Aeromonas salmonicida
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Aeromonas salmonicida
ASalmonicida.png
clasificación cientifica editar
Dominio:Bacterias
Filo:Proteobacterias
Clase:Gammaproteobacteria
Orden:Aeromonadales
Familia:Aeromonadaceae
Género:Aeromonas
Especies:
A. salmonicida
Nombre binomial
Aeromonas salmonicida
(Lehmann y Neumann 1896) Griffin et al. 1953
Sinónimos

Bacillus salmonicida (Lehmann y Neumann 1896) Kruse 1896 Bacterium salmonicida Lehmann y Neumann 1896 Proteus salmonicida (Lehmann y Neumann 1896) Pribram 1933

Aeromonas salmonicida es una bacteria patógena que impacta severamente a las poblaciones de salmónidos y otras especies . Fue descubierto por primera vez en uncriadero de trucha marrón de Bavierapor Emmerich y Weibel en 1894. [1] La capacidad de Aeromonas salmonicida para infectar una variedad de huéspedes, multiplicarse y adaptarse, la convierte en una bacteria virulenta principal. A. salmonicida es un agente etiológico de la furunculosis , una enfermedad que causa sepsis , hemorragias, lesiones musculares, inflamación del intestino delgado, agrandamiento del bazo y muerte en poblaciones de peces de agua dulce. Se encuentra en todo el mundo con la excepción de América del Sur. [1] [2]La principal vía de contaminación es la mala calidad del agua; sin embargo, también puede estar asociado a factores de estrés como el hacinamiento, las altas temperaturas y los traumatismos. Los peces que desovan y se alimentan son las principales víctimas de la furunculosis debido a su estado inmunodeprimido.

Morfología y características bacterianas.

Aeromonas salmonicida es una bacteria inmóvil gramnegativa, anaerobia facultativa. Tiene forma de varilla, de aproximadamente 1,3 a 2,0 por 0,8 a 1,3 μm de tamaño, y crece de manera óptima a temperaturas entre 22 y 25 ° C. [1] [2] La bacteria fermenta y oxida fácilmente la glucosa, y es positiva para catalasa y citocromo oxidasa. Sus propiedades moleculares incluyen una matriz de proteínas de superficie especial llamada capa A, que se cree que es responsable de los rasgos virulentos de la bacteria, y el lipopolisacárido, el principal antígeno de la envoltura celular de las células. [3] La capa A consiste en una proteína de 50 kD y brinda protección a la bacteria. El lipopolisacárido consta de tres restos: lípido A, un oligosacárido central y un O-polisacárido (antígeno O). Los productos extracelulares de A. salmonicida consisten en 25 proteínas, enzimas y toxinas, y muchas más. [3] Además, el genoma está compuesto por un solo cromosoma circular (4.702.402 pb), con dos plásmidos grandes y tres pequeños. El cromosoma produce el 58,5% de los pares G + C, tiene 4086 proteínas codificantes y totaliza 4388 genes. [4]

Los aislados de A. salmonicida prosperan cuando se cultivan en agar sangre o tirosina. Se observan grandes colonias junto con un pigmento difusible marrón en dos a cuatro días. La mayoría de las cepas típicas son morfológica y bioquímicamente homogéneas con algunas excepciones. Algunas de estas excepciones incluyen una variación distinguible en la producción de pigmentos, la capacidad de la bacteria para fermentar azúcares seleccionados y los resultados del ensayo de Voges-Proskauer.

Estructura y metabolismo celular

A. salmonicida es un anaerobio facultativo , lo que significa que es capaz de producir ATP mediante respiración aeróbica si hay oxígeno presente, pero también es capaz de cambiar a fermentación cuando no hay oxígeno presente. No fermenta sacarosa ni lactosa , utilizando glucosa.en este camino, en cambio; la fermentación de glucosa crea gas. La bacteria crece de manera óptima a temperaturas entre 22 y 25 ° C. La temperatura máxima a la que puede crecer es de 34,5 ° C. Después de aproximadamente un período de crecimiento de 24 horas, las colonias bacterianas alcanzan aproximadamente el tamaño de la punta de un alfiler. Las colonias también tienen un color marrón pigmentado que aparece después de que han estado creciendo durante 48 a 72 horas. [5]

Rango de host

  • Salmón
  • Trucha
  • Ciprínidos
  • Lucio
  • Perca
  • Bullheads
  • Rodaballo
  • Hipogloso

Epizootiología

A. salmonicida , un patógeno que se transmite por el aire, puede viajar 104 cm desde su hospedador a la atmósfera y regresar al agua, [6] lo que dificulta su control. La bacteria puede mantener su patogenicidad en condiciones de agua dulce durante 6 a 9 meses, [7] y en condiciones de agua salada hasta por 10 días sin un huésped. Varios métodos de recuento directo y otros métodos de detección han encontrado que el organismo no pierde ni reduce sus concentraciones de títulos. [8]

La transmisión de la furunculosis ocurre principalmente a través del contacto de pez a pez por la piel o por ingestión. Se ha descubierto que la trucha arco iris es portadora de A. salmonicida hasta dos años después de la infección inicial sin volver a exponerse. Los peces químicamente inmunosuprimidos en comparación con los peces estresados ​​por la temperatura tuvieron una mortalidad del 73% en comparación con una tasa de mortalidad del 33%, respectivamente. [9] Las infecciones de trucha que ocurren naturalmente consistieron en una tasa de mortalidad del 5-6% por semana con una tasa del 85% en poblaciones no tratadas. Algunos supervivientes de la furunculosis clínica de una población de truchas infectadas se convirtieron en portadores de A. salmonicida . [10] Al comparar las epidemias de furunculosis con niveles bajos de oxígeno, cuando las concentraciones de oxígeno se redujeron a menos de 5 mg / l, Aumentaron las concentraciones de A. salmonicida . [11] Mientras se observaba el salmón chum en una densidad de 14,7 peces por metro cuadrado, el 12,4% estaba infectado con A. salmonicida , mientras que las densidades de 4,9 peces por metro cuadrado estaban libres de infección. [12] Además, las concentraciones de A. salmonicida fueron considerablemente elevadas en agua con poco oxígeno disuelto (6-7 mg / l), en comparación con el agua con más oxígeno disuelto (10 mg / l). El agua de alta densidad y bajo oxígeno dio como resultado tasas de supervivencia que fueron aproximadamente un 40% menores que en aquellas que consistían en condiciones de baja densidad y alto oxígeno.

Patología

La bacteria es patógena para los peces y causa la enfermedad conocida como furunculosis. [13] Los síntomas que muestran los peces son hemorragia externa e interna , hinchazón de los conductos de ventilación y los riñones , furúnculos , úlceras , licuefacción y gastroenteritis . La furunculosis se conoce comúnmente como pudrición de la cola en los peces y es común en peces de colores y koi . Los peces infectados con llagas abiertas pueden transmitir la enfermedad a otros peces. [5]

También es una de varias bacterias que pueden causar la enfermedad del erizo de mar calvo . [14] Dado que A. salmonicida no puede crecer a 37 ° C, no es patógena en humanos. [15]

Síntomas clínicos y diagnóstico de enfermedades.

La furunculosis se clasifica en cuatro categorías según la gravedad: aguda, subaguda, crónica o latente. Cuando los peces están infectados, se vuelven apáticos y débiles hasta que mueren. Otras características observadas incluyen anorexia y movimiento letárgico, y pueden exhibir un pigmento oscurecido. También pueden aparecer úlceras profundas o superficiales, exoftalmia , manchas sanguinolentas, abdomen distendido y petequias en la base de la aleta. Internamente, los peces infectados pueden sufrir gastroenteritis , septicemia hemorrágica , riñón edematoso y agrandamiento del bazo. El hígado puede aparecer de color pálido y el bazo puede oscurecerse. La cavidad peritoneal también puede estar sanguinolenta e inflamada.

Las bacterias deben aislarse para identificar positivamente la enfermedad. Los aislamientos se extraen de lesiones musculares, riñón, bazo o hígado y luego se cultivan en agar tripticasa de soja y medio de infusión cerebro-corazón incubados a 20–25 ° C. Las colonias de A. salmonicida aparecen duras, friables, lisas, blandas y de color oscuro.

Si bien los procedimientos de cultivo producen buenos resultados, los procedimientos serológicos producen resultados más rápidos mediante el uso de aglutinación de suero, anticuerpo fluorescente o ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas en tejido infectado o bacterias cultivadas. [16] Mooney y col. [17] desarrolló una sonda de ADN con reacción en cadena de la polimerasa para detectar el ADN de A. salmonicida ; los resultados fueron exitosos en el 88% del salmón salvaje del Atlántico.

Detección

Las pruebas de A. salmonicida son negativas para la formación de indol , coagulasa , hidrólisis de almidón , caseína , triglicéridos y fosfolípidos , producción de sulfuro de hidrógeno , uso de citrato , fenilalanina y la prueba de Voges-Proskauer ( fermentación de butanodiol ). Da positivo para oxidasa , lisina descarboxilasa , rojo de metilo , hidrólisis de gelatina y catalasa . [5]

Referencias

  1. ^ a b c "Furunculosis" . Merck. Archivado desde el original el 30 de julio de 2015 . Consultado el 11 de junio de 2011 .
  2. ↑ a b Charette, Steve J. (4 de mayo de 2021). "Perfil de microbio: Aeromonas salmonicida: un patógeno oportunista con múltiples personalidades" . Microbiología . 167 (5). doi : 10.1099 / mic.0.001052 . ISSN 1350-0872 . 
  3. ^ a b Gráfico, H .; Shaw, D .; Ishguro, E .; Trust, T. (abril de 1984). "Homogeneidad estructural e inmunoquímica del lipopolisacárido de Aeromonas salmonicida " . Revista de bacteriología . 158 (1): 16-22. PMC 215372 . PMID 6370955 .  
  4. ^ Reith, YO; Singh, RK; Curtis, B .; Boyd, JM; Bouevitch, A .; Kimball, J .; Munholland, J .; Murphy, C .; Sarty, D .; Williams, J .; Nash, JH; Johnson, SC; Brown, LL (2008). "El genoma de Aeromonas salmonicida subsp. Salmonicida A449: una visión de la evolución de un patógeno de peces" . BMC Genomics . 9 : 427. doi : 10.1186 / 1471-2164-9-427 . PMC 2556355 . PMID 18801193 .  
  5. ^ a b c Staley, James T .; Garrity, George M .; Boone, David R .; Castenholz, Richard W .; Don J. Brenner; Krieg, Noel R. (2001). Manual de Bergey de bacteriología sistemática . Berlín: Springer. ISBN 978-0-387-24145-6.
  6. ^ Wooster, Gregory A .; Bowser, Paul R. (1996). "La vía aerobiológica de un patógeno de peces: supervivencia y diseminación de Aeromonas salmonicida en aerosoles y sus implicaciones en el manejo de la salud de los peces". Revista de la Sociedad Mundial de Acuicultura . 27 : 7-14. doi : 10.1111 / j.1749-7345.1996.tb00588.x .
  7. ^ Michel, C .; Dubois-Darnaudpeys, A. (1980). "Persistencia de la virulencia de cepas de Aeromonas salmonicida conservadas en sedimentos fluviales". Anales de investigación veterinaria . 11 (4): 375–80. PMID 7337394 . 
  8. ^ Rosa, A; Ellis, E (1990). "La supervivencia de Aeromonas salmonicida subsp. Salmonicida en agua de mar". The Journal of Fish Disease . 13 (3): 205–214. doi : 10.1111 / j.1365-2761.1990.tb00775.x .
  9. ^ Bullock, GL; Stuckey, HM (1975). " Detección de Aeromonas salmonicida de trucha infectada asintomáticamente". El culturista progresista de peces . 37 (4): 237–239. doi : 10.1577 / 1548-8659 (1975) 37 [237: AS] 2.0.CO; 2 . ISSN 1548-8659 . 
  10. ^ McCarthy, DH (1980). "Algunos aspectos ecológicos del patógeno bacteriano de peces Aeromonas salmonicida". Microbiología acuática : 299–324.
  11. ^ Kingsbury, Oliver R. (1961). "Un posible control de la furunculosis". El culturista progresista de peces . 23 (3): 136-137. doi : 10.1577 / 1548-8659 (1961) 23 [136: APCOF] 2.0.CO; 2 .
  12. ^ Kimura, Takahisa; Yoshimizu, Mamoru; Nomura, Tetsuichi (1992). "Un estudio epidemiológico de la furunculosis en la propagación del salmón": 187-193. hdl : 2115/39269 . Cite journal requiere |journal=( ayuda )
  13. ^ "www.lsc.usgs.gov" (PDF) . Archivado desde el original (PDF) el 7 de mayo de 2009 . Consultado el 3 de julio de 2009 .
  14. ^ Jangoux, M (1987). "Enfermedades de los equinodermos. I. Agentes microorganismos y protistanos" . Enfermedades de los organismos acuáticos . 2 : 147-162. doi : 10.3354 / dao002147 .
  15. ^ Altwegg, M .; Steigerwalt, AG; Altwegg-Bissig, R .; Lüthy-Hottenstein, J .; Brenner, D. (1990). "Identificación bioquímica de genoespecies de Aeromonas aisladas de humanos" . Revista de microbiología clínica . 28 (2): 258–264. PMC 269587 . PMID 2312673 .  
  16. ^ Austin, B .; Obispo, I .; Gray, C .; Watt, B .; Dawes, J. (1986). "Ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas basado en anticuerpos monoclonales para el diagnóstico rápido de casos clínicos de boca roja entérica y furunculosis en piscifactorías". Revista de enfermedades de los peces . 9 (5): 469–474. doi : 10.1111 / j.1365-2761.1986.tb01042.x .
  17. ^ Mooney, J .; Powell, E .; Clabby, C .; Powell, R. (1995). "Detección de Aeromonas salmonicida en salmón salvaje del Atlántico mediante una prueba de sonda de ADN específica" . Enfermedades de los organismos acuáticos . 21 : 131-135. doi : 10.3354 / dao021131 .

enlaces externos

  • Tipo de cepa de Aeromonas salmonicida subsp. smithia en Bac Dive - la base de metadatos de diversidad bacteriana
  • Tipo de cepa de Aeromonas salmonicida subsp. masoucida en Bac Dive - la base de metadatos de diversidad bacteriana
  • Tipo de cepa de Aeromonas salmonicida subsp. salmonicida en Bac Dive - la base de metadatos de diversidad bacteriana
  • Tipo de cepa de Aeromonas salmonicida subsp. achromogenes en Bac Dive - la base de metadatos de diversidad bacteriana
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