En agricultura y jardinería , trasplantar o replantar es la técnica de mover una planta de un lugar a otro. La mayoría de las veces, esto toma la forma de comenzar una planta a partir de semillas en condiciones óptimas, como en un invernadero o en un vivero protegido , y luego replantarla en otro lugar de cultivo, generalmente al aire libre. Esto es común en la horticultura y la agricultura camión, donde ponía ya o siembra a cabo son sinónimo de trasplante. En la horticultura de algunas plantas ornamentales, los trasplantes se utilizan con poca frecuencia y con cuidado porque conllevan un riesgo significativo de matar la planta. [1]
El trasplante tiene una variedad de aplicaciones, que incluyen:
- Prolongar la temporada de crecimiento iniciando las plantas en el interior, antes de que las condiciones exteriores sean favorables;
- Proteger las plantas jóvenes de enfermedades y plagas hasta que estén lo suficientemente establecidas;
- Evitar problemas de germinación colocando plántulas en lugar de siembra directa .
Las diferentes especies y variedades reaccionan de manera diferente al trasplante; para algunos, no se recomienda. En todos los casos, evitar el shock del trasplante —el estrés o el daño recibido en el proceso— es la principal preocupación. Las plantas cultivadas en condiciones protegidas generalmente necesitan un período de aclimatación , conocido como endurecimiento (ver también resistencia a las heladas ). Además, se debe minimizar la alteración de las raíces . La etapa de crecimiento en la que se realiza el trasplante, las condiciones climáticas durante el trasplante y el tratamiento inmediatamente después del trasplante son otros factores importantes.
Sistemas de producción de trasplantes
Los productores comerciales emplean lo que se denomina producción de trasplantes en contenedores y no en contenedores. [2]
Los trasplantes o plugs en contenedores permiten trasplantar plantas cultivadas por separado con las raíces y el suelo intactos. Normalmente se cultiva en macetas de turba (una maceta hecha de turba comprimida ), bloques de tierra (bloques de tierra comprimidos), macetas de papel o contenedores de celdas múltiples como paquetes de plástico (de cuatro a doce celdas) o bandejas de tapones más grandes hechas de plástico o espuma de poliestireno. [3]
Los trasplantes no en contenedores generalmente se cultivan en camas o bancos de suelo de invernadero, al aire libre en el suelo con cubiertas de hileras y semilleros, y en el suelo en campo abierto. [4] [2] Las plantas se arrancan con las raíces desnudas para el trasplante, que son menos costosas que los trasplantes en contenedores, pero con rendimientos más bajos debido al peor restablecimiento de la planta. [4]
Stock en contenedores
El material de plantación en contenedores se clasifica según el tipo y tamaño del contenedor utilizado. Se ha utilizado una gran variedad de envases, con diversos grados de éxito. Algunos contenedores están diseñados para ser plantados con el árbol, por ejemplo, la maceta de papel alquitranado, la salchicha de turba de Alberta, la bala cuadrada Walters y los sistemas de macetas de papel, se llenan con medio de enraizamiento y se plantan con el árbol (Tinus y McDonald 1979). [5] También se plantan con el árbol otros contenedores que no están llenos de medio de enraizamiento, pero en los que el contenedor es un bloque moldeado de medio de cultivo, como con Polyloam, Tree Start y BR-8 Blocks.
Los diseños de contenedores para la cría de material de plantación han sido muchos y variados. La culata de abeto blanco en contenedores es ahora la norma. La mayoría de los contenedores tienen forma de tubo; tanto el diámetro como el volumen afectan el crecimiento del abeto blanco (Hocking y Mitchell 1975, Carlson y Endean 1976). [6] [7] El abeto blanco cultivado en un recipiente con una altura: diámetro de 1: 1 produjo un peso seco significativamente mayor que el de los recipientes de configuraciones de 3: 1 y 6: 1 altura: diámetro. El peso seco total y la longitud de los brotes aumentaron al aumentar el volumen del contenedor.
Cuanto más grande sea la bolsa, menos se desplegará por unidad de área. Sin embargo, la ventaja biológica del tamaño ha sido suficiente para influir en un cambio pronunciado hacia contenedores más grandes en Columbia Británica (Coates et al. 1994). [8] El número de tapones de poliestireno bloqueados PSB211 (2 cm de diámetro superior, 11 cm de largo) pedidos en Columbia Británica disminuyó de 14.246.000 en 1981 a cero en 1990, mientras que los pedidos de tapones de poliestireno bloqueados PSB415 (4 cm de diámetro superior, 15 cm de largo) aumentaron en el mismo período de 257 000 a 41 008 000, aunque las existencias grandes son más caras que las pequeñas para cultivar, distribuir y plantar.
No se plantan otros contenedores con el árbol, por ejemplo, los sistemas de contenedores Styroblock, Superblock, Copperblock y Miniblock, producen plántulas de Styroplug con raíces en un tapón cohesivo de medio de cultivo. Las cavidades del tapón varían en volumen según varias combinaciones de diámetro y profundidad de la parte superior, de 39 a 3260 ml, pero las más comúnmente utilizadas, al menos en Columbia Británica, están en el rango de 39 ml a 133 ml (Van Eerden y Gates 1990). [9] El macho de poliestireno BC-CFS, desarrollado en 1969/70, se ha convertido en el tipo de stock dominante para el abeto interior en Columbia Británica (Van Eerden y Gates 1990, Coates et al. 1994). [9] [8] Los tamaños de los tapones se indican mediante una designación de 3 cifras, la 1ª cifra indica el diámetro superior y las otras 2 cifras la profundidad de la cavidad del tapón, ambas dimensiones aproximadas en centímetros. La demanda de tapones más grandes ha aumentado fuertemente (Tabla 6.24; Coates et al. 1994). [8] Las existencias criadas en algunos tamaños de tapones pueden variar según la clase de edad. En Columbia Británica, por ejemplo, los enchufes PSB 415 y PSB 313 se elevan como 1 + 0 o 2 + 0. Los enchufes PSB 615 rara vez se levantan salvo como 2 + 0.
Inicialmente, la intención era dejar los plugs in situ en los Styroblocks hasta inmediatamente antes de la siembra. Pero esto provocó problemas logísticos y redujo la eficiencia de las operaciones de plantación. No parece que se hayan realizado estudios para comparar el rendimiento de las existencias extraídas y empaquetadas con las existencias in situ , pero las existencias envasadas se han comportado bien y no han dado indicios de problemas.
Silvicultura
Almacenamiento de campo
Como propugnan Coates et al. (1994), [8] el material de plantación descongelado que se lleva al campo debe mantenerse fresco de manera óptima entre 1 ° C y 2 ° C en humedades relativas superiores al 90% (Ronco 1972a). [10] Durante unos días, se pueden tolerar temperaturas de almacenamiento de alrededor de 4,5 ° C y humedades de alrededor del 50%. Binder y Fielder (1988) [11] recomendaron que las plántulas en cajas recuperadas del almacenamiento en frío no se expongan a temperaturas superiores a 10 ° C. Las furgonetas frigoríficas que se utilizan comúnmente para el transporte y el almacenamiento in situ normalmente mantienen las plántulas entre 2 ° C y 4 ° C (Mitchell et al. 1980). [12] Ronco (1972a, b) [10] [13] advirtió contra el uso de hielo seco (dióxido de carbono sólido) para enfriar las plántulas; Afirmó que la respiración y el transporte de agua en las plántulas se ven interrumpidos por las altas concentraciones de dióxido de carbono gaseoso.
El material de plantación de coníferas a menudo se mantiene en almacenamiento congelado, principalmente a -2 ° C, durante períodos prolongados y luego se almacena en frío (+2 ° C) para descongelar el cepellón antes de la plantación. La descongelación es necesaria si las plántulas congeladas no se pueden separar unas de otras y algunos han abogado por evitar la posible pérdida de contacto entre el tapón y el suelo con la contracción del tapón con el derretimiento del hielo en el tapón. La actividad fisiológica también es mayor en almacenamiento en frío que en congelado, pero las plántulas de abeto interior y abeto Engelmann que se plantaron mientras aún estaban congeladas solo tuvieron efectos fisiológicos breves y transitorios, incluido el potencial hídrico del xilema (Camm et al. 1995, Silem y Guy 1998). ). [14] [15] Después de 1 temporada de crecimiento, los parámetros de crecimiento no difirieron entre las plántulas plantadas congeladas y las plantadas descongeladas.
Los estudios de las prácticas de almacenamiento y plantación se han centrado generalmente en los efectos de la duración del almacenamiento congelado y los efectos del almacenamiento en frío posterior (por ejemplo, Ritchie et al. 1985, Chomba et al. 1993, Harper y Camm 1993). [16] [17] [18] Las revisiones de las técnicas de almacenamiento de resfriados han prestado poca atención al proceso de descongelación (Camm et al. 1994), [19] o simplemente han señalado que es poco probable que la velocidad de descongelación cause daños ( McKay 1997 ). [20]
Kooistra y Bakker (2002) [21] observaron varias líneas de evidencia que sugieren que el almacenamiento en frío puede tener efectos negativos sobre la salud de las plántulas. La tasa de respiración es más rápida durante el almacenamiento en frío que en el almacenamiento en congelación, por lo que se agotan las reservas de carbohidratos más rápidamente. Ciertamente, en ausencia de luz durante el almacenamiento en frío, y en un grado indeterminado si las plántulas se exponen a la luz (inusual), las reservas de carbohidratos se agotan (Wang y Zwiacek 1999). [22] Además, Silem y Guy (1998), [15] por ejemplo, encontraron que las plántulas de abeto interior tenían reservas totales de carbohidratos significativamente más bajas si se almacenaban durante 2 semanas a 2 ° C que si se descongelaban rápidamente durante 24 horas a 15 ° C. . Las plántulas pueden perder rápidamente la resistencia al frío en un almacenamiento en frío a través del aumento de la respiración y el consumo de azúcares intracelulares que funcionan como crioprotectores (Ogren 1997). [23] Además, el agotamiento de las reservas de carbohidratos afecta la capacidad de las plántulas para hacer crecer las raíces. Finalmente, los moldes de almacenamiento son un problema mucho mayor durante el almacenamiento en frío que en el congelado.
Kooistra y Bakker (2002), [21] por lo tanto, probaron la hipótesis de que tal descongelación es innecesaria. Las plántulas de 3 especies, incluida la picea interior, se sembraron con raíces congeladas (plántulas congeladas) y con raíces descongeladas (plántulas descongeladas). Los tapones de raíces descongelados se calentaron a la temperatura del suelo en aproximadamente 20 minutos; los tapones de raíces congelados tardaron aproximadamente 2 horas, y el hielo en el tapón tuvo que derretirse antes de que la temperatura pudiera subir por encima de cero. El tamaño del cepellón influyó en el tiempo de descongelación. Estas plantaciones se realizaron en suelos cálidos según los estándares boreales , y las plántulas con tapones congelados podrían comportarse de manera diferente si se trasplantan en el suelo a temperaturas más típicas de los sitios de plantación en primavera y en elevaciones elevadas. La fluorescencia variable no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas. La brotación no fue más rápida entre las plántulas de abeto interior descongeladas que entre las congeladas. El rendimiento en el campo no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas.
Galería
Trasplante de un árbol bilimbi ( Averrhoa bilimbi )
Árbol bilimbi después de la replantación
Trasplante de árboles en Australia
Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
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Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
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Trasplante / trasplante de árboles en Kerala
Ver también
- Bandeja de semillas
- Experimento de trasplante
Referencias
- ^ Conceptos básicos de horticultura - Simson, Straus. Oxford Book Company, edición 2010
- ^ a b Granberry, Darbie M; Colditz, Paul (1990). "Trasplantes" . Producción comercial de pimiento . Universidad de Georgia . Consultado el 21 de diciembre de 2013 .
- ^ Smith, Shane (2000). Compañero del jardinero de invernadero: Cultivo de alimentos y flores en su invernadero o espacio solar . Editorial Fulcrum. págs. 133-135. ISBN 978-1-55591-450-9.
- ^ a b Schrader, Wayne L. (2000). Publicación 8013: Uso de trasplantes en la producción de hortalizas . Publicaciones de UCANR (Universidad de California, División de Agricultura y Recursos Naturales). pag. 3. ISBN 978-1-60107-193-4.
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enlaces externos
- Trasplantes para mejorar el paisaje de su jardín