Los microcompartimentos bacterianos ( BMC ) son estructuras similares a orgánulos , que consisten en una capa de proteína que encierra enzimas y otras proteínas . Las BMC tienen típicamente alrededor de 40 a 200 nanómetros de diámetro y están compuestas enteramente de proteínas. [1] [2] [3] [4] [5] [6] [7] El caparazón funciona como una membrana, ya que es selectivamente permeable. [2] [4] [6] [8] [9] Otros compartimentos basados en proteínas que se encuentran en bacterias y arqueas incluyen nanocompartimentos de encapsulina [10] yvesículas de gas . [11]
Descubrimiento
Las primeras BMC se observaron en la década de 1950 en micrografías electrónicas de cianobacterias , [12] y luego se denominaron carboxisomas después de que se estableció su papel en la fijación de carbono. [13] Hasta la década de 1990, se pensaba que los carboxisomas eran una rareza confinada a ciertas bacterias autótrofas . Pero entonces los genes que codifican para proteínas homólogas a las de la cáscara carboxisoma se identificaron en la PDU (utilización propanodiol) [14] y eut (utilización de etanolamina) [15] operones . Posteriormente, micrografías electrónicas de transmisión de células de Salmonella cultivadas en propanodiol [16] o etanolamina [17] mostraron la presencia de cuerpos poliédricos similares a los carboxisomas. El término metabolosoma se usa para referirse a tales BMC catabólicas (en contraste con el carboxisoma autótrofo).
Aunque el carboxisoma, el uso de propanodiol (PDU) y el uso de etanolamina (EUT) encapsulan diferentes enzimas y, por lo tanto, tienen diferentes funciones, los genes que codifican las proteínas de la cubierta son muy similares. La mayoría de los genes (que codifican las proteínas de la cáscara y las enzimas encapsuladas) de las CMM caracterizadas experimentalmente se encuentran cerca unos de otros en distintos loci u operones genéticos . Actualmente hay más de 20.000 genomas bacterianos secuenciados, y se pueden utilizar métodos bioinformáticos para encontrar todos los genes de caparazón de BMC y observar qué otros genes hay en las proximidades, lo que produce una lista de posibles BMC. [6] [18] [19] En 2014, una encuesta exhaustiva identificó 23 loci diferentes que codifican hasta 10 BMC funcionalmente distintas en 23 filos bacterianos . [19]
Conchas
Familias de proteínas que forman la cáscara
La capa de BMC aparece icosaédrica o cuasi-icosaédrica, [20] y está formada por subunidades de proteínas (pseudo) hexámeras y pentaméricas .
La familia de proteínas de la cáscara de BMC
Los componentes principales de la capa de BMC son proteínas que contienen dominio (s) Pfam00936. Estas proteínas forman oligómeros que tienen forma hexagonal y se cree que forman las facetas de la cáscara. [2] [21] [22]
Proteínas de dominio único (BMC-H)
Las proteínas BMC-H, que contienen una sola copia del dominio Pfam00936, son el componente más abundante de las facetas del caparazón. Se han determinado las estructuras cristalinas de varias de estas proteínas, lo que demuestra que se ensamblan en hexámeros cíclicos, típicamente con un pequeño poro en el centro. [2] Se propone que esta apertura interviene en el transporte selectivo de los pequeños metabolitos a través de la cáscara.
Proteínas de dominio en tándem (BMC-T)
Un subconjunto de proteínas de la cubierta se compone de copias en tándem (fusionadas) del dominio Pfam00936 (proteínas BMC-T). Las proteínas BMC-T estructuralmente caracterizadas forman trímeros que son de forma pseudohexámera. [23] [24] [25] Algunas estructuras cristalinas de BMC-T muestran que los trímeros pueden apilarse cara a cara. En tales estructuras, un poro de un trímero está en una conformación "abierta", mientras que el otro está cerrado, lo que sugiere que puede haber un mecanismo similar a una esclusa de aire que modula la permeabilidad de algunas conchas de BMC. [23] [26] Otro subconjunto de proteínas BMC-T contiene un grupo [4Fe-4S] y puede estar involucrado en el transporte de electrones a través de la capa de BMC. [27] [28] [29] [30] [31]
La familia EutN / CcmL (BMC-P)
Se necesitan doce unidades pentagonales para cubrir los vértices de una capa icosaédrica. Se han resuelto las estructuras cristalinas de proteínas de la familia EutN / CcmL (Pfam03319) y típicamente forman pentámeros (BMC-P). [32] [33] [34] La importancia de las proteínas BMC-P en la formación de la capa parece variar entre las diferentes BMC. Se demostró que son necesarios para la formación de la capa de la PDU BMC, ya que los mutantes en los que el gen de la proteína BMC-P se eliminó no puede formar capas, [35] pero no para el alfa-carboxisoma: sin BMC-P proteínas, los carboxisomas todavía se ensamblarán y muchos se alargarán; estos carboxisomas mutantes parecen tener "fugas". [36]
Origen de las BMC y relación con las cápsides virales
Si bien la capa de BMC es arquitectónicamente similar a muchas cápsidas virales, no se ha encontrado que las proteínas de la capa tengan ninguna homología estructural o de secuencia con las proteínas de la cápside. En cambio, las comparaciones estructurales y de secuencia sugieren que tanto BMC-H (y BMC-T) como BMC-P, muy probablemente, han evolucionado a partir de proteínas celulares genuinas, a saber, proteína de señalización PII y proteína que contiene el dominio de pliegues OB, respectivamente. [37] Las geometrías de la membrana de BMC son poliedros que se explican al considerar capas multicomponente. [38]
Permeabilidad de la cáscara
Está bien establecido que las enzimas están empaquetadas dentro de la capa de BMC y que debe producirse algún grado de secuestro de metabolitos y cofactores. [4] Sin embargo, también se debe permitir que otros metabolitos y cofactores crucen la capa para que las BMC funcionen. Por ejemplo, en los carboxisomas, la ribulosa-1,5-bisfosfato, bicarbonato y fosfoglicerato deben cruzar la capa, mientras que la difusión de dióxido de carbono y oxígeno es aparentemente limitada. [39] [40] De manera similar, para el PDU BMC, la cáscara debe ser permeable al propanodiol, propanol, propionilfosfato y potencialmente también a la vitamina B12, pero está claro que el propionaldehído se secuestra de alguna manera para prevenir el daño celular. [41] Existe alguna evidencia de que el ATP también debe atravesar algunos proyectiles de BMC. [4]
Se ha propuesto que el poro central formado en las placas de proteína hexagonales de la cubierta son los conductos a través de los cuales los metabolitos se difunden en la cubierta. [2] [21] Por ejemplo, los poros en la capa carboxisoma tienen una carga positiva general, que se ha propuesto para atraer sustratos cargados negativamente como el bicarbonato. [2] [4] [9] [21] En el microcompartimento de la PDU, los experimentos de mutagénesis han demostrado que el poro de la proteína de la cubierta de la PduA es la ruta de entrada del sustrato de propanodiol. [42] Para metabolitos más grandes, es evidente un mecanismo de activación en algunas proteínas BMC-T. [23] [26] [43] En el microcompartimento de EUT, la apertura del poro grande en la proteína de la cubierta de EutL está regulada por la presencia del principal sustrato metabólico, la etanolamina. [44]
La presencia de grupos de hierro-azufre en algunas proteínas de la capa, presumiblemente en el poro central, ha llevado a la sugerencia de que pueden servir como un conducto a través del cual los electrones pueden transportarse a través de la capa. [27] [30] [31]
Tipos
Un estudio exhaustivo reciente de los datos de la secuencia del genoma microbiano indicó hasta diez funciones metabólicas diferentes encapsuladas por conchas de BMC. [19] La mayoría está involucrada en la fijación de carbono (carboxisomas) o en la oxidación de aldehídos (metabolosomas). [19]
Carboxisomas: fijación de carbono
Los carboxisomas encapsulan ribulosa-1,5-bisfosfato carboxilasa / oxigenasa (RuBisCO) y anhidrasa carbónica en bacterias fijadoras de carbono como parte de un mecanismo de concentración de carbono. [45] El bicarbonato se bombea al citosol y se difunde en el carboxisoma, donde la anhidrasa carbónica lo convierte en dióxido de carbono, el sustrato de RuBisCO. Se cree que el caparazón del carboxisoma es poco permeable al dióxido de carbono, lo que da como resultado un aumento efectivo de la concentración de dióxido de carbono alrededor de RuBisCO, lo que mejora la fijación de carbono. [40] [46] Los mutantes que carecen de genes que codifiquen la capa carboxisoma muestran un fenotipo de alto requerimiento de carbono debido a la pérdida de la concentración de dióxido de carbono, lo que resulta en una mayor fijación de oxígeno por RuBisCO. Las conchas también se han propuesto para restringir la difusión de oxígeno, [9] [40] evitando así la reacción de oxigenasa, reduciendo la fotorrespiración derrochadora. [39]
Metabolosomas: oxidación de aldehídos
Además de los carboxisomas anabólicos, se han caracterizado varias BMC catabólicas que participan en el metabolismo heterotrófico a través de aldehídos de cadena corta; se denominan colectivamente metabolosomas. [4] [17]
Estos BMC comparten una química encapsulada común impulsada por tres enzimas centrales: aldehído deshidrogenasa, alcohol deshidrogenasa y fosfotransacilasa. [4] [19] [47] Debido a que los aldehídos pueden ser tóxicos para las células [41] y / o volátiles, [48] se cree que están secuestrados dentro del metabolosoma. El aldehído se fija inicialmente a la coenzima A por una aldehído deshidrogenasa dependiente de NAD +, pero estos dos cofactores deben reciclarse, ya que aparentemente no pueden cruzar la capa. [49] [50] Estas reacciones de reciclaje son catalizadas por una alcohol deshidrogenasa (NAD +), [49] y una fosfotransacetilasa (coenzima A), [50] dando como resultado un compuesto de acilo fosforilado que puede ser fácilmente una fuente de fosforilación a nivel de sustrato. o entrar en el metabolismo central, dependiendo de si el organismo está creciendo aeróbicamente o anaeróbicamente. [41] Parece que la mayoría, si no todos, los metabolosomas utilizan estas enzimas centrales. Los metabolosomas también encapsulan otra enzima que es específica del sustrato inicial del BMC, que genera el aldehído; esto se considera la enzima distintiva del BMC. [4] [19]
BMC de PDU
Algunas bacterias pueden usar 1,2-propanodiol como fuente de carbono. Usan un BMC para encapsular varias enzimas utilizadas en esta vía (Sampson y Bobik, 2008). El PDU BMC generalmente está codificado por un locus de 21 genes. Estos genes son suficientes para el ensamblaje de las BMC, ya que pueden trasplantarse de un tipo de bacteria a otro, lo que da como resultado un metabolosoma funcional en el receptor. [29] Este es un ejemplo de bioingeniería que también proporciona evidencia en apoyo de la hipótesis del operón egoísta. [51] El 1,2-propanodiol se deshidrata a propionaldehído por la propanodiol deshidratasa, que requiere vitamina B12 como cofactor. [52] El propionaldehído causa mutaciones en el ADN y, como resultado, es tóxico para las células, lo que posiblemente explica por qué este compuesto está secuestrado dentro de un BMC. [41] Los productos finales de la PDU BMC son propanol y propionilfosfato, que luego se desfosforila a propionato, generando un ATP. El propanol y el propionato se pueden usar como sustratos para el crecimiento. [41]
EUT BMC
Utilización de etanolamina (EUT) Las BMC están codificadas en muchos tipos diversos de bacterias. [19] La etanolamina se escinde en amoníaco y acetaldehído mediante la acción de la etanolamina-amoníaco liasa, que también requiere vitamina B12 como cofactor. [53] El acetaldehído es bastante volátil, y se ha observado que los mutantes deficientes en la capa de BMC tienen un defecto de crecimiento y liberan cantidades excesivas de acetaldehído. [48] Se ha propuesto que el secuestro de acetaldehído en el metabolosoma evita su pérdida por volatilidad. [48] Los productos finales del EUT BMC son el etanol y el acetilfosfato. Es probable que el etanol sea una fuente de carbono perdido, pero el acetilfosfato puede generar ATP o reciclarse en acetil-CoA y entrar en el ciclo del TCA o en varias vías biosintéticas. [17]
BMC bifuncionales de PDU / EUT
Algunas bacterias, especialmente las del género Listeria , codifican un solo locus en el que están presentes genes para las BMC de PDU y EUT. [19] Aún no está claro si se trata realmente de un BMC quimérico con una mezcla de ambos conjuntos de proteínas, o si se forman dos BMC separados.
BMC que contienen enzimas de radicales glicilo (GRM)
Se han identificado varios loci de BMC diferentes que contienen enzimas radicales glicilo, [18] [19] que obtienen el radical catalítico de la escisión de s-adenosilcobalamina. [54] Se ha demostrado que un locus GRM en Clostridium phytofermentans está involucrado en la fermentación de fucosa y ramnosa, que inicialmente se degradan a 1,2-propanodiol en condiciones anaeróbicas. Se propone que la enzima de radical glicilo deshidrate el propanodiol a propionaldehído, que luego se procesa de una manera idéntica a la PDU canónica BMC. [55]
Planctomycetes y Verrucomicrobia BMC (PVM)
Los distintos linajes de Planctomycetes y Verrucomicrobia codifican un locus BMC. Se ha demostrado que el locus de Planctomyces limnophilus está implicado en la degradación aeróbica de fucosa y ramnosa. Se cree que una aldolasa genera lactaldehído, que luego se procesa a través del BMC, dando como resultado 1,2-propanodiol y lactilfosfato. [47]
BMC de Rhodococcus y Mycobacterium (RMM)
Se han observado dos tipos de loci de BMC en miembros de los géneros Rhodococcus y Mycobacterium , aunque no se ha establecido su función real. [19] Sin embargo, basándose en la función caracterizada de uno de los genes presentes en el locus y las funciones predichas de los otros genes, se propuso que estos loci podrían estar involucrados en la degradación del amino-2-propanol. El aldehído generado en esta vía predicha sería el compuesto extremadamente tóxico metilglioxal; su secuestro dentro del BMC podría proteger la célula. [19]
BMC de función desconocida (BUF)
Un tipo de locus de BMC no contiene RuBisCO ni ninguna de las enzimas del metabolosoma central, y se ha propuesto para facilitar una tercera categoría de transformaciones bioquímicas (es decir, no la fijación de carbono ni la oxidación de aldehídos). [19] La presencia de genes que se predice que codificarán amidohidrolasas y desaminasas podría indicar que este BMC está involucrado en el metabolismo de compuestos nitrogenados. [19]
Montaje
Carboxisomas
Se ha identificado la ruta de ensamblaje de los betacarboxisomas y comienza con la proteína CcmM que nuclea RuBisCO. [56] CcmM tiene dos dominios: un dominio de anhidrasa gamma-carbónica N-terminal seguido de un dominio que consta de tres a cinco repeticiones de secuencias similares a subunidades pequeñas de RuBisCO. [57] El dominio C-terminal agrega RuBisCO, probablemente sustituyendo las pequeñas subunidades reales de RuBisCO en la holoenzima L8-S8, reticulando efectivamente el RuBisCO en la célula en un agregado grande, denominado procarboxisoma. [56] El dominio N-terminal de CcmM interactúa físicamente con el dominio N-terminal de la proteína CcmN, que, a su vez, recluta las subunidades de la proteína de la cubierta hexagonal a través de un péptido de encapsulación en su extremo C-terminal. [58] A continuación, los carboxisomas se alinean espacialmente en la célula cianobacteriana mediante la interacción con el citoesqueleto bacteriano, lo que garantiza su distribución equitativa en las células hijas. [59]
El ensamblaje de alfa-carboxisomas puede ser diferente al de los beta-carboxisomas, [60] ya que no tienen proteínas homólogas a CcmN o CcmM ni péptidos de encapsulación. Se han observado carboxisomas vacíos en micrografías electrónicas. [61] Algunas micrografías indican que su ensamblaje ocurre como una coalescencia simultánea de enzimas y proteínas de la cáscara en oposición a la forma aparentemente escalonada observada para los beta-carboxisomas. Se ha demostrado que la formación de alfa-carboxisomas simples en sistemas heterólogos requiere solo subunidades grandes y pequeñas de Rubisco, la proteína de anclaje interna CsoS2 y la proteína de capa principal CsoS1A. [62]
Metabolosomas
El ensamblaje del metabolosoma es probablemente similar al del beta-carboxisoma, [4] [56] a través de una agregación inicial de las proteínas que se van a encapsular. Las proteínas centrales de muchos metabolosomas se agregan cuando se expresan solas. [63] [64] [65] [66] Además, muchas proteínas encapsuladas contienen extensiones terminales que son sorprendentemente similares al péptido C-terminal de CcmN que recluta proteínas de caparazón. [58] [67] Estos péptidos de encapsulación son cortos (alrededor de 18 residuos) y se prevé que formen hélices alfa anfipáticas. [58] Se ha demostrado que algunas de estas hélices median en la encapsulación de enzimas nativas en BMC, así como en proteínas heterólogas (como GFP). [58] [68] [69] [70] [71]
Regulación (genética)
Con la excepción de los carboxisomas, en todos los casos probados, las BMC están codificadas en operones que se expresan solo en presencia de su sustrato.
Los BMC de PDU en Salmonella enterica son inducidos por la presencia de propanodiol o glicerol en condiciones anaeróbicas, y solo propanodiol en condiciones aeróbicas. [72] Esta inducción está mediada por las proteínas reguladoras globales Crp y ArcA (que detectan AMP cíclico y condiciones anaeróbicas, respectivamente), [73] y la proteína reguladora PocR, que es el activador transcripcional para los loci pdu y cob (el operón necesaria para la síntesis de vitamina B12, un cofactor necesario para la propanodiol deshidratasa). [72]
Las CMO de EUT en Salmonella enterica se inducen a través de la proteína reguladora EutR por la presencia simultánea de etanolamina y vitamina B12, lo que puede ocurrir en condiciones aeróbicas o anaeróbicas. Salmonella enterica solo puede producir vitamina B12 endógena en condiciones anaeróbicas, aunque puede importar cianobalamina y convertirla en vitamina B12 en condiciones aeróbicas o anaeróbicas. [74]
Las BMC de PVM en Planctomyces limnophilus son inducidas por la presencia de fucosa o ramnosa en condiciones aeróbicas, pero no por glucosa. [47] Se obtuvieron resultados similares para el GRM BMC de Clostridium phytofermentans , para el cual ambos azúcares inducen los genes que codifican el BMC así como los que codifican las enzimas disimilatorias de fucosa y ramnosa. [55]
Además de los sistemas reguladores caracterizados, las encuestas bioinformáticas han indicado que existen potencialmente muchos otros mecanismos reguladores, incluso dentro de un tipo funcional de BMC (por ejemplo, PDU), incluidos los sistemas reguladores de dos componentes. [19]
Relevancia para la salud mundial y humana
Los carboxisomas están presentes en todas las cianobacterias y en muchas otras bacterias fotoautótrofas y quimioautótrofas. Las cianobacterias son impulsoras importantes a nivel mundial de la fijación de carbono y, dado que requieren que los carboxisomas lo hagan en las condiciones atmosféricas actuales, el carboxisoma es un componente importante de la fijación global de dióxido de carbono.
Se han implicado varios tipos de BMC en la virulencia de patógenos, como Salmonella enterica y Listeria monocytogenes . Los genes BMC tienden a estar regulados positivamente en condiciones de virulencia, y mutarlos conduce a un defecto de virulencia según lo juzgan los experimentos de competencia. [75] [76] [77] [78] [79]
Aplicaciones biotecnológicas
Varias características de las BMC las hacen atractivas para aplicaciones biotecnológicas. Debido a que los carboxisomas aumentan la eficiencia de la fijación de carbono, se han realizado muchos esfuerzos de investigación para introducir carboxisomas y transportadores de bicarbonato necesarios en los cloroplastos de las plantas para diseñar un mecanismo de concentración de CO2 cloroplástico [80] [81] con cierto éxito. [62]
De manera más general, debido a que las proteínas de caparazón de BMC se autoensamblan, se pueden formar capas vacías, [35] [71] lo que impulsa esfuerzos para diseñarlas para contener carga personalizada. El descubrimiento del péptido de encapsulación en los extremos de algunas proteínas asociadas a BMC [58] [68] proporciona un medio para comenzar a diseñar BMC personalizadas fusionando proteínas extrañas a este péptido y coexpresando esto con proteínas de caparazón. Por ejemplo, al agregar este péptido a la piruvato descarboxilasa y la alcohol deshidrogenasa, los investigadores han diseñado un biorreactor de etanol. [82] Finalmente, los poros presentes en las proteínas de la cáscara controlan la permeabilidad de la cáscara: estos pueden ser un objetivo para la bioingeniería, ya que pueden modificarse para permitir el cruce de sustratos y productos seleccionados. [83]
Ver también
- Sistema endomembranoso
- Camino metabólico
- Canalización de sustrato
- Encapsulinas
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enlaces externos
- Misteriosos microcompartimentos bacterianos revelados por bioquímicos
- Después de todo, no es tan simple. Un renacimiento de la investigación sobre la evolución procariota y la estructura celular