactivos y conjugados
Teñir | Ex (nm) | Em (nm) | MW | Notas |
---|---|---|---|---|
Hidroxicumarina | 325 | 386 | 331 | Éster succinimidílico |
Aminocoumarin | 350 | 445 | 330 | Éster succinimidílico |
Metoxicumarina | 360 | 410 | 317 | Éster succinimidílico |
Cascada Azul | (375); 401 | 423 | 596 | Hidrazida |
Pacifico Azul | 403 | 455 | 406 | Maleimida |
Naranja del Pacífico | 403 | 551 | ||
Lucifer amarillo | 425 | 528 | ||
NBD | 466 | 539 | 294 | NBD-X |
R-Ficoeritrina (PE) | 480; 565 | 578 | 240 k | |
Conjugados PE-Cy5 | 480; 565; 650 | 670 | también conocido como Cychrome, R670, Tri-Color, Quantum Red | |
Conjugados PE-Cy7 | 480; 565; 743 | 767 | ||
Rojo 613 | 480; 565 | 613 | PE-Texas Red | |
PerCP | 490 | 675 | 35 kDa | Proteína de clorofila de peridinina |
TruRed | 490,675 | 695 | Conjugado PerCP-Cy5.5 | |
FluorX | 494 | 520 | 587 | (GE Healthcare) |
Fluoresceína | 495 | 519 | 389 | FITC; sensible al pH |
BODIPY-FL | 503 | 512 | ||
G-Dye100 | 498 | 524 | adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis | |
G-Dye200 | 554 | 575 | adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis | |
G-Dye300 | 648 | 663 | adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis | |
G-Dye400 | 736 | 760 | adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis | |
Cy2 | 489 | 506 | 714 | QY 0,12 |
Cy3 | (512); 550 | 570; (615) | 767 | QY 0.15 |
Cy3B | 558 | 572; (620) | 658 | QY 0,67 |
Cy3.5 | 581 | 594; (640) | 1102 | QY 0.15 |
Cy5 | (625); 650 | 670 | 792 | QY 0,28 |
Cy5.5 | 675 | 694 | 1272 | QY 0,23 |
Cy7 | 743 | 767 | 818 | QY 0,28 |
TRITC | 547 | 572 | 444 | TRITC |
X-rodamina | 570 | 576 | 548 | XRITC |
Lisamina Rodamina B | 570 | 590 | ||
Rojo de Texas | 589 | 615 | 625 | Cloruro de sulfonilo |
Aloficocianina (APC) | 650 | 660 | 104 k | |
Conjugados APC-Cy7 | 650; 755 | 767 | Rojo lejano |
Abreviaturas:
- Ex (nm): longitud de onda de excitación en nanómetros
- Em (nm): longitud de onda de emisión en nanómetros
- MW: peso molecular
- QY: rendimiento cuántico
Colorantes de ácido nucleico
Teñir | Ex (nm) | Em (nm) | MW | Notas |
---|---|---|---|---|
Hoechst 33342 | 343 | 483 | 616 | AT-selectivo |
DAPI | 345 | 455 | AT-selectivo | |
Hoechst 33258 | 345 | 478 | 624 | AT-selectivo |
SYTOX Azul | 431 | 480 | ~ 400 | ADN |
Cromomicina A3 | 445 | 575 | CG-selectivo | |
Mitramicina | 445 | 575 | ||
YOYO-1 | 491 | 509 | 1271 | |
Bromuro de etidio | 210; 285 | 605 | 394 | en solución acuosa |
Naranja acridina | 503 | 530/640 | ADN / ARN | |
SYTOX Verde | 504 | 523 | ~ 600 | ADN |
TOTO-1, TO-PRO-1 | 509 | 533 | Tinción vital, TOTO: Cyanine Dimer | |
TO-PRO: Monómero de cianina | ||||
Naranja tiazol | 510 | 530 | ||
CyTRAK naranja | 520 | 615 | - | (Biostatus) (excitación roja oscura) |
Yoduro de propidio (PI) | 536 | 617 | 668,4 | |
SUD 751 | 543; 590 | 712; 607 | 472 | ADN (543ex / 712em), ARN (590ex / 607em) |
7-AAD | 546 | 647 | 7-aminoactinomicina D, selectiva para CG | |
SYTOX Naranja | 547 | 570 | ~ 500 | ADN |
TOTO-3, TO-PRO-3 | 642 | 661 | ||
DRAQ5 | 600/647 | 697 | 413 | (Biostatus) (excitación utilizable hasta 488) |
DRAQ7 | 599/644 | 694 | ~ 700 | (Biostatus) (excitación utilizable hasta 488) |
Tintes de función celular
Teñir | Ex (nm) | Em (nm) | MW | Notas |
---|---|---|---|---|
Indo-1 | 361/330 | 490/405 | 1010 | Éster AM, calcio bajo / alto (Ca 2+ ) |
Fluo-3 | 506 | 526 | 855 | AM éster. pH> 6 |
Fluo-4 | 491/494 | 516 | 1097 | AM éster. pH 7,2 |
DCFH | 505 | 535 | 529 | 2'7'Dicorodihidrofluoresceína , forma oxidada |
DHR | 505 | 534 | 346 | Dihidrorrodamina 123 , forma oxidada, la luz cataliza la oxidación |
SNARF | 548/579 | 587/635 | pH 6/9 |
Proteínas fluorescentes
Teñir | Ex (nm) | Em (nm) | MW | QY | BR | PD | Notas |
---|---|---|---|---|---|---|---|
GFP (mutación Y66H) | 360 | 442 | |||||
GFP (mutación Y66F) | 360 | 508 | |||||
EBFP | 380 | 440 | 0,18 | 0,27 | monómero | ||
EBFP2 | 383 | 448 | 20 | monómero | |||
Azurita | 383 | 447 | 15 | monómero | |||
GFPuv | 385 | 508 | |||||
T-Zafiro | 399 | 511 | 0,60 | 26 | 25 | dímero débil | |
Azul claro | 433 | 475 | 0,62 | 27 | 36 | dímero débil | |
mCFP | 433 | 475 | 0,40 | 13 | 64 | monómero | |
mTurquesa2 | 434 | 474 | 0,93 | 28 | monómero | ||
ECFP | 434 | 477 | 0,15 | 3 | |||
CyPet | 435 | 477 | 0,51 | 18 | 59 | dímero débil | |
GFP (mutación Y66W) | 436 | 485 | |||||
mKeima-Rojo | 440 | 620 | 0,24 | 3 | monómero (MBL) | ||
TagCFP | 458 | 480 | 29 | dímero (Evrogen) | |||
AmCyan1 | 458 | 489 | 0,75 | 29 | tetrámero, (Clontech) | ||
mTFP1 | 462 | 492 | 54 | dímero | |||
GFP (mutación S65A) | 471 | 504 | |||||
Cian Midoriishi | 472 | 495 | 0,9 | 25 | dímero (MBL) | ||
GFP de tipo salvaje | 396,475 | 508 | 26k | 0,77 | |||
GFP (mutación S65C) | 479 | 507 | |||||
TurboGFP | 482 | 502 | 26 k | 0,53 | 37 | dímero, (Evrogen) | |
EtiquetaGFP | 482 | 505 | 34 | monómero (Evrogen) | |||
GFP (mutación S65L) | 484 | 510 | |||||
Esmeralda | 487 | 509 | 0,68 | 39 | 0,69 | dímero débil, (Invitrogen) | |
GFP (mutación S65T) | 488 | 511 | |||||
EGFP | 488 | 507 | 26k | 0,60 | 34 | 174 | dímero débil, (Clontech) |
Azami Green | 492 | 505 | 0,74 | 41 | monómero (MBL) | ||
ZsGreen1 | 493 | 505 | 105k | 0,91 | 40 | tetrámero, (Clontech) | |
EtiquetaYFP | 508 | 524 | 47 | monómero (Evrogen) | |||
EYFP | 514 | 527 | 26k | 0,61 | 51 | 60 | dímero débil, (Clontech) |
Topacio | 514 | 527 | 57 | monómero | |||
Venus | 515 | 528 | 0,57 | 53 | 15 | dímero débil | |
mCitrine | 516 | 529 | 0,76 | 59 | 49 | monómero | |
YPet | 517 | 530 | 0,77 | 80 | 49 | dímero débil | |
TurboYFP | 525 | 538 | 26 k | 0,53 | 55,7 | dímero, (Evrogen) | |
ZsYellow1 | 529 | 539 | 0,65 | 13 | tetrámero, (Clontech) | ||
Naranja Kusabira | 548 | 559 | 0,60 | 31 | monómero (MBL) | ||
mOrange | 548 | 562 | 0,69 | 49 | 9 | monómero | |
Aloficocianina (APC) | 652 | 657,5 | 105 kDa | 0,68 | heterodímero, reticulado [12] | ||
mKO | 548 | 559 | 0,60 | 31 | 122 | monómero | |
TurboRFP | 553 | 574 | 26 k | 0,67 | 62 | dímero, (Evrogen) | |
tdTomato | 554 | 581 | 0,69 | 95 | 98 | dímero en tándem | |
EtiquetaRFP | 555 | 584 | 50 | monómero (Evrogen) | |||
Monómero DsRed | 556 | 586 | ~ 28k | 0,1 | 3,5 | dieciséis | monómero, (Clontech) |
DsRed2 ("RFP") | 563 | 582 | ~ 110k | 0,55 | 24 | (Clontech) | |
mFresa | 574 | 596 | 0,29 | 26 | 15 | monómero | |
TurboFP602 | 574 | 602 | 26 k | 0,35 | 26 | dímero, (Evrogen) | |
AsRed2 | 576 | 592 | ~ 110k | 0,21 | 13 | tetrámero, (Clontech) | |
mRFP1 | 584 | 607 | ~ 30k | 0,25 | monómero, ( laboratorio de Tsien ) | ||
J-Rojo | 584 | 610 | 0,20 | 8.8 | 13 | dímero | |
R-ficoeritrina (RPE) | 565> 498 | 573 | 250 kDa | 0,84 | heterotrímero [12] | ||
B-ficoeritrina (BPE) | 545 | 572 | 240 kDa | 0,98 | heterotrímero [12] | ||
mCherry | 587 | 610 | 0,22 | dieciséis | 96 | monómero | |
HcRed1 | 588 | 618 | ~ 52k | 0,03 | 0,6 | dímero, (Clontech) | |
Katusha | 588 | 635 | 23 | dímero | |||
P3 | 614 | 662 | ~ 10,000 kDa | complejo de ficobilisomas [12] | |||
Clorofila de peridinina (PerCP) | 483 | 676 | 35 kDa | trimer [12] | |||
mKate (TagFP635) | 588 | 635 | 15 | monómero (Evrogen) | |||
TurboFP635 | 588 | 635 | 26 k | 0,34 | 22 | dímero, (Evrogen) | |
mPlum | 590 | 649 | 51,4 mil | 0,10 | 4.1 | 53 | |
mFrambuesa | 598 | 625 | 0,15 | 13 | monómero, fotoblanqueador más rápido que mPlum |
Abreviaturas:
- Ex (nm): longitud de onda de excitación en nanómetros
- Em (nm): longitud de onda de emisión en nanómetros
- MW: peso molecular
- QY: rendimiento cuántico
- BR: Brillo: coeficiente de absorción molar * rendimiento cuántico / 1000
- PD: Fotoestabilidad : tiempo [seg] para reducir el brillo en un 50%
Aplicaciones
Los fluoróforos tienen una importancia particular en el campo de la bioquímica y los estudios de proteínas , por ejemplo, en inmunofluorescencia, pero también en análisis de células, [13] por ejemplo, inmunohistoquímica [3] [14] y sensores de moléculas pequeñas . [15] [16]
Usos fuera de las ciencias de la vida.
Además, los tintes fluorescentes encuentran un amplio uso en la industria, bajo el nombre de "colores neón", tales como:
- Usos de escala de varias toneladas en teñido de textiles y abrillantadores ópticos en detergentes para ropa
- Formulaciones cosméticas avanzadas ; ropa y equipo de seguridad
- Diodos emisores de luz orgánicos (OLED)
- Bellas artes y diseño (carteles y pinturas)
- Sinergistas para insecticidas y fármacos experimentales
- Como tinte en iluminadores para dar un efecto de brillo.
- Paneles solares para recolectar más luz / longitudes de onda
Ver también
- Categoría: Tintes fluorescentes
- Fluorescencia en las ciencias de la vida
- Apagado de la fluorescencia
- Recuperación de fluorescencia después del fotoblanqueo (FRAP): una aplicación para cuantificar la movilidad de moléculas en bicapas lipídicas .
Referencias
- ^ Juan Carlos Stockert, Alfonso Blázquez-Castro (2017). "Capítulo 3 Tintes y fluorocromos" . Microscopía de fluorescencia en ciencias de la vida . Editores de ciencia de Bentham. págs. 61–95. ISBN 978-1-68108-519-7. Consultado el 24 de diciembre de 2017 .
- ^ Rietdorf J (2005). Técnicas microscópicas . Avances en Ingeniería Bioquímica / Biotecnología. Berlín: Springer. págs. 246–9. ISBN 3-540-23698-8. Consultado el 13 de diciembre de 2008 .
- ^ a b Tsien RY; Wagoner A (1995). "Fluoróforos para microscopía confocal" . En Pawley JB (ed.). Manual de microscopía confocal biológica . Nueva York: Plenum Press. págs. 267–74. ISBN 0-306-44826-2. Consultado el 13 de diciembre de 2008 .
- ^ Lakowicz, JR (2006). Principios de la espectroscopia de fluorescencia (3ª ed.). Saltador. pag. 954. ISBN 978-0-387-31278-1.
- ^ Pons T, Medintz IL, Farrell D, Wang X, Grimes AF, English DS, Berti L, Mattoussi H (2011). "Los estudios de colocalización de una sola molécula arrojan luz sobre la idea de puntos cuánticos únicos totalmente emisores frente a oscuros". Pequeño . 7 (14): 2101–2108. doi : 10.1002 / smll.201100802 . PMID 21710484 .
- ^ Koner AL, Krndija D, Hou Q, Sherratt DJ, Howarth M (2013). "Las nanopartículas de polímero conjugado terminadas en hidroxi tienen una fracción brillante cercana a la unidad y revelan la dependencia del colesterol de los nanodominios IGF1R" . ACS Nano . 7 (2): 1137-1144. doi : 10.1021 / nn3042122 . PMID 23330847 .
- ^ García-Parajo MF, Segers-Nolten GM, Veerman JA, Greve J, van Hulst NF (2000). "Dinámica impulsada por la luz en tiempo real de la emisión de fluorescencia en moléculas de proteína fluorescente verde única" . PNAS . 97 (13): 7237–7242. doi : 10.1073 / pnas.97.13.7237 . PMID 10860989 .
- ^ J. Mater. Chem. C, 2019, 7, 12373. Cite journal requiere
|journal=
( ayuda );Falta o vacío|title=
( ayuda )CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace ) - ^ Liu, J .; Liu, C .; He, W. (2013), "Los fluoróforos y sus aplicaciones como sondas moleculares en células vivas", Curr. Org. Chem. , 17 (6): 564–579, doi : 10.2174 / 1385272811317060003
- ^ Juan Carlos Stockert, Alfonso Blázquez-Castro (2017). "Capítulo 4 Etiquetas fluorescentes" . Microscopía de fluorescencia en ciencias de la vida . Editores de ciencia de Bentham. págs. 96-134. ISBN 978-1-68108-519-7. Consultado el 24 de diciembre de 2017 .
- ^ Omlc.ogi.edu
- ^ a b c d e Columbia Biosciences
- ^ Sirbu, Dumitru; Luli, Saimir; Leslie, Jack; Oakley, Fiona; Benniston, Andrew C. (2019). "Imagen óptica in vivo mejorada de la respuesta inflamatoria a la lesión hepática aguda en ratones C57BL / 6 utilizando un tinte BODIPY de infrarrojo cercano muy brillante". ChemMedChem . 14 (10): 995–999. doi : 10.1002 / cmdc.201900181 . ISSN 1860-7187 . PMID 30920173 .
- ^ Taki, Masayasu (2013). "Capítulo 5. Imágenes y detección de cadmio en las células". En Astrid Sigel; Helmut Sigel; Roland KO Sigel (eds.). Cadmio: de la toxicología a la esencialidad . Iones metálicos en ciencias de la vida. 11 . Saltador. págs. 99-115. doi : 10.1007 / 978-94-007-5179-8_5 . PMID 23430772 .
- ^ Sirbu, Dumitru; Carnicero, John B .; Waddell, Paul G .; Andras, Peter; Benniston, Andrew C. (18 de septiembre de 2017). "Colorantes acoplados de estado de transferencia de carga de estado localmente excitados como sondas de disparo de neuronas ópticamente sensibles" (PDF) . Química: una revista europea . 23 (58): 14639-14649. doi : 10.1002 / chem.201703366 . ISSN 0947-6539 . PMID 28833695 .
- ^ Jiang, Xiqian; Wang, Lingfei; Carroll, Shaina L .; Chen, Jianwei; Wang, Meng C .; Wang, Jin (20 de agosto de 2018). "Desafíos y oportunidades para sondas fluorescentes de moléculas pequeñas en aplicaciones de biología redox" . Antioxidantes y señalización redox . 29 (6): 518–540. doi : 10.1089 / ars.2017.7491 . ISSN 1523-0864 . PMC 6056262 . PMID 29320869 .
enlaces externos
- La base de datos de tintes fluorescentes [ enlace muerto permanente ]
- Tabla de fluorocromos
- El manual de sondas moleculares : un recurso completo para la tecnología de fluorescencia y sus aplicaciones.